Summary

Visualizzazione dei cambiamenti sul circuito Neuron-Glia con la tecnica di imaging del calcio

Published: April 08, 2022
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Summary

L’imaging cellulare del calcio è una metodologia versatile per studiare la segnalazione dinamica di singole cellule, su popolazioni miste in coltura o anche su animali risvegliati, basata sull’espressione di canali/recettori permeabili al calcio che danno firme funzionali uniche.

Abstract

Qui, riportiamo modelli selettivi in vitro di circuiti basati su glia (astrociti, oligodendrociti e microglia) e / o neuroni da tessuti periferici (gangli della radice dorsale) e centrali (corteccia, zona subventricolare, organoide) che sono dinamicamente studiati in termini di spostamenti di calcio. Il modello scelto per illustrare i risultati è la retina, un tessuto semplice con complesse interazioni cellulari. Il calcio è un messaggero universale coinvolto nella maggior parte dei ruoli cellulari importanti. Spieghiamo in un protocollo passo-passo come le cellule neuronali-gliali retiniche in coltura possono essere preparate e valutate, immaginando spostamenti di calcio. In questo modello, differenziamo i neuroni dalla glia in base alla loro risposta selettiva a KCl e ATP. I recettori e i canali permeabili al calcio sono espressi selettivamente in diversi compartimenti. Per analizzare le risposte al calcio, utilizziamo stampi fluorescenti raziometrici come Fura-2. Questa sonda quantifica la concentrazione libera di Ca2+ in base alle forme Ca2+-free e Ca2+-bound, presentando due diversi picchi, fondati sull’intensità di fluorescenza percepita su due lunghezze d’onda.

Introduction

A causa delle proprietà universali del calcio come secondo messaggero, questo ione è coinvolto in un vasto numero di attività di segnalazione: trascrizione genica, nascita e morte, proliferazione, migrazione e differenziazione, trasmissione sinaptica e plasticità. Quindi, un metodo in grado di tracciare le dinamiche di attivazione del calcio con fedeltà e agilità fornirebbe un modo per osservare risposte spazio-temporali uniche. Tale metodo è la tecnica di imaging del calcio cellulare, che correla i dati funzionali degli spostamenti del calcio con fenotipi cellulari specifici in base alle loro risposte distinte.

Le sonde Ca2+ sono state sviluppate per la prima volta nel 1980, con miglioramenti successivi che hanno permesso a queste molecole di essere utilizzate in saggi di cellule vive1. Come indicatore chimico, Fura-2 è considerato lo standard per le misurazioni quantitative [Ca2+]i. L’estere acetosimetilico (AM) di questo indicatore (cioè Fura-2 AM) permea facilmente la membrana cellulare e può raggiungere concentrazioni intracellulari 20 volte superiori alla diluizione di incubazione (ad esempio, [5 μM]o/[100 μM]i). Un altro vantaggio di Fura-2 è che ha una buona resistenza al fotosbiancamento; pertanto, l’imaging di questo indicatore per periodi di tempo più lunghi non influenzerà notevolmente le sue capacità di fluorescenza. Infine, Fura-2 è sensibile a una vasta gamma di livelli di calcio, da ~ 100 nM a ~ 100 μM, e ha un Kd di ~ 145 nM, che è paragonabile al riposante [Ca2 +] i2. Successivamente, l’imaging del calcio cellulare è stato sviluppato con microscopi fluorescenti e metodi di calcolo migliori, insieme a sonde raziometriche che non sono influenzate dal carico del colorante.

Ogni cellula esprime diversi dispositivi di calcio (pompe, trasportatori, recettori e canali) che contribuiscono alla risposta finale come una particolare firma. Il consiglio importante è quello di trovare risposte selettive di diversi tipi di cellule correlate con la loro espressione fenotipica. Di conseguenza, ci sono almeno due diversi recettori che operano attraverso gli spostamenti del calcio: i recettori ionotropici che permeano Ca2 + in modo veloce e recettori metabotropici lenti accoppiati a vie di segnalazione e stock intracellulari che rilasciano Ca2 + attivato da secondi messaggeri, come l’inositolo trifosfato e l’ADP-ribosio ciclico3.

Ad esempio, le cellule progenitrici esprimono la nestin nella retina immatura e mostrano recettori GABAA depolarizzati dal GABA (o muscimolo)4. Ciò accade a causa del gradiente elettrochimico Cl con alti livelli intracellulari di Cl− ; man mano che il tessuto si sviluppa, i trasportatori KCC2 passano dall’eccitazione sui progenitori all’inibizione sui neuroni GABAergici maturi5. D’altra parte, le cellule staminali che esprimono sox-2 nella zona subventricolare immatura (SVZ) dei roditori postnatali presentano anche recettori H1 metabotropici attivati dall’istamina che aumenta Il Ca2+ in modo lento6. Un secondo recettore metabotropico della famiglia par-1 (1) attivato dalla proteasi, attivato dalla trombina e a valle di G(q/11) e fosfolipasi C (PLC), fornisce lenti spostamenti di Ca2+ negli oligodendrociti (che esprimono O4 e PLP) generati da cellule staminali neurali SVZ multipotenti7.

In generale, i neuroni esprimono canali del calcio voltaggio-dipendenti e i principali recettori dei neurotrasmettitori permeabili al Ca2+, come i recettori glutamatergici (AMPA, NMDA, kainate) e periferici e centrali. Il cloruro di potassio viene solitamente utilizzato come agente depolarizzante per attivare i neuroni periferici, come i neuroni gangliari della radice dorsale8 o i neuroni centrali, come dalla zona subventricolare9 o retina10. D’altra parte, l’ATP è riconosciuto come il principale gliotrasmettitore (oltre alla D-serina), che attiva i membri P2X permeabili selettivi al Ca2 +, come P2X7 e P2X4. Entrambi i recettori presentano correnti di Ca2+ equivalenti, simili a quelle mostrate dai recettori NMDA riconosciuti come le più grandi correnti di Ca2+ attivate dai trasmettitori11. I recettori P2X7 sono altamente espressi sulle microglia, ma a una densità inferiore su astrociti e oligodendrociti, avendo un ruolo nel rilascio di citochine proinfiammatorie12. I recettori P2X7 sono espressi anche sulle cellule di Schwann13 e sulla glia di Müller nella retina14,15.

La retina è nota per mostrare quasi tutti i trasmettitori osservati nel cervello. Ad esempio, l’asse verticale (fotorecettori, cellule gangliari bipolari e retiniche) è principalmente glutamatergico, con AMPA permeabili al calcio o recettori kainate espressi in cellule OFF-bipolari e mgluR6 espresso in cellule ON-bipolari16. Curiosamente, tutti e tre i recettori si trovano anche nella glia di Müller, che sono accoppiati alle vie del calcio e dell’inositolo trifosfato17,18. L’asse inibitorio orizzontale, costituito da cellule orizzontali e amacrine, secerne non solo GABA, ma anche dopamina, acetilcolina e altri neurotrasmettitori classici. Le cellule amacrine sono i principali tipi di cellule presenti nelle colture retiniche aviarie, mostrando diversi tipi di canali gestiti dal calcio, come i canali del calcio glutamatergici, purinergici, nicotinici e voltaggio-dipendenti. Per questo motivo, questo è un ottimo modello per valutare le diverse proprietà degli spostamenti di calcio tra neuroni e glia.

Pertanto, la combinazione di diversi recettori e canali sommati a marcatori fenotipici selettivi durante lo sviluppo con distinti modelli di risposta agonista consente firme uniche in stelo, progenitore, neurone, astrocita, oligodendrocita e microglia che operano attraverso dispositivi di segnalazione selettiva.

Protocol

Tutti gli esperimenti che coinvolgono animali sono stati approvati e condotti seguendo le linee guida del Comitato istituzionale per la cura e l’uso degli animali dell’Università Federale di Rio de Janeiro, seguendo i “Principi di cura degli animali da laboratorio” (NIH, Bethesda, USA); numero di permesso IBCCF-035 per uova di gallina Livorno Bianca fecondate. 1. Preparazione delle soluzioni Preparare la soluzione di Krebs: (132 mM NaCl, 4 mM KCl, 1,4 mM MgCl2<…

Representative Results

Qui, abbiamo usato le cellule della retina in coltura dai pulcini embrionali del giorno 8 per studiare come i neuroni e la glia segnalano in termini di spostamenti di calcio. Le colture sono state preparate essenzialmente come descritto15,19 come cellule miste neurone-gliali (ad una densità di ≥ 1 x 106 cellula/piatto) in una fase di 7 giorni in vitro (Figura 1A). In alternativa, cellule neuronali arricchite preparate i…

Discussion

Abbiamo usato il tessuto retinico per dimostrare che le risposte calciche mediate da KCl o ATP sono chiaramente compartimentate in risposte neuronali e gliali, rispettivamente (Figura 1). Sebbene alcuni dati in letteratura implichino che i recettori P2X7 siano espressi in neuroni, che regolano l’attività neuronale e il rilascio di neurotrasmettitori sinaptici20, altri autori mettono in dubbio l’esistenza di recettori P2X7 neuronali. In effetti, i risultati attuali so…

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Sovvenzioni, sponsor e fonti di finanziamento: MH è destinatario di una borsa di studio CNPq di dottorato. HRF è destinatario di una borsa di studio postdoc supportata da CNPq (numero di sovvenzione HRF 152071/2020-2). RAMR è supportato da CNPq e FAPERJ (numeri di sovvenzione E-26/202.668/2018, E-26/010.002215/2019, 426342/2018-6 e 312157/2016-9 e INCT-INNT (Istituto Nazionale di Neuroscienze Traslazionali).

Materials

15 mm coverslip Paul Marienfeld GmbH & Co. KG 111550 Cell suport
510 nm long-pass filter Carl Zeiss
ATP Sigma A1852
B-27 Supplement Gibco 17504044 Suplement
CaCl2 Sigma-Aldrich C8106
CoolSNAP digital camera Roper Scientific, Trenton, NJ
D-(+)-Glucose Neon 1466
DMEM/ F-12 Gibco 12400-24 Cell culture medium
Excel Software Microsoft
Fetal Calf Serum Sigma-Aldrich F9665 Suplement
Fluorescence Microscope Axiovert 200; Carl Zeiss B 40-080
Fura-2 AM Molecular Probes F1221 Ratiometric Ca2+ indicator
Gentamicin Sulfate Calbiochem 1405-41-0 antibiotics
HEPES Sigma H4034
KCl Sigma P5405
KH2PO4 Sigma P5655
Lambda DG-4 apparatus Sutter Instrument, Novato, CA DG-4PLUS/OF30
Laminin Gibco 23017-015 Help cell adhesion
Metafluor software Universal Imaging Corp. West Chester, PA
MgCl2 Sigma M4880
Na2HPO4 Vetec 129
NaCl Isofar 310
NaHCO3 Vetec 306
PH3 platform Warner Intruments, Hamden, CT 64-0286
Pluronic F-127 Molecular Probes P6866 nonionic, surfactant
Poly-L-lysine Sigma-Aldrich P8920 Help cell adhesion
Trypsin-EDTA 0.25% Gibco 25200056 Dissociation enzyme

References

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Cite This Article
Tempone, M. H., Freitas, H. R., Schitine, C. S., de Melo Reis, R. A. Visualizing Shifts on Neuron-Glia Circuit with the Calcium Imaging Technique. J. Vis. Exp. (182), e63338, doi:10.3791/63338 (2022).

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