Gli arti ricombinanti sono un potente modello sperimentale che consente di studiare il processo di differenziazione cellulare e la generazione di modelli sotto l’influenza di segnali embrionali. Questo protocollo presenta un metodo dettagliato per generare arti ricombinanti con cellule mesodermiche di pollo, adattabili ad altri tipi di cellule ottenute da organismi diversi.
La differenziazione cellulare è il processo messo a punto dell’impegno cellulare che porta alla formazione di diversi tipi di cellule specializzate durante la creazione di tessuti e organi in via di sviluppo. Questo processo viene mantenuto attivamente in età adulta. La differenziazione cellulare è un processo continuo durante lo sviluppo e l’omeostasi degli organi. Comprendere le prime fasi della differenziazione cellulare è essenziale per conoscere altri processi complessi come la morfogenesi. Pertanto, gli arti di pollo ricombinanti sono un modello sperimentale che consente lo studio della differenziazione cellulare e della generazione di modelli sotto segnali di pattern embrionali. Questo modello sperimentale imita un ambiente in vivo ; assembla cellule riaggregate in una copertura ectodermica ottenuta da una gemma precoce dell’arto. Successivamente, gli ectodermi vengono trasferiti e impiantati in un recettore dell’embrione di pulcino per consentirne lo sviluppo. Questo test è stato utilizzato principalmente per valutare le cellule delle gemme mesodermiche degli arti; tuttavia, può essere applicato ad altre cellule staminali o progenitrici di altri organismi.
L’arto vertebrato è un modello formidabile per studiare la differenziazione cellulare, la proliferazione cellulare, la morte cellulare, la formazione di pattern e la morfogenesi 1,2. Durante lo sviluppo, gli arti emergono come rigonfiamenti dalle cellule derivate dal mesoderma1 della piastra laterale. Le gemme degli arti sono costituite da un nucleo centrale di cellule mesodermiche coperte da un ectoderma. Da questa struttura iniziale, emerge un arto intero e ben formato. Dopo che il bocciolo dell’arto si presenta, vengono riconosciuti tre assi: (1) l’asse prossima-distale ([PD] spalla alle dita), (2) l’asse dorso-ventrale ([DV] dal dorso della mano al palmo) e (3) l’anteriore-posteriore ([AP] pollice a dito). L’asse prossimale-distale dipende dalla cresta ectodermica apicale (AER), ectoderma specializzato situato sulla punta distale della gemma dell’arto. L’AER è necessario per la crescita, il mantenimento della sopravvivenza, la proliferazione e lo stato indifferenziato delle cellule che ricevono segnali 2,3. D’altra parte, la zona di attività polarizzante (ZPA) controlla il pattern anteroposteriore4, mentre il pattern dorsale ed ectoderma controlla il pattern dorsoventrale 7,8. L’integrazione della modellazione tridimensionale implica una complessa diafonia tra questi tre assi5. Nonostante la comprensione del percorso molecolare durante lo sviluppo degli arti, le domande aperte sui meccanismi che controllano il pattern e la corretta crescita per formare un intero arto rimangono senza risposta.
Edgar Zwilling sviluppò il sistema degli arti ricombinanti (RL) nel 1964 per studiare le interazioni tra le cellule mesenchimali degli arti e l’ectoderma nello sviluppo degli arti6. Il sistema RL assembla il mesoderma del germoglio dell’arto dissociato-riaggregato nell’ectoderma dell’arto embrionale per innestarlo nella parte dorsale di un embrione di pulcino donatore. I segnali forniti dall’ectoderma inducono l’espressione di geni di differenziazione e geni patterning in modo spazio-temporale, inducendo così la formazione di una struttura simile a un arto in grado di ricapitolare i programmi cellulari che si verificano durante lo sviluppo degli arti 7,8,9.
Il modello RL è prezioso per comprendere le proprietà dei componenti degli arti e l’interazione tra cellule mesodermiche ed ectodermiche6. Una RL può essere definita come una struttura simile a un arto creata dall’assemblaggio sperimentale o dalla ricombinazione di cellule mesodermiche delle gemme degli arti all’interno di una copertura ectodermica6. La morfogenesi della RL dipende dalle caratteristiche delle cellule mesodermiche (o di altri tipi) che risponderanno ai segnali di pattern ectodermico. Uno dei vantaggi di questo sistema sperimentale è la sua versatilità. Questa caratteristica permette la creazione di combinazioni multiple variando la fonte di cellule mesodermiche, come cellule di diversi stadi di sviluppo, da diverse posizioni lungo l’arto, o cellule intere (non dissociate) o riaggregate 7,8,9,10. Un altro esempio è la capacità di ottenere l’ectoderma embrionale da specie diverse dal pollo, ad esempio la tartaruga11, la quaglia o il topo12.
In questo senso, la tecnica RL aiuta a studiare lo sviluppo degli arti e le interazioni tra cellule mesenchimali ed ectodermiche degli arti da un punto di vista evolutivo. Questa tecnica ha anche un grande potenziale per analizzare la capacità di diverse fonti di cellule progenitrici di differenziarsi in una struttura simile a un arto sfruttando i segnali forniti dall’ectoderma embrionale 12,13,14. A differenza delle colture in vitro, la RL consente di valutare la differenziazione e il potenziale morfogenetico di una popolazione cellulare interpretando i segnali embrionali provenienti da un arto in via di sviluppo 9,15.
In questo protocollo, viene fornita una guida passo-passo per eseguire RL di successo con cellule di gemme di arti mesodermici riaggregati, aprendo così la possibilità di adattare questo protocollo con diverse fonti di cellule riaggregate o anche diverse fonti di ectoderma.
In generale, il protocollo RL può essere suddiviso in cinque fasi: (1) incubazione embrionale, (2) ottenimento di cellule mesodermiche degli arti per riempire gli ectodermi, (3) ottenimento degli ectodermi, (4) assemblaggio di cellule mesodermiche all’interno delle coperture ectodermiche e (5) trapianto degli ectodermi riempiti negli embrioni ospiti. Il principale limite della tecnica RL è il protocollo lungo e dettagliato, che ha molti punti critici che richiedono pazienza per essere eseguiti in modo appropriato. Per …
The authors have nothing to disclose.
Ringraziamo Estefania Garay-Pacheco per le immagini in Figura 2 e Maria Valeria Chimal-Montes de Oca per l’opera d’arte. Questo lavoro è stato sostenuto dalla Dirección General de Asuntos del Personal Académico (DGAPA)-Universidad Nacional Autónoma de México [numeri di sovvenzione IN211117 e IN213314] e dal Consejo Nacional de Ciencia y Tecnología (CONACyT) [numero di sovvenzione 1887 CONACyT-Fronteras de la Ciencia] assegnato a JC-M. JC M-L ha ricevuto una borsa di studio post-dottorato dal Consejo Nacional de Ciencia y Tecnología (CONACyT-Fronteras de la Ciencia-1887).
Alcian Blue 8GX | Sigma | A5268 | |
Angled slit knife | Alcon | 2.75mm DB | |
Blunt forceps | Fine Science Tools | 11052-10 | |
Collagenase type IV | Gibco | 1704-019 | |
DMEM-HG | Sigma | D5796 | |
Egg incubator | Incumatic de Mexico | Incumatic 1000 | |
Fetal Bovine Serum | Gibco | 16000069 | |
Fine surgical forceps | Fine Science Tools | 9115-10 | |
Hanks Balanced Salt Solution | Sigma | H6648 | |
Microcentrifuge | Eppendorf | 5417R | |
Micropipet | NA | NA | |
Palladium wire | GoodFellow | 7440 05-3 | |
Petri dish | Nest | 705001 | |
Pippette | crmglobe | PF1016 | |
Stereomicroscope | Zeiss | Stemi DV4 | |
Tape | NA | NA | |
Trypsin porcine | Merck | 9002 07-7 | |
Tungsten needle | GoodFellow | E74-15096/01 |