ここでは、1つの脳幹スライス内のトノトピック特性と発生軌跡を調べるために、ニワトリ胚の非冠状聴覚脳幹スライスを取得するためのプロトコルを提示します。これらのスライスは、矢状、水平、および水平/横セクションを含み、従来の冠状セクションよりも個々のスライス平面内のより大きなトノトピック領域を包含する。
ニワトリ胚は、聴脳幹を研究するために広く受け入れられている動物モデルであり、高度に特殊化されたマイクロ回路と、トノトピック(すなわち周波数)軸に沿って差動的に配向されたニューロントポロジーで構成されています。トノトピック軸は、吻側内側面における高周波音の分離符号化および尾側領域における低周波符号化を可能にする。伝統的に、胚組織の冠状脳幹スライスは、相対的な個々の等周波薄板の研究を可能にする。個々の等周波領域に関する解剖学的および生理学的問題を調査するのに十分であるが、より大きな聴覚脳幹領域にわたるトノトピック変異およびその発達の研究は幾分限られている。このプロトコルは、下聴脳幹の周波数領域のより大きな勾配を含むニワトリ胚からの脳幹スライス技術を報告しています。ニワトリの聴覚脳幹組織に異なるスライス法を利用することで、1つの脳幹スライス内で電気生理学的および解剖学的実験が可能になり、冠状断面よりもトノトピック特性と発生軌跡のより大きな勾配がよりよく保存されます。複数のスライス技術により、聴覚脳幹マイクロ回路の多様な解剖学的、生物物理学的、およびトノトピック特性の調査を改善することができます。
ニワトリ胚は、細胞生物学、免疫学、病理学、発生神経生物学など、数多くの多様な科学分野における基本的な生物学的問題を研究するための貴重な研究モデルです。ニワトリの聴覚脳幹の微小回路は、聴覚形態と生理学の観点から理解できる高度に専門化された回路の優れた例です。例えば、Rubel and Parks (1975) は、ニワトリ核マグノセルラリス (NM) と層状核 (NL) のトノトピック配向 (すなわち周波数勾配) を、矢状面に対して~30°配向した核の軸を横切る線形関数として最初に記述した。NMとNLの個々のニューロンは、特性周波数(CF)として知られる最高の音の周波数を、吻側内側面に沿って尾外側領域にエンコードします。高周波感受性ニューロンは吻側内側領域にあり、低周波感受性ニューロンは尾側に位置する。そのため、トノトピック特性を研究するための聴覚脳幹組織の伝統的な解剖方法は、連続した冠状スライスを利用してきました。実際、発生中のニワトリ胚の聴覚マイクロ回路は、何十年にもわたって連続する尾側から吻側への冠状動脈面脳幹スライスを介したトノトピック聴覚機能の信号処理を研究するためのモデルシステムとして確立されています1,2,3,4,5,6。
しかし、NMとNLのトノトピック構成はトポロジー的・形態的に複雑である。聴神経入力は、高いCF入力が、副生NM細胞の体周囲長の少なくとも4分の1を覆う終末球様構造で終わるように分布している。逆に、低CF入力は、終末球様終末ではなく、NMニューロンの樹状突起上の複数のブートンシナプスで組織化されています。中央のCF入力は、終末球とブートン様シナプス4、7、8、9、10、11、12の両方で終了します。NLでは、非常にステレオタイプの樹枝状勾配は、樹枝状の長さだけでなく樹枝状の幅にも明らかです。このユニークな樹枝状勾配は、トノトピック軸に密接に適合しています。樹状突起は、高CFニューロンから低CFニューロンまで、それぞれ長さが11倍、幅が5倍に増加します6。コロナスライスにおけるこれらの核のこのような複雑な分布を克服するために、このプロトコルは矢状面、水平面、および水平/横面での解剖アプローチを記述します。これらのスライス技術は、個々のスライス面において最大のトノトピック特性を示す聴覚脳幹組織の例を提供する。
ニワトリ胚性脳幹組織の冠状切片は、何十年にもわたって相対的な個々の等周波薄板の研究を可能にしてきました1,2,5。しかし、ニワトリ聴覚脳幹のトノトピック(すなわち周波数)組織はトポロジー的に複雑であり、特定の研究課題に応じて他の解剖学的軸でよりアクセスしやすい可能性がある。個々の等周波領域に関する解剖学的および生理学的問題を調査するのに十分であるが、より大きな聴覚脳幹領域にわたるトノトピック変異およびその発達の研究は、冠状切片によっていくらか制限されている。この制限を克服するために、このプロトコルは、矢状面、水平面、および水平/横面でのアプローチを記述して、個々の脳幹セクションで最大のトノトピック特性と勾配を示す聴覚脳幹組織の追加の例を提供します。
聴覚脳幹領域の矢状切片は、冠状切片と比較して、異なるトノトピック領域がスライス内のより大きな領域に分布していることを示しています(矢状聴覚領域=~300-600μm、冠状聴覚領域=~200-350μm)。例えば、NMおよびNL領域は、矢状切片の吻側尾軸に沿ったより広い領域にわたって視覚化され(例えば、図2B)、この解剖学的軸に沿って走る機能的トノトピック勾配は、主に単一の矢状スライス内に含まれていた。これは、以前に報告されたように、吻側尾側勾配に沿って変化する固有のニューロンの違いの電流クランプ記録でさらに確認されました14,15(例えば、図3C、D)。トノトピック軸に沿った解剖学的および免疫組織化学的特性を強調する将来の実験では、単一の矢状スライス面内の聴覚特性の既知の勾配をさらに調査する可能性があります。これらには、連続した冠状断面16において以前に示されている樹状突起構造の既知の勾配ならびにNMおよびNLの固有の特性であるMAP2染色およびカリウムチャネル発現パターンが含まれるが、これらに限定されない。
聴覚脳幹領域の水平断面は、NMとNLが正中線に向かって位置していることを示しています。聴覚軸索線維の一部は、水平面に対して斜めまたは垂直に走っています(図4)。これらの繊維は、矢状面に対して45°の鋭角スライスを作ることによって続くことができる。得られた水平/横スライスは矢状または水平スライスよりも大きく、長い軸索線維は同側と反対側の両方で吻側尾軸を通り抜けました。NMとNLの両方をより大きな対角領域(~400-700 μm)で視覚化できるため、反対側の接続を外側-内側軸に沿って視覚化できます。さらに、水平/横スライス平面は、聴覚領域と結果として生じるトノトピック勾配がどのように角度回転するかも示しています(図5)。より広い領域での対側接続の角度露出により、これらのスライスは、従来の冠状スライスよりも電気生理学的刺激および微小回路研究に適しています。
その他の利点
聴覚マイクロ回路の形成には、神経細胞の生存、シナプス形成、軸索分化、樹状突起構造、および成熟を促進する手がかりの時空間的調整が必要です。したがって、ニワトリ胚聴覚マイクロ回路の代替脳幹切片は、以下の研究トピックに使用することができる:地形的に異なる次元におけるニューロンの形態学的組織;すべての聴覚および前庭核のコネクトームを整理およびマッピングする。等周波およびトノトピック平面における回路構成の活性パターンの同定と特性評価。興奮性マイクロ回路と抑制性マイクロ回路の地形的組織と特殊なニューロン集団(核)との関係。聴覚核ニューロンの空間的位置とその予測CF17;特定のトノトピーニューロンタイプの系統的標的化;前駆細胞と保存された核へのそれらの発達を追跡する。神経回路の進化に対する細胞の遺伝的系統18;種間の比較脳幹解剖学;デイター前庭複合体(DC)19のような前庭回路の調査。前庭核間の同期とクロストーク。
異なるスライス面を用いた多面的なアプローチは、脳幹微小回路の未知の解剖学的および生物物理学的特性に関する基本的な質問に答えるのに役立つ可能性があります。良い例は、主要な聴覚核(NM、NA、NL、およびSON)と、外側レムニスカス(LLDp)、半月核(SLu)20、および接線核(TN)3の背側核を含む前庭核との関係です。ただし、このプロトコルとこれらのスライスベースの研究にはいくつかの制限があります。
注意事項と制限事項
実験を行う機関によって、倫理ガイドラインや鶏胚の取り扱いが異なる場合があります。実験動物の世話と使用に関する国立衛生研究所のガイドラインは迅速な断頭を許可していますが、鶏胚安楽死の代替方法があります21。初期発達中のニワトリ胚脳幹組織は、古い胚に比べて柔らかく繊細です。表面にいくつかの接続部と血管があり、それらを取り除くときは特に注意が必要です。組織は氷冷dACSFに保持し、生存率を高めるために95%O2/5%CO2 と灌流する必要があります。
矢状スライス法は、同側トノトピーにのみ役立ちます。このスライス方法は、冠状スライスよりも大きなスライスを提供し、その取り扱いは不安定になる可能性があります。しかしながら、他の場所で詳細に説明されているクロスニードル法を用いてスライスをトリミングすることができる22。4%LMPアガロースブロック包埋脳幹を使用すると、繊細な構造をスライスして保存できますが、過度に高温のアガロースを注がないように注意する必要があります。アガロースブロックされた脳幹を冷やした環境に~1分間置くことで素早く設定すると、スライスが電気生理学的記録に実行可能になります。
過剰量の瞬間接着剤の適用は有毒である可能性があります。それは最小限に適用する必要があり、余剰量はdACSFを交換してすぐに洗浄する必要があります。鋭角(45°)スライスの場合、アガロースブロックの角度をカットすることが重要です。鏡を使って正面の角度を見ることができ、アガロースブロックを鋭利な刃で切断します。市販のブレードにはワックスコーティングが施されている場合があり、使用前にアルコールで拭き取り、乾燥させる必要があります。軸索線維の房は皮質組織やマトリックス組織よりも硬いため、ビブラトームの切断速度と頻度を最適化する必要があります。高振幅を維持し、冷やした解剖液を使用すると、組織の損傷を防ぐことができます。
全ての溶液は新鮮に調製し、95%O 2/5%CO2をバブリングした後にCa 2+およびMg2+をACSFに添加すべきである。さもなければ、Ca2+の沈殿があるかもしれません。絵筆を使用して、ビブラトーム内のスライスを優しく処理する必要があります。可能であれば、合計スライス時間を15分未満に保ちます。ガラス製のパスツールピペットを使用して、脳幹スライスを操作できます。
電気生理学で使用されるスライスに接触するガラス製品や機器には、洗剤や腐食性の洗浄剤を使用しないでください。撮影された画像は、微分干渉コントラスト(DIC)光学系の下での厚さ200〜300μMの組織の外観を表しています。視覚的品質は免疫組織化学や電子顕微鏡よりも劣りますが、電気生理学的記録を実行するときに実験者が見るものを正確に反映しています。
背側腹側、吻側尾側、同側対側のいずれであっても、代替解剖学的軸に沿ったマイクロ回路の初期発達に関する研究は、ニワトリの聴覚脳幹では限られています。その理由の一つは、脳幹における転写コードの役割とトノトピック発生の制御がまだ完全には理解されていないためです。トップダウン変調や自発的活動などの機能現象は、 in vitroで活性を観察すると失われることがよくあります。しかし、 in vivo 研究は、これらのスライス条件でのみ可能な特異的かつ直接的な単一ニューロン記録によって補完されます。さまざまな方向に沿って脳幹組織を取得することの改良は、ニワトリの聴覚脳幹微小回路におけるトノトピック勾配の発達と複雑さに関する洞察に満ちた情報を提供する可能性があります。
The authors have nothing to disclose.
この作業は、NIH / NIDCD R01 DC017167助成金によってサポートされています。原稿の以前のバージョンに編集上のコメントを提供してくれたクリスティン・マクレランに感謝します。
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