Bu makalede, geniş alan floresan mikroskopisi kullanılarak mobil, tek moleküllü Förster rezonans enerji transferi (smFRET) tabanlı probların mekansal analizi için bir yöntem sunulmaktadır. Yeni geliştirilen yazılım araç seti, doğru FRET verimliliği ve moleküler konumlar da dahil olmak üzere hareketli probların smFRET zaman izlerinin zamanın işlevleri olarak belirlenmesini sağlar.
Tek moleküllü Förster rezonans enerji transferi (smFRET), nanometre altından nanometre aralığına olan mesafeleri rapor eden çok yönlü bir tekniktir. Moleküler kuvvetlerin ölçümü, biyomoleküllerin konformasyonel dinamiklerinin karakterizasyonu, proteinlerin hücre içi kolokalizasyonunun gözlemlenmesi ve reseptör-ligand etkileşim sürelerinin belirlenmesi dahil olmak üzere çok çeşitli biyofiziksel ve moleküler biyolojik deneylerde kullanılmıştır. Geniş alan mikroskopi konfigürasyonunda, deneyler genellikle yüzey hareketsiz problar kullanılarak gerçekleştirilir. Burada, tek moleküllü izlemeyi alternatif uyarlama (ALEX) smFRET deneyleriyle birleştiren bir yöntem sunulmuştur ve plazma membranlarında veya cam destekli lipid iki katmanlı yüzeye bağlı, ancak mobil probların smFRET zaman izlerinin elde edilmesine izin verir. Kaydedilen verilerin analizi için, (i) floresan sinyallerin yerelleştirilmesi, (ii) tek parçacıklı izleme, (iii) düzeltme faktörleri de dahil olmak üzere FRET ile ilgili miktarların belirlenmesi, (iv) smFRET izlerinin sıkı bir şekilde doğrulanması ve (v) sonuçların sezgisel sunumuna destek olan otomatik, açık kaynaklı bir yazılım koleksiyonu geliştirilmiştir. Oluşturulan veriler, örneğin probların difüzyon davranışlarının değerlendirilmesi veya FRET geçişlerinin araştırılması gibi özel yazılımlar aracılığıyla daha fazla keşif için girdi olarak kullanılabilir.
Förster rezonans enerji transferi (FRET), nanometre altı çözünürlükte süreçlerin araştırılmasına izin verdiği için moleküler biyolojik ve biyofiziksel araştırmalarda önemli bir sürücü olmuştur. Donör ve kabul eden floroforlar arasındaki enerji transferinin verimliliği, nanometre altı ile nanometre aralığındaki boya arası mesafeye güçlü bir şekilde bağlı olduğundan, biyomoleküllerin statik ve dinamik uyumunu keşfetmek için spektroskopik bir cetvel olarak etkin bir şekilde kullanılmıştır1,2,3,4. Ek olarak, FRET fenomeni, membranla ilişkili ve hücre içi proteinlerin toplu düzeyde kolokalizasyon çalışmaları için yaygın olarak kullanılmaktadır5,6. Son yirmi yılda, yöntem zamansal ve mekansal çözünürlüğü önemli ölçüde artırmaya yardımcı olan ve heterojen örneklerdeki nadir alt nüfusları bile çözen smFRET olaylarını izlemek için uyarlandı7. Bu tekniklerle donatılmış, RNA polimeraz II8’in transkript işleme hızı, DNA polimerazlarının replikasyon hızı9,10, nükleozom translokasyon oranı11, birleştirilmiş spliceosomes12 transkript birleştirme ve duraklama oranı, ribozomal subpopulasyonların aktivitesi13 ve kinesin motorlarının yürüme hızı14 gibi moleküler makinelerin dinamiklerine benzersiz içgörüler kazandırıldı14 , birkaç isim vermek için. Reseptör-ligand etkileşim süreleri15 ve moleküler kuvvetler16 ölçülmüştir.
Yoğunluk bazlı smFRET çalışmaları tipik olarak FRET verimliliğini ölçmek için duyarlı emisyona dayanır: emisyon yolundaki bir ışın ayırıcı, donör uyarılması üzerine donör ve kabul edici floroforlardan kaynaklanan ışığı mekansal olarak ayırır ve bireysel floresan yoğunluklarının ölçülmesine izin verir. Verimlilik daha sonra toplam foton sayısına göre alıcı tarafından yayılan fotonların fraksiyonu olarak hesaplanabilir17. Buna ek olarak, donör ekscitasyonunu (ALEX) takiben kabul eden heyecan, FRET olaylarının stoichiometry ölçümüne izin vererek, örneğin fotobleached acceptor fluorophore18 içeren problardan kaynaklanan sinyallerden kaynaklanan gerçek düşük FRET sinyalleri arasındaki ayrımcılığa yardımcı olur.
Tek moleküllü FRET deneyleri genellikle iki yoldan biriyle gerçekleştirilir. İlk olarak, numune hacmindeki küçük bir bölge konfokal mikroskop kullanılarak aydınlattır. Çözeltideki tek prob molekülleri odak hacmi içinde yaygınlaşarak gerçekleştiğinde heyecanlanırlar. Bu teknikle, mikrosaniye altı zaman çözünürlüğünü sağlayan hızlı foton sayma dedektörleri kullanılabilir. İkincisi, problar yüzeylerde özellikle hareketsiz hale getirilir ve genellikle arka plan floresansını en aza indirmek için toplam iç yansıma (TIR) konfigürasyonu kullanılarak geniş alan mikroskopisi ile izlenir. Prob hareketsizleştirme, ilk yaklaşımı kullanmaktan çok daha uzun kayıt süreleri sağlar. Buna ek olarak, daha büyük görüş alanı paralel olarak birden çok probun izlenmesine izin verdi. Kamera ihtiyacı, bu yöntemi yukarıda açıklanana kıyasla yavaşlatır. Zaman çözünürlüğü milisaniye ile ikinci aralık arasında sınırlıdır.
Örneğin, dinamik süreçleri milisaniye ile ikinci zaman ölçeğinde incelemek için uzun süreli izlemeler gerekiyorsa, floresan patlamaları genellikle çok kısa olduğu için ilk yöntem uygulanamaz. İkinci yaklaşım, hareketsizleştirme mümkün olmadığı zaman, örneğin hücre zarı içinde yayılan probları içeren canlı hücre deneylerinde başarısız olur. Ayrıca, biyolojik model sistemlerinin temas edilen yüzeyin hareketliliğine bağlı olarak tepkilerini önemli ölçüde değiştirebildiği görülmüştür16.
Geçtiğimiz 19 yılında mobil FRET problarını kaydeden kombine smFRET ve tek parçacıklı izleme deneyleri gerçekleştirilirken, verilerin değerlendirilmesi için kamuya açık bir yazılım bulunmamaktadır. Bu, smFRET verimliliği ve stoichiometry, piksel altı doğruluğuna sahip pozisyonlar ve zamanın işlevleri olarak floresan yoğunlukları da dahil olmak üzere mobil floresan probların birden fazla özelliğinin belirlenmesine izin veren yeni bir analiz platformunun geliştirilmesine neden oldu. Sadece doğru sentezlenmiş ve işlevsel tek prob moleküllerini seçmek için adım adım ağartma davranışını, en yakın komşu mesafelerini, emisyon yoğunluklarını ve diğer özellikleri inceleyerek elde edilen izleri filtreleme yöntemleri oluşturulmuştur. Yazılım ayrıca güvenilir, nicel smFRET verileri üretmek için çok ayrıntılı bir çalışmada yakın zamanda kararlaştırılan deneysel ve analitik teknikleri de desteklemektedir17. Özellikle, uygulama FRET verimliliği ve stoichiometry hesaplaması için doğrulanmış prosedürlere uyar. Donör emisyon kanalı IDD ve kabul eden emisyon kanalı IDA’daki donör ekscitasyonu üzerine floresan yoğunlukları, Eq (1) kullanılarak görünür FRET verimliliğinin hesaplanmasında kullanılır.
(1)
Kabul edenin IAA’sı üzerine kabul eden emisyon kanalındaki floresan yoğunluğunun yardımıyla, görünür stoichiometry Eq (2) kullanılarak hesaplanır.
(2)
FRET verimliliği E ve stoichiometry S, dört düzeltme faktörü göz önünde bulundurularak Eapp ve Sapp’tan türetilebilir.
α, donör floresanının alıcı emisyon kanalına sızdırılmasını açıklar ve sadece donör floroforları içeren bir örnek kullanılarak veya alıcının ağartıldığı yörüngelerin bölümlerini analiz ederek belirlenebilir. δ, bağışçının donör ekscitasyon ışık kaynağı tarafından doğrudan çıkarılması için düzeltilir ve sadece alıcı floroforlu bir örnek kullanılarak veya donörün ağartıldığı yörüngelerin bölümlerini analiz ederek ölçülebilir.
.
γ, donör ve alıcı emisyon kanallarındaki farklı algılama verimliliklerini ve floroforların farklı kuantum verimliliklerini düzeltmek için IDD’yi ölçeklendirir. Faktör, yüksek FRET verimliliğine sahip yörüngelerde alıcı ağartma üzerine donör yoğunluğundaki artışı analiz ederek veya birden fazla ayrıK FRET durumlarını içeren bir örnek çalışılarak hesaplanabilir.
β, IAA’yı donör ve alıcı uyarımının farklı verimliliklerini düzeltmek için ölçeklendirir. Γ alıcı ağartma analizi ile tespit edilirse, bilinen donör-kabul oranı örneğinden β hesaplanabilir21. Aksi takdirde, çok durumlu FRET örneği de β verir.
Düzeltmeler birlikte, Düzeltilmiş FRET verimliliğinin Eq (3) kullanılarak hesaplanmasına izin verir.
(3)
ve Eq (4) kullanılarak düzeltilmiş stoichiometry.
(4)
İdeal olarak, 1:1 donör-kabul oranı için düzeltilmiş stoichiometry S = 0.5 verir. Uygulamada, azaltılmış sinyal-gürültü oranı, ölçülen S değerlerinin yayılmasını sağlar ve yalnızca donör sinyallerinden (S = 1) ve yalnızca alıcı sinyallerinden (S = 0) ayrımcılığı engeller. Elde edilen zaman izleri, mekansal kuvvet profilleri16, tek moleküllü olayların hareketliliği22 veya farklı durumlar arasındaki geçiş kinetiği gibi bilgileri elde etmek için tek molekül yörüngelerinin daha ayrıntılı bir analizi için giriş olarak kullanılabilir1.
Aşağıdaki protokolde, smFRET izleme deneyleri için deneysel parametreler ve prosedürlerin yanı sıra yeni geliştirilen yazılım paketini kullanarak veri analizinin arkasındaki çalışma ilkesi açıklanmaktadır. Deneysel verilerin eldei için, aşağıdaki gereksinimleri karşılayan bir mikroskopi kurulumu kullanılması önerilir: i) tek boya moleküllerinin emisyonunu tespit etme yeteneği; ii) geniş alan aydınlatması: özellikle canlı hücre deneyleri için toplam iç yansıma (TIR23,24,25) konfigürasyonu önerilir; iii) emisyon ışığının dalga boylarına göre uzamsal olarak ayrılması, donör ve alıcı floresan aynı kamera çipinin farklı bölgelerine yansıtılır25 veya farklı kameralar; iv) donör ve alıcı uyarılması için ışık kaynaklarının milisaniye hassasiyetle modülasyonu, örneğin doğrudan modüle edilebilir lazerler veya acousto-optik modülatörler aracılığıyla modülasyon. Bu, floroforların fotobleachingini en aza indirmek için stroboscopic aydınlatmaya ve stoichiometries belirlemek için alternatif uyarmaya izin eder; v) PIMS Python paketi26 tarafından okunabilecek bir biçimde kaydedilen görüntü sırası başına bir dosyanın çıktısı. Özellikle, çok sayfalı TIFF dosyaları desteklenir.
Bu makalede, mobil ancak yüzeye bağlı prob moleküllerinden kaynaklanan smFRET verilerinin otomatik kayıtları ve nicel analizi için bir işlem hattı ayrıntılı olarak açıklanmaktadır. Yüzey hareketsiz probları veya probların bir konfokal eksitasyon hacmine girip çıkmasını içeren smFRET deneylerine yönelik iki baskın yaklaşımı tamamlar17. Zamanın bir fonksiyonu olarak doğru FRET verimliliğini ve moleküler pozisyonları sağlar. Bu nedenle, geçiş kinetiği1, FRET histogramları39 veya iki boyutlu difüzyon22’yi ölçmek için özel analiz programları için giriş olarak kullanılabilir.
Yazılım, Kullanıcıya ücretsiz kullanım, değişiklik ve yeniden dağıtım hakkı veren Açık Kaynak Girişimi tarafından onaylanan ücretsiz ve açık kaynaklı bir lisans altında piyasaya sürülür. Github, hataları bildirerek veya code40’a katkıda bulunarak yazılımı elde etmeyi ve geliştirme sürecine katılmayı mümkün olduğunca kolaylaştırmak için bir geliştirme ve dağıtım platformu olarak seçildi. Python ile yazılan yazılım, tescilli bileşenlere bağlı değildir. Jupyter dizüstü bilgisayarların kullanıcı arayüzü olarak seçimi, her analiz adımında verilerin incelenmesini kolaylaştırır ve boru hattının özellikle eldeki deneysel sistem için uyarlayıp genişletilmesini sağlar. Sdt-python library32 temel görevi görür ve tek moleküllü lokalizasyon, difüzyon analizi, floresan yoğunluğu analizi, renk kanalı kaydı, kolokalizasyon analizi ve yatırım getirisi işleme gibi floresan mikroskopi verilerini değerlendirmek için işlevsellik uygular.
Prensip olarak, tek parçacıklı izleme tek, iki veya üç boyutlu sistemlerde yapılabilir. Burada, tek moleküllü analiz boru hattı 2D mobil sistemlerin çalışmasına göre uyarlandı. Bu seçim, mobil floresan probları sunmak için düzlem destekli lipid bilayerler (SLB’ler) gibi basit sistemlerin kullanılabilirliğini yansıtır. Bu tür lipid bilayer sistemleri tipik olarak, toplu fraksiyonun SLB’nin temel fizikokimyasal parametrelerini (faz ve viskozite gibi) belirlediği ve küçük fraksiyonun biyomoleküller için bağlanma bölgeleri sağladığı iki veya daha fazla fosfolipid moieties oluşur. Bu bağlanma bölgeleri, hevesli veya streptavidin bazlı protein platformları için biyotinilasyonlu fosfolipidler veya histidin etiketleri ile protein platformları için nikel-NTA konjuge fosfolipidler olabilir41. Proteinleri SLB’ye bağlamak için uygun platformun seçimi bilimsel soruya bağlıdır. Okuyucular, başarıyla kullanılan stratejilere örnek olarak literatür16,38,42’ye başvurabilir. Numunedeki probların yoğunluğu, çakışan nokta yayılma işlevlerini önlemek için yeterince düşük olmalıdır; tipik olarak, μm2 başına 0,1 molekülden daha az önerilir. Uygun bir prob yoğunluğunu gösteren bir örnek için temsili sonuçlar bölümüne (özellikle Şekil 6) bakın. Analiz yöntemi, canlı hücrelerin plazma zarında yaygın olan tek floresan etiketli protein molekülleri için de geçerlidir.
SmFRET deneylerinin kritik bir yönü, FRET problarının kendilerinin üretimi ve karakterizasyonudur. Bir FRET çifti için florofor seçerken, Förster yarıçapları beklenen boyalar arası mesafelerle eşleşmelidir43. Fotobleachinge dayanıklı boyalar uzun süre iz bırakmaları nedeniyle tercih edilir. Bununla birlikte, yüksek ağartma oranları için, kolokalize moleküllerden kaynaklanan multiemitter olaylarını adım adım fotobleaching analizi ile tanımak için bir florofor türü kullanılabilir; protokol bölümündeki 8.1.4 adımına bakın. Florofor çiftleri, özellikle ve etkileşim moleküllerine spesifik olarak bağlanmalı ve intra-veya intermoleküler FRET çiftleri oluşturmalıdır.
smFRET’i diğer hazır tekniklerle birleştirmek, uzamsal çözünürlüğünü kırınım sınırının ötesine (STED44 aracılığıyla) artırabilir. Burada sunulan smFRET izleme algoritması, yaklaşımın yeni deneysel ayarlara ve model sistemlerine uygulanabilirliğini genişletiyor. Bu, (i) mobil biyomoleküllerin stoichiometristindeki kinetik değişiklikler, (ii) mobil biyomoleküllerin dinamik ilişkisi, (iii) serbestçe yayılan reaktanların enzymatic reaksiyonlarının oranı ve (iv) mobil biyomoleküllerin konformasyonel değişikliklerinin kinetiği çalışmalarını içerir. İlk iki örnek, intermoleküler FRET’i gösteren model sistemleri gerektirir, yani donör ve alıcı, ilgi çekici biyomoleküler varlıkları ayırmak için eşlenir. İkinci örnekler, aynı moleküler varlık (intramoleküler FRET) içinde donör ve alıcı taşıyan biyosensörlerden yararlanabilir.
intramoleküler FRET tabanlı sensörler, biyomoleküllerin içsel konformasyonel değişimleri1,2,3,4, endojen veya dış kuvvet yükünün neden olduğu konformasyonel değişiklikler (moleküler kuvvet sensörleri16) veya kalsiyum45 ve pH46 gibi nano ortamdaki iyon konsantrasyonları hakkında fikir verebilir . Model sistemine ve tercih edilen ankraj platformuna bağlı olarak, bu tür smFRET olayları 2D veya 3D olarak izlenebilir: (i) bir plazma zarı içindeki reseptör-ligand etkileşim sürelerinin ölçülmesi, membran bağlantılı sinyal amplifikasyon basamaklarının birlikteliği ve yüzey reseptörlerinin stoichiometry değişiklikleri için smFRET olaylarının düzlemsel takibi; (ii) smFRET olaylarının hacim takibi, canlı hücrelerde veya in vitro yeniden oluşturulmuş sistemlerde herhangi bir intra-veya intermoleküler FRET probu için kullanılabilir.
SmFRET izleme yöntemi esas olarak intramoleküler FRET probları göz önünde bulundurularak geliştirilmiştir. Bu problar, aglomeralanmış ve yanlış sentezlenmiş (örneğin, tamamlanmamış etiketlenmiş) moleküllerden ve floroforlardan birinin fotobleached olduğu problardan gelen verileri reddetmek için sömürülen sabit ve iyi bilinen sayıda floresan etikete sahiptir. Bununla birlikte, filtreleme adımlarını ayarlayarak, yöntem intermoleküler FRET problarına da uygulanabilir. Örneğin, sadece tek bir donör ve tek bir kabul eden florofor içeren molekülleri kabul etmek yerine, donör ve alıcı boyalarının mekansal yörüngelerini inceleyebilir ve örneğin, donör-kabul eden yörüngeleri birlikte dağıtmak için seçebilirsiniz.
3D-DAOSTORM algoritması, emisyon ışını yolundaki silindirik bir lens nedeniyle astigmat üzerinden optik eksen boyunca bir sinyalin konumunu belirleme desteğine sahip olduğu için, 3D deneyler analiz boru hattına kolayca entegre edilebilir. Bu durumda, kabul edenin çıkarılması üzerine gelen kabul eden sinyal, stoichiometry ve eksenel pozisyonu belirlemeye yarar. Analiz yazılımı, büyük ölçüde otomasyon ve filtreleme şemalarını kullanarak hareketsiz problar içeren deneylerden elde edilen verileri değerlendirmek için de kullanılabilir. Aslında, Holliday kavşaklarından gelen smFRET verimlilik veri kümeleri jel fazlı bilayers38 üzerinde hareketsiz hale getirildi yazılımın erken bir sürümü kullanılarak analiz edildi.
The authors have nothing to disclose.
Bu çalışma Avusturya Bilim Fonu (FWF) projeleri P30214-N36, P32307-B ve Viyana Bilim ve Teknoloji Fonu (WWTF) LS13-030 tarafından desteklendi.
1,2-dioleoyl-sn-glycero-3-[(N-(5-amino-1-carboxypentyl)iminodiacetic acid)succinyl] (nickel salt) (Ni-NTA-DOGS) | Avanti Polar Lipids | 790404P | |
1,2-dioleoyl-sn-glycero-3-phosphocholine (DOPC) | Avanti Polar Lipids | 850375P | |
1-palmitoyl-2-oleoyl-glycero-3-phosphocholine (POPC) | Avanti Polar Lipids | 850457P | |
α Plan-FLUAR 100x/1.45 oil objective | Zeiss | 000000-1084-514 | |
Axio Observer microscope body | Zeiss | ||
Bandpass filter | Chroma Technology Corp | ET570/60m | donor emission filter |
Bandpass filter | Chroma Technology Corp | ET675/50m | acceptor emission filter |
conda-forge | conda-forge community | community-maintaned Python package repository for Anaconda/miniconda | |
Coverslips 60 mm x 24 mm #1.5 | MENZEL | ||
Dichroic mirror | Semrock Inc | FF640-FDi01-25×36 | separation of donor and acceptor emission |
Dichroic mirror (quad band) | Semrock Inc | Di01-R405/488/532/635-25×36 | separation of excitation and emission light |
DPBS | Sigma-Aldrich | D8537 | |
FCS | Sigma-Aldrich | F7524 | for imaging buffer |
fret-analysis | Schütz group at TU Wien | Python package for smFRET data analysis; version 3 | |
Fura-2 AM | Thermo Fisher Scientific | 11524766 | |
HBSS | Sigma-Aldrich | H8264 | for imaging buffer |
iBeam Smart 405-S 405 nm laser | Toptica Photonics AG | ||
iXon Ultra 897 EMCCD camera | Andor Technology Ltd | ||
Lab-Tek chambers (8 wells) | Thermo Fisher Scientific | 177402PK | for sample preparation and imaging |
Millenia Prime 532 nm laser | Spectra Physics | ||
miniconda | Anaconda Inc. | Python 3 distribution. Min. version: 3.7 | |
Monovalent streptavidin (plasmids for bacterial expression) | Addgene | 20860 & 20859 | |
OBIS 640 nm laser | Coherent Inc | 1185055 | |
Optosplit II | Cairn Research | ||
Ovalbumin | Sigma-Aldrich | A5253 | for imaging buffer |
Plasma cleaner | Harrick Plasma | PDC-002 | |
sdt-python | Schütz group at TU Wien | Python library for data analysis; version 17 | |
TetraSpek bead size kit | Thermo Fisher Scientific | T14792 | Randomly distributed, immobilized fiducial markers for image registration |
USC500TH Ultrasound bath | VWR | for SUV formation |