本稿では、広視野蛍光顕微鏡を用いた移動式単分子フェルスター共鳴エネルギー伝達(smFRET)ベースのプローブの時空間解析方法を紹介する。新開発のソフトウェアツールキットは、正しいFRET効率や分子位置を含む移動プローブのsmFRET時間トレースを時間の関数として決定することを可能にします。
単一分子フェルスター共鳴エネルギー伝達(smFRET)は、サブナノメートルからナノメートルの範囲の距離を報告する多目的な技術です。分子力の測定、生体分子の立体構造ダイナミクスの特徴づけ、タンパク質の細胞内共局在の観察、受容体リガンド相互作用時間の測定など、生物物理学的・分子生物学的実験の幅広い分野で使用されています。広視野顕微鏡構成では、実験は通常、表面固定化プローブを用いて行われる。ここでは、単一分子追跡と交互励起(ALEX)smFRET実験を組み合わせた方法が提示され、表面結合した、しかもガラス支持脂質二重層中の移動式プローブのsmFRET時間トレースの取得が可能となる。記録されたデータの分析のために、(i)蛍光シグナルの局在化、(ii)単粒子追跡、(iii)補正因子を含むFRET関連量の決定、(iv)smFRETトレースの厳格な検証、および(v)結果の直感的な提示を支持する自動化されたオープンソースソフトウェアコレクションが開発されました。生成されたデータは、プローブの拡散挙動の評価やFRET遷移の調査など、特殊なソフトウェアを介してさらなる探査のための入力として便利に使用できます。
フェルスター共鳴エネルギー伝達(FRET)は、ナノメートル以下の分解能でプロセスの調査を可能にする分子生物学的および生物物理学的研究において主要な原動力となっています。ドナーとアクセプター蛍光体との間のエネルギー伝達の効率は、サブナノメートルからナノメートルの範囲における色素間距離に強く依存するため、生体分子の静的かつ動的な立体構造を探索する分光定規として有効に使用されています1,2,3,4.また、FRET現象はバルクレベル5,6で膜関連タンパク質と細胞内タンパク質の共局在化研究に広く用いられている。過去20年間で、この方法はsmFRETイベントを監視するために適応され、時間的および空間的分解能を大幅に増加させ、異種サンプル中のまれな亜集団でさえも解決しました。これらの技術を備えた、RNAポリメラーゼII8の転写処理率、DNAポリメラーゼ9,10の複製速度、ヌクレオソーム転座率11、組み立てられたスプリセソーム12の転写スプライシングおよび失速速度、リボソーム亜集団13の活性、およびkinininモータの歩行速度などの分子機械のダイナミクスにユニークな洞察を得たを挙に、いくつか名前を付けます。受容体リガンド相互作用持続時間15及び分子力16が定量化されている。
強度ベースのsmFRET研究は、通常、FRET効率を測定するために感作発光に依存しています:放出経路のビームスプリッターは、ドナー励起時にドナーとアクセプター蛍光体から発生する光を空間的に分離し、個々の蛍光強度の定量化を可能にします。その後、効率は、総フォトン数17に対してアクセクターによって放出される光子の割合として計算することができる。また、ドナー励起(ALEX)に続くアクセクサ励起は、FRET事象のストイチオメトリーの測定を可能にし、例えば、光漂白されたアクセクターフルオロフォア18を特徴とするプローブから生じる信号からの真の低FRET信号間の識別を助ける。
単一分子FRET実験は、一般的に2つの方法のいずれかで行われます。まず、サンプル体積の小さな領域を共焦点顕微鏡を用いて照光する。溶液中の単一のプローブ分子は、焦点体積内で拡散する場合に励起されます。この技術により、高速光子計数検出器を使用して、マイクロ秒以下の時間分解能を可能にします。第二に、プローブは表面に特異的に固定化され、広視野顕微鏡を介して監視され、多くの場合、バックグラウンド蛍光を最小限に抑えるために全内部反射(TIR)構成を使用する。プローブの固定化により、最初のアプローチを使用する場合よりもはるかに長い記録時間が可能になります。さらに、視野が大きいほど、複数のプローブを並列で監視できます。カメラの必要性は、この方法は、上記の方法と比較して遅くなります。時間の解像度は、ミリ秒から 2 番目の範囲に制限されます。
長い時間のトレースが必要な場合、例えば、ミリ秒から秒の時間スケールで動的プロセスを研究するために、蛍光バーストは通常短すぎるため、最初の方法は適用されません。第2のアプローチは、例えば細胞膜内に拡散するプローブを特徴とする生細胞実験において、固定化が実現不可能な場合には失敗する。さらに、生体モデルシステムは接触したsurface16の移動度に応じてその応答を劇的に変化させることができることが観察されている。
SmFRETと単粒子追跡実験を組み合わせて、モバイルFRETプローブを記録する実験が過去19回に行われてきたが、データの評価に公的に利用可能なソフトウェアはない。これにより、smFRET効率やストイチオメトリー、サブピクセル精度の位置、時間の関数としての蛍光強度など、移動式蛍光プローブの複数の特性を決定できる新しい分析プラットフォームの開発が促されました。段階的な漂白挙動、近傍距離、発光強度、およびその他の形質を調べることによって得られた痕跡をフィルタリングする方法を確立し、正しく合成され、機能的な単一プローブ分子を排他的に選択した。ソフトウェアはまた、信頼性の高い、定量的なsmFRET data17を生成するために、最近の多実験室研究で合意された実験的および分析的な技術をサポートしています。特に、この実装は、FRET効率と量イチオメトリーの計算のための検証済みの手順に従います。ドナー発光チャネルIDDおよびアクセプタ排出チャネルIDAにおけるドナー励起時の蛍光強度は、Eq(1)を用いた見かけのFRET効率効率の計算に使用される。
(1)
アクセクサ励起IAA時のアクセクサ発光チャネルにおける蛍光強度の助けを借りて、Eq(2)を用いて見かけのストイチオメトリーを計算する。
(2)
FRET効率とストイチオメトリーSは、4つの補正因子を考慮することで、EappとSappから導き出すことができます。
αは、アクセプター発光チャネルへのドナー蛍光の漏出を記述し、ドナー蛍光HORAのみを含むサンプルを使用して、またはアクセプターが漂白された軌道の一部を分析することによって決定することができる。δは、ドナー励起光源によるアクセプタの直接励起を補正し、アクセプタ蛍光色素のみを含むサンプルを使用するか、ドナーが漂白された軌道の一部を分析することによって測定することができる。
.
γは、ドナーとアクセプターの放出チャネルの発散検出効率とフルオロフォアの異なる量子効率を是正するためにIDDをスケーリングします。この係数は、高いFRET効率20の軌道におけるアクソシドール漂白時のドナー強度の増加を分析するか、または複数の離散FRET状態を特徴とするサンプルを研究することによって計算することができる。
βは、ドナーとアクセクサの励起の異なる効率を修正するためにIAAをスケーリングします。γがアクサンパクサ漂白分析によって決定された場合、βは、既知のドナー間受け入れ子比21のサンプルから計算することができる。それ以外の場合、マルチステート FRET サンプルもβを生成します。
一緒に、補正は、Eq(3)を使用して補正FRET効率の計算を可能にする。
(3)
そして、Eq(4)を用いて修正されたストイチオメトリー。
(4)
理想的には、1:1ドナー対アクセクサ比に対する修正されたストイチオメトリーは 、S = 0.5を与える。実際には、信号対雑音比が低下すると 、Sの測定値の広がりが生じ、ドナー専用信号(S = 1)およびアクセクサ専用信号(S = 0)からの差別が妨げられます。結果として得られる時間トレースは、単一分子軌道のより詳細な分析のための入力として使用して、時空間的な力プロファイル16、単一分子事象22の移動性、または異なる状態間の遷移運動論などの情報を得ることができる1。
以下のプロトコルは、smFRET追跡実験の実験パラメータと手順、および新しく開発されたソフトウェアスイートを用いたデータ解析の動作原理について説明します。実験データの取得には、以下の要件を満たす顕微鏡のセットアップを使用することをお勧めします: i) 単一色素分子の放出を検出する能力;ii) 広視野照明: 特にライブセル実験では、全内部反射(TIR23,24,25)構成が推奨されます。iii)ドナーとアクセプター蛍光が同じカメラチップ25または異なるカメラの異なる領域に投影されるような波長に応じた発光光の空間的分離。iv)ドナーおよびアクセプター励起の光源の変調をミリ秒の精度で、例えば、直接変調可能なレーザーまたはアクロス視変調器を介した変調を使用する。これにより、ストロボスコープ照明は、蛍光色素の光の漂白を最小限に抑えるだけでなく、色素数を決定するために交互に興奮を可能にします。v) PIMS Python パッケージ26で読み取ることができる形式で記録された画像シーケンスごとに 1 つのファイルの出力。特に、複数ページの TIFF ファイルがサポートされています。
この記事では、モバイルでありながら表面につながれたプローブ分子から生じるsmFRETデータの自動記録および定量分析のためのパイプラインについて詳しく説明します。これは、表面固定化プローブまたは共焦点励起ボリューム17に出入りする溶液中で拡散するプローブのいずれかを含む、smFRET実験に対する2つの主要なアプローチを補完する。それは時間の機能として正しいFRET効率および分子位置を提供する。したがって、遷移キネティクス1、FRETヒストグラム39、または2次元拡散22を定量化する特殊な分析プログラムの入力として使用することができる。
ソフトウェアは、ユーザーに無料の使用、変更、再配布の永久権利を付与するオープンソースイニシアチブによって承認された無料のオープンソースライセンスの下でリリースされます。Github は、ソフトウェアを入手し、バグを報告したり、code40 を提供することで開発プロセスに参加することを可能な限り簡単にする開発と配布プラットフォームとして選ばれました。Pythonで書かれたソフトウェアは、独自のコンポーネントに依存しません。Jupyter ノートブックをユーザー インターフェイスとして選択することで、解析の各ステップでデータの検査が容易になり、実験システム専用のパイプラインの調整と拡張が可能になります。 sdt-python library32 は、単一分子局在化、拡散解析、蛍光強度解析、カラーチャネル登録、共局在分析、ROI処理などの蛍光顕微鏡データを評価する機能を実装します。
原則として、単一粒子追跡は、1次元、2次元、または3次元システムで実行できます。ここでは、単分子分析パイプラインを2Dモバイルシステムの研究に合わせて調整しました。この選択は、平面で支持される脂質二重層(SLB)のような単純なシステムの利用可能性を反映して、移動式蛍光プローブを提示する。このような脂質二重層系は、典型的には、2つ以上のリン脂質部分から構成され、バルク分率はSLBの主要な物理化学的パラメータ(位相および粘度など)を決定し、マイナーな分画は生体分子の付着部位を提供する。これらの付着部位は、アビジンまたはストレプトアビジンベースのタンパク質プラットフォームまたはヒスチジンタグ41を有するタンパク質プラットフォーム用のニッケルNTA共役リン脂質に対するリン脂質をビオチン化することができる。SLBにタンパク質をリンクするための適切なプラットフォームの選択は、科学的な質問に依存します。読者は、成功した戦略の例については、文献16,38,42を参照することができます。サンプル内のプローブの密度は、ポイントスプレッド関数の重複を避けるために十分に低くする必要があります。通常、μm2当たり0.1分子未満が推奨されます。適切なプローブ密度を示す例については、代表的な結果セクション(特に図6)を参照してください。この分析方法は、生細胞の細胞膜に拡散する単一の蛍光標識タンパク質分子にも適用可能である。
smFRET実験の重要な側面の1つは、FRETプローブ自体の生産と特性化です。FRET ペアのフルオロフォアを選択する場合、フェルスター半径は、予想される色間距離43 と一致する必要があります。フォトブリーチに耐性のある染料は、長い時間の痕跡をもたらすので好ましい。しかし、漂白率が上昇した場合、1種のフルオロフォア種を利用して、段階的な光漂白分析を介して共局化分子から発生する多元化事象を認識することができる。プロトコルのセクションのステップ8.1.4を参照してください。フルオロフォア対は、部位特異的に、そして関心のある分子に共有結合し、分子内または分子間FRETペアを形成するべきである。
smFRETを他の容易に利用できる技術と組み合わせることで、(STED44経由で)回折限界を超えてその空間解像度を高めることができます。ここで示すsmFRETの追跡アルゴリズムは、新しい実験設定とモデルシステムへのアプローチの適用性を広げます。これには、(i)移動生体分子の化学量論における運動学的変化、(ii)移動生体分子の動的関連、(iii)自由に拡散反応物の酵素反応の速度、および(iv)移動体生体分子の立体構造変化の運動論の研究が含まれる。最初の2つの例では、分子間FRET、すなわちドナーとアクセクターが関心のある生体分子エンティティを分離するために共役していることを示すモデルシステムが必要です。後者の例は、同一分子体の中でドナーとアクセクサを運ぶバイオセンサー(分子内FRET)を利用することができる。
分子内FRETベースのセンサは、生体分子の固有の立体構造変化、内在性または外力負荷(分子力センサ16)、またはカルシウムm45やpH46などのナノ環境におけるイオン濃度に関する洞察を提供できる。.モデルシステムと好ましいアンカープラットフォームに応じて、このようなsmFRETイベントは2Dまたは3Dのいずれかで追跡することができます:(i)SmFRETイベントの平面追跡は、形質膜内の受容体リガンド相互作用時間の定量化、膜固定シグナル増幅カスケードの関連、および表面のストイチオメトリー変化に使用することができます。(ii) smFRETイベントの体積追跡は、生細胞またはインビトロ再構成システム内の任意の分子内または分子間FRETプローブに使用することができる。
SmFRETの追跡方法は、主に分子内FRETプローブを念頭に置いて開発されました。これらのプローブは、固定された既知の数の蛍光標識、凝集および誤って合成された(例えば、不完全に標識された)分子からのデータを拒絶するために利用された事実、ならびに蛍光HOREの1つが光漂白されたプローブからも利用された事実である。しかし、フィルタリングステップを調整することにより、分子間FRETプローブにも適用できる。例えば、単一のドナーと単一のアクセプターフルオロフォアを特徴とする分子のみを受け入れる代わりに、ドナーとアクセプター色素の空間的軌道を調べ、例えばドナーアクセプター軌道を共同拡散させる方法を選択することができます。
3D-DAOSTORMアルゴリズムは、放射ビーム経路の円筒レンズによる乱視による光軸に沿った信号位置を決定するサポートを持つため、3D実験を解析パイプラインに簡単に統合することができます。この場合、アクセクサ励起時のアクセクサシグナルは、索体測定と軸位置を決定するのに役立つであろう。また、解析ソフトウェアを用いて、その大規模な自動化とフィルタリング方式を利用して、固定化プローブを用いた実験データを評価することもできます。実際、ゲル相bilayer38 に固定化されたホリデイ接合部からのsmFRET効率データセットを、初期バージョンのソフトウェアを用いて解析した。
The authors have nothing to disclose.
この研究は、オーストリア科学基金(FWF)プロジェクトP30214-N36、P32307-B、ウィーン科学技術基金(WWTF)LS13-030によって支援されました。
1,2-dioleoyl-sn-glycero-3-[(N-(5-amino-1-carboxypentyl)iminodiacetic acid)succinyl] (nickel salt) (Ni-NTA-DOGS) | Avanti Polar Lipids | 790404P | |
1,2-dioleoyl-sn-glycero-3-phosphocholine (DOPC) | Avanti Polar Lipids | 850375P | |
1-palmitoyl-2-oleoyl-glycero-3-phosphocholine (POPC) | Avanti Polar Lipids | 850457P | |
α Plan-FLUAR 100x/1.45 oil objective | Zeiss | 000000-1084-514 | |
Axio Observer microscope body | Zeiss | ||
Bandpass filter | Chroma Technology Corp | ET570/60m | donor emission filter |
Bandpass filter | Chroma Technology Corp | ET675/50m | acceptor emission filter |
conda-forge | conda-forge community | community-maintaned Python package repository for Anaconda/miniconda | |
Coverslips 60 mm x 24 mm #1.5 | MENZEL | ||
Dichroic mirror | Semrock Inc | FF640-FDi01-25×36 | separation of donor and acceptor emission |
Dichroic mirror (quad band) | Semrock Inc | Di01-R405/488/532/635-25×36 | separation of excitation and emission light |
DPBS | Sigma-Aldrich | D8537 | |
FCS | Sigma-Aldrich | F7524 | for imaging buffer |
fret-analysis | Schütz group at TU Wien | Python package for smFRET data analysis; version 3 | |
Fura-2 AM | Thermo Fisher Scientific | 11524766 | |
HBSS | Sigma-Aldrich | H8264 | for imaging buffer |
iBeam Smart 405-S 405 nm laser | Toptica Photonics AG | ||
iXon Ultra 897 EMCCD camera | Andor Technology Ltd | ||
Lab-Tek chambers (8 wells) | Thermo Fisher Scientific | 177402PK | for sample preparation and imaging |
Millenia Prime 532 nm laser | Spectra Physics | ||
miniconda | Anaconda Inc. | Python 3 distribution. Min. version: 3.7 | |
Monovalent streptavidin (plasmids for bacterial expression) | Addgene | 20860 & 20859 | |
OBIS 640 nm laser | Coherent Inc | 1185055 | |
Optosplit II | Cairn Research | ||
Ovalbumin | Sigma-Aldrich | A5253 | for imaging buffer |
Plasma cleaner | Harrick Plasma | PDC-002 | |
sdt-python | Schütz group at TU Wien | Python library for data analysis; version 17 | |
TetraSpek bead size kit | Thermo Fisher Scientific | T14792 | Randomly distributed, immobilized fiducial markers for image registration |
USC500TH Ultrasound bath | VWR | for SUV formation |