Summary

Усиление парамагнитной релаксации для обнаружения и характеристики самоассоциаций внутренне неупорядоченных белков

Published: September 23, 2021
doi:

Summary

Представлен протокол применения ЯМР-спектроскопии с усилением парамагнитной релаксации для выявления слабых и переходных меж- и внутримолекулярных взаимодействий в внутренне неупорядоченных белках.

Abstract

Внутренне неупорядоченные белки и внутренне неупорядоченные участки внутри белков составляют большую и функционально значимую часть протеома человека. Высокая гибкость этих последовательностей позволяет им формировать слабые, дальние и переходные взаимодействия с различными биомолекулярными партнерами. Специфические, но низкоаффинные взаимодействия способствуют беспорядочному связыванию и позволяют одному внутренне неупорядоченному сегменту взаимодействовать с множеством целевых сайтов. Из-за переходного характера этих взаимодействий их может быть трудно охарактеризовать методами структурной биологии, которые полагаются на белки для формирования единой, преобладающей конформации. ЯМР с усилением парамагнитной релаксации является полезным инструментом для идентификации и определения структурных основ слабых и переходных взаимодействий. Описан подробный протокол использования усиления парамагнитной релаксации для характеристики малонаселенных комплексов встреч, которые образуются между внутренне неупорядоченными белками и их белком, нуклеиновой кислотой или другими биомолекулярными партнерами.

Introduction

Внутреннее расстройство (ID) описывает белки (IDP) или области внутри белков (IDR), которые не спонтанно сворачиваются в стабильные вторичные или третичные структуры, но являются биологически активными. Как правило, функция IDP/IDR заключается в содействии специфическим, но обратимым взаимодействиям с биомолекулами в физиологическихусловиях1. Таким образом, IDP и IDR участвуют в ряде клеточных функций, включая рекрутирование, организацию и стабилизацию мультибелковых комплексов, например, сборку и активность сплайсосомы2, рекрутирование и организацию компонентов в сайтах повреждения ДНК3, организацию и стабилизацию рекрутирования транскрипционных комплексов4 или хроматинового ремоделера BAF5. Кроме того, IDP обнаруживаются в сигнальных нексусах, где их беспорядочные связи с различными партнерами по связыванию позволяют им опосредуть передачу информации через клеточные белковыесети. Недавние работы также выявили склонность областей IDR к самоассоциированию, образуя биомолекулярные конденсаты в процессе разделения фаз жидкость-жидкость7. В настоящее время считается, что многие из вышеупомянутых функций, связанных с ИД, также включают в себя некоторый аспект образования конденсата8. Несмотря на важность ИД для сборки, стабилизации, скаффолдинга и передачи сигналов биомолекулярных комплексов, атомные детали их специфических взаимодействий трудно идентифицировать, поскольку IDP и IDR обычно не поддаются структурным исследованиям с использованием рентгеновской кристаллографии или криогенной электронной микроскопии.

Ядерный магнитный резонанс (ЯМР) является идеальным методом для исследования ИД, поскольку он не зависит от наличия жестких или однородных структурных ансамблей, а сообщает о непосредственном локальном окружении отдельных ядер. Резонансная частота, или химический сдвиг, ядра в данной молекуле зависит от слабых магнитных полей, индуцированных локальным распределением электронов, которое, в свою очередь, зависит от длины связи, углов, близости других ядер, взаимодействия с партнерами по связыванию идругих факторов. Таким образом, каждое ядро действует как уникальный, сайт-специфичный структурный зонд, чувствительный к изменениям в своей локальной химической среде. Несмотря на эти преимущества, ЯМР является массовым методом, и наблюдаемый химический сдвиг является средним значением для всех сред, отобранных конкретным ядром. Был разработан ряд методов ЯМР, многие из которых описаны в этом выпуске, для восстановления структурной, динамической и кинетической информации о высокоэнергетических, малонаселенных биомолекулярных конформациях, содержащихся в усредненном химическом сдвиге10,11. Несмотря на то, что эти состояния временно заселены, их идентификация и количественная оценка важны для определения деталей функциональных механизмов12. Например, в случае IDP и IDR конформационный ансамбль может быть смещен в сторону преимущественного отбора конформаций, продуктивных для формирования комплексов встреч с физиологическими партнерами по связыванию. Обнаружение этих состояний, а также идентификация меж- и внутримолекулярных взаимодействий и динамики, специфичных для остатков, важны для определения основных структурных механизмов функционирования белков и образования комплексов.

Описан протокол использования ЯМР с усилением парамагнитной релаксации (PRE) для исследования переходных, малонаселенных состояний, важных для формирования IDP/IDR-опосредованных биомолекулярных комплексов13. Этот подход полезен для изучения транзиторных белок-белковых взаимодействий, таких как те, которые способствуют сборке амилоидных фибрилл из α-синуклеина 14,15 или самоассоциации FUS16, а также для характеристики специфических белок-белковых взаимодействий, таких как между сигнальными белками17. Представлен пример самоассоциативного IDP, в котором специфические меж- и внутримолекулярные взаимодействия приводят к преимущественно компактным состояниям, а также сайт-специфичным взаимодействиям, которые управляют самоассоциацией.

PRE возникает в результате магнитного дипольного взаимодействия ядра с парамагнитным центром с изотропным g-тензором, обычно поставляемым в виде неспаренного электрона на нитроксидной группе или в виде парамагнитного атома металла18 (рис. 1). В то время как атомы с анизотропными g-тензорами также производят эффект PRE, анализ этих систем более сложен из-за искажающих эффектов, вносимых псевдоконтактными сдвигами (PCS) или остаточной дипольной связью (RDC)13,19. Сила взаимодействия между ядром и парамагнитным центром зависит от расстояния <r-6> между ними. Это взаимодействие приводит к увеличению скоростей ядерной релаксации, что приводит к обнаруживаемому уширению линии даже для дальних взаимодействий (~10-35 Å), поскольку магнитный момент неспаренного электрона очень силен20,21. Детектирование переходных состояний с помощью PRE возможно при соблюдении следующих двух условий; (1) переходное взаимодействие происходит в быстром обмене на временной шкале ЯМР (наблюдаемый химический сдвиг представляет собой средневзвешенное по популяции значение состояний обмена); и (2) расстояние между ядрами и парамагнитным центром короче в переходно-населенном состоянии, чем в основном состоянии11. Поперечная ПЭ обозначается Γ2 и для практических целей вычисляется по разности скоростей поперечной релаксации в 1Н между образцом, содержащим парамагнитный центр, и диамагнитным регулятором. Для углубленного рассмотрения теории PRE и связанных с ней псевдоконтактных сдвигов в режимах быстрого и медленного обмена читатель может обратиться к подробным обзорам Клора и его коллег13,22. Здесь рассматривается только ситуация, когда 1H N-Γ2 находится в режиме быстрого обмена, где из-за r-6-зависимости PRE наблюдаемая скорость релаксации связана как с расстоянием, на которое парамагнитный центр приближается к ядру, так и с количеством времени, которое он проводит в этой конформации. Таким образом, переходные конформации, не предполагающие близкого сближения, приводят к малому PRE, в то время как более тесные взаимодействия, даже если они кратковременны, приведут к большему PRE.

Для IDP PRE используется для измерения и дифференциации взаимодействий, происходящих внутри одной молекулы (внутримолекулярное) и между отдельными молекулами (межмолекулярное). Прикрепив парамагнитный центр к видимому (например, 15N-меченному) или невидимому (например, природному изобилию 14N) белку, можно определить источник (меж- или внутримолекулярный) PRE (рис. 2). Сайт-направленный мутагенез, при котором вводится остаток цистеина, является удобным подходом для присоединения парамагнитного центра (спин-метки) к белку23. Несколько типов молекул были предложены для использования в качестве спиновых меток, в том числе хелатирующие (на основе ЭДТА) и свободнорадикальные (на основе нитроксида)24. Были описаны различные спиновые метки нитроксида, которые доступны с различными химически активными химическими веществами, такими как метанетиосульфонат, малеимид и йодоацетамид25,26 (рис. 1). Гибкость, присущая метке или линкеру, может быть проблематичной для некоторых анализов, и в этих ситуациях были предложены различные стратегии для ограничения движения метки, такие как добавление громоздких химических групп или использование второго линкера для привязки метки к белку (прикрепление двух сайтов)27. 28. См. Кроме того, коммерчески доступные метки могут содержать диастереомерные белки, но, как правило, это не способствует наблюдаемому PRE29. Описано использование 3-Малеймидо-ПРОКСИЛА, присоединенного к свободному цистеину с помощью химии малеимида, поскольку он легко доступен, экономически эффективен, необратим, а восстановитель трис(2-карбоксиэтил)фосфин (ТЦЭП) может сохраняться в растворе на протяжении всей реакции мечения. Поскольку 3-Малеймидо-ПРОКСИЛ имеет изотропный g-тензор, ПКС или РДК не индуцируются, и одни и те же назначения химического сдвига могут быть использованы как для парамагнитных, так и для диамагнитных образцов13.

1HN-T 2 измеряется с использованием стратегии двух временных точек (T a, Tb), которая, как было показано ранее, столь же точна, как и сбор полного ряда эволюции, состоящего из 8-12 временных точек30. Первая временная точка (T a) устанавливается как можно ближе к нулю, а оптимальная длина второй временной точки зависит от величины наибольшего ожидаемого PRE для данного образца и может быть оценена по формуле: Tb ~ 1,15/(R 2,dia + Γ 2), где R 2,dia представляет R 2 диамагнитного образца13. Если величина наибольших PRE неизвестна, установка Tb в ~ 1 раз больше 1H T2 белка является хорошей начальной оценкой и в дальнейшем оптимизируется путем корректировки T2 для улучшения соотношения сигнал/шум. Эта двухточечная стратегия измерения значительно сокращает экспериментальное время, необходимое для измерения PRE, и дает время для большего усреднения сигнала, особенно с учетом того, что для минимизации эффектов неспецифических контактов между молекулами используются относительно разбавленные образцы. Последовательность импульсов на основе HSQC используется для измерения 1H N-T2 и была подробно описана в другом месте30. Для повышения чувствительности жесткие импульсы прямой и обратной передач INEPT могут быть заменены фигурными импульсами; в качестве альтернативы последовательность легко преобразуется в считывание на основе TROSY31. Поскольку IDP, как правило, имеют гораздо более длительную скорость поперечной релаксации, что приводит к более узкой ширине линии (из-за присущего им беспорядка), чем глобулярные белки аналогичного размера, длительное время регистрации в косвенном измерении может быть использовано для улучшения спектрального разрешения и смягчения ограничения дисперсии химического сдвига, присущего IDP.

PRE является полезным инструментом для изучения белок-белковых и белок-нуклеиновых кислот, особенно переходных или малонаселенных. Представлен подробный протокол подготовки образца ЯМР, пригодного для измерения ПРЭ, включая этапы очистки белка, сайт-ориентированного спинового мечения, настройки и калибровки импульсной программы, обработки и интерпретации данных ЯМР. В работе отмечаются важные экспериментальные соображения, которые могут повлиять на качество данных и исход эксперимента, включая концентрацию образца, выбор спиновой метки и удаление парамагнитных компонентов.

Protocol

Общие требования к протоколу: оборудование для очистки белков, УФ-ВИД спектрометр, высокопольный ЯМР-спектрометр и операционное программное обеспечение, в том числе программное обеспечение для анализа постобработки; NMRPipe32, Sparky 33 (или CCPN Analysis 34, или NMRViewJ35).<sup class=…

Representative Results

Внутримолекулярные 1H N-Γ2 PRE регистрировали на самоассоциирующем, внутренне неупорядоченном фрагменте (остатки 171-264), полученном из домена низкой сложности РНК-связывающего белка EWSR142 (рис. 3). Ожидается, что остатки, находящиеся в непос?…

Discussion

Представлен метод характеристики переходных взаимодействий, существующих в малых популяциях между внутренне неупорядоченными белками и различными партнерами связывания с использованием PRE. В показанном примере белок является самоассоциативным, и, таким образом, PRE может возникать в …

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Мы благодарим докторов Джинфа Ин и Кристин Кано за полезные дискуссии и техническую помощь. DSL является стипендиатом St. Baldrick’s Scholar и выражает признательность за поддержку Фонда St. Baldrick’s Foundation (634706). Эта работа была частично поддержана Фондом Уэлча (AQ-2001-20190330) для DSL, Фондом Макса и Минни Томерлин Фолькер (грант Фонда Волкера для молодых исследователей для DSL), стартовыми фондами UTHSA для DSL и стипендией Грихи для выпускников в области детского здоровья для CNJ. Эта работа основана на исследованиях, проведенных в Центре структурной биологии, входящем в состав Институциональных исследовательских центров Научного центра здоровья Техасского университета в Сан-Антонио, при поддержке Офиса вице-президента по исследованиям и Общего ресурса по разработке лекарств и структурной биологии Онкологического центра Мэйса (NIH P30 CA054174).

Materials

0.45 µm and 0.22 µm syringe filters Millipore Sigma SLHVM33RS
SLGVR33RS
Filter lysate before first purification step and before size exclusion chromatography.
100 mm Petri Dish Fisher FB0875713 Agar plates for bacterial transformation.
14N Ammonium chloride Sigma Aldrich 576794 Use of 15N in M9 medium will produce an NMR visible protein, 14N will produces an NMR invisible protein
15N Ammonium chloride Sigma Aldrich 299251 Use of 15N in M9 medium will produce an NMR visible protein, 14N will produces an NMR invisible protein
3 L Fernbach baffled flask Corning 431523 Bacterial expression culture
3-Maleimido-Proxyl Sigma Aldrich 253375 Nitroxide spin label
50 mL conical centrifuge tubes Thermo Fisher 14-432-22 Solution/protein storage
Amicon centrifugal filter Millipore Sigma UFC900308 Protein concentration
Ampicillan Sigma Aldrich A5354 Antibiotic for a selective marker, exact choice depends on the expression construct plasmid
Analytical balance Oahus 30061978 Explorer Pro, for weighing reagents
Ascorbic acid Sigma Aldrich AX1775 Reduces nitroxide spin label
Autoclave Sterilize glassware and culture media
Calcium chloride Sigma Aldrich C4901 M9 media component
Centrifuge bottles Thermo Fisher 010-1459 Harvest E. coli cells after recombinant protein expression
Centrifuge, hand-crank Thomas Scientific 0241C68 Boekel hand-driven, low-speed centrifuge with 15 mL buckets that can accommodate NMR tubes
Chelex 100 Sigma Aldrich C7901 Remove contaminating paramagnetic compounds from buffer solutions
Computer workstation Linux or Mac OS compatable with NMR data processing and analysis software packages such as NMRPipe and Sparky
Deuterium oxide Sigma Aldrich 151882 Needed for NMR lock signal
Dextrose Sigma Aldrich D9434 M9 media component
Dibasic Sodium Phosphate Sigma Aldrich S5136 M9 media component
Ellman's reagent (5,5-dithio-bis-(2-nitrobenzoic acid) Thermo Fisher 22582 Quantification of free cystiene residues
High speed centrifuge tubes Thermo Fisher 3114-0050 Used to clear bacterial lysate.
High-field NMR instrument (600 – 800 MHz) Bruker Equiped with a multichannel cryogenic probe and temperature control
IMAC column, HisTrap FF Cytvia 17528601 Initial fractionation of crude bacterial lysate
Isopropyl B-D-thiogalactoside (IPTG) Sigma Aldrich I6758 Induces protein expression for genes under control of lac operator
LB agar Thermo Fisher 22700025 Items are used for transforming E. coli to express protein of interest, substitions for any of these items with like products is acceptable.
LB broth Thermo Fisher 12780052
Low-pressure chromatography system Bio-Rad 7318300 BioRad BioLogic is used for low-pressure chomatograph such as running IMAC columns
Magnesium sulfate Sigma Aldrich M7506 M9 media component
Medium pressure chromatography system Bio-Rad 7880007 BioRad NGC equipped with a multi-wavelength detector, pH and conductivity monitors, and automatic fraction collector
MEM vitamin solution Sigma Aldrich M6895 M9 media component
Microfluidizer Avestin EmulsiFlex-C3 Provides rapid and efficient bacterial cell lysis
Micropipettes Thermo Fisher Calibrated set of micropippetters with properly fitting disposable tips (available from multiple manufacturers e.g. Eppendorf)
Monobasic potassium phosphate Sigma Aldrich 1551139 M9 media component
NMR pipettes Sigma Aldrich 255688 To remove sample from NMR tube
NMR sample tube NewEra NE-SL5 Suitable for high-field NMR spectrometers
Preparative Centrifuge Beckman Coulter Avanti J-HC Harvest E. coli cells after recombinant protein expression
Round bottom polystyrene centrifuge tubes Corning 352057 Clear bacterial lysate
Shaking incubator Eppendorf S44I200005 Temperature controlled growth of E. coli starter and expression cultures
Sodium chloride Sigma Aldrich S5886 M9 media component
Sonicating water bath and vacuum source Thomas Scientific Used to degas buffer solutions
Sonicator Thermo Fisher FB505110 Used for bacterial cell lysis or shearing bacterial DNA
Spectrophotometer Implen OD600 Diluphotometer Monitor growth of E.coli protein expression cultures
Superdex 200 16/600 size exculsion colum Cytvia 28989333 Final protein purification step
Topspin software, version 3.2 or later Bruker Operating software for the NMR instrument
Transformation competent E. coli cells Thermo Fisher C600003 One Shot BL21 Star (DE3) chemically competent E. coli, other strains may be compatable
Tris(2-carboxyethyl)phosphine (TCEP) ThermoFisher 20490 Reducing agent compatable with some sulfhydryl-reactive conjugations
UV-Vis spectrophotometer Implen NP80 Measure protein concentration.
Water bath, temperature controlled ThermoFisher FSGPD25 For heat shock step of bacterial transformation
Yeast extract Sigma Aldrich Y1625 For supplementing M9 media if required

References

  1. Dyson, H. J., Wright, P. E. Intrinsically unstructured proteins and their functions. Nature Reviews: Molecular Cell Biology. 6 (3), 197-208 (2005).
  2. Korneta, I., Bujnicki, J. M. Intrinsic disorder in the human spliceosomal proteome. PLoS Computational Biology. 8 (8), 1002641 (2012).
  3. Frege, T., Uversky, V. N. Intrinsically disordered proteins in the nucleus of human cells. Biochemistry and Biophysics Reports. 1, 33-51 (2015).
  4. Liu, J., et al. Intrinsic disorder in transcription factors. Biochemistry. 45 (22), 6873-6888 (2006).
  5. El Hadidy, N., Uversky, V. N. Intrinsic disorder of the BAF complex: Roles in chromatin remodeling and disease development. International Journal of Molecular Sciences. 20 (21), (2019).
  6. Wright, P. E., Dyson, H. J. Intrinsically disordered proteins in cellular signalling and regulation. Nature Reviews: Molecular Cell Biology. 16 (1), 18-29 (2015).
  7. Brangwynne, C. P. Phase transitions and size scaling of membrane-less organelles. Journal of Cell Biology. 203 (6), 875-881 (2013).
  8. Shin, Y., Brangwynne, C. P. Liquid phase condensation in cell physiology and disease. Science. 357 (6357), (2017).
  9. Cavanagh, J. . Protein NMR spectroscopy : principles and practice. 1st edition. , (2018).
  10. Sekhar, A., Kay, L. E. NMR paves the way for atomic level descriptions of sparsely populated, transiently formed biomolecular conformers. Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America. 110 (32), 12867-12874 (2013).
  11. Anthis, N. J., Clore, G. M. Visualizing transient dark states by NMR spectroscopy. Quarterly Reviews of Biophysics. 48 (1), 35-116 (2015).
  12. Alderson, T. R., Kay, L. E. NMR spectroscopy captures the essential role of dynamics in regulating biomolecular function. Cell. 184 (3), 577-595 (2021).
  13. Clore, G. M., Iwahara, J. Theory, practice, and applications of paramagnetic relaxation enhancement for the characterization of transient low-population states of biological macromolecules and their complexes. Chemical Reviews. 109 (9), 4108-4139 (2009).
  14. Wu, K. P., Baum, J. Detection of transient interchain interactions in the intrinsically disordered protein alpha-synuclein by NMR paramagnetic relaxation enhancement. Journal of the American Chemical Society. 132 (16), 5546-5547 (2010).
  15. Janowska, M. K., Wu, K. P., Baum, J. Unveiling transient protein-protein interactions that modulate inhibition of alpha-synuclein aggregation by beta-synuclein, a pre-synaptic protein that co-localizes with alpha-synuclein. Scientific Reports. 5, 15164 (2015).
  16. Murthy, A. C., et al. Molecular interactions underlying liquid-liquid phase separation of the FUS low-complexity domain. Nature Structural & Molecular Biology. 26 (7), 637-648 (2019).
  17. Fawzi, N. L., Doucleff, M., Suh, J. Y., Clore, G. M. Mechanistic details of a protein-protein association pathway revealed by paramagnetic relaxation enhancement titration measurements. Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America. 107 (4), 1379-1384 (2010).
  18. Griffith, O. H., Waggoner, A. S. Nitroxide free radicals: spin labels for probing biomolecular structure. Accounts of Chemical Research. 2 (2), 17-24 (1969).
  19. Bertini, I., Luchinat, C., Parigi, G., Ravera, E. . NMR of Paramagnetic Macromolecules, Applications to Metallobiomolecules and Models. 2 edn. , (2016).
  20. Bloembergen, N., Purcell, E. M., Pound, R. V. Relaxation effects in nuclear magnetic resonance absorption. Physical Review. 73 (7), 679-712 (1948).
  21. Solomon, I. Relaxation processes in a system of two spins. Physical Review. 99 (2), 559 (1955).
  22. Clore, G. M. Practical aspects of paramagnetic relaxation enhancement in biological macromolecules. Methods in Enzymology. 564, 485-497 (2015).
  23. Klare, J. P. Site-directed spin labeling EPR spectroscopy in protein research. Biological Chemistry. 394 (10), 1281-1300 (2013).
  24. Clore, G. M., Tang, C., Iwahara, J. Elucidating transient macromolecular interactions using paramagnetic relaxation enhancement. Current Opinion in Structural Biology. 17 (5), 603-616 (2007).
  25. Melanson, M., Sood, A., Torok, F., Torok, M. Introduction to spin label electron paramagnetic resonance spectroscopy of proteins. Biochemistry and Molecular Biology Education. 41 (3), 156-162 (2013).
  26. Czogalla, A., Pieciul, A., Jezierski, A., Sikorski, A. F. Attaching a spin to a protein — site-directed spin labeling in structural biology. Acta Biochimica Polonica. 54 (2), 235-244 (2007).
  27. Lindfors, H. E., de Koning, P. E., Drijfhout, J. W., Venezia, B., Ubbink, M. Mobility of TOAC spin-labelled peptides binding to the Src SH3 domain studied by paramagnetic NMR. Journal of Biomolecular NMR. 41 (3), 157-167 (2008).
  28. Fawzi, N. L., et al. A rigid disulfide-linked nitroxide side chain simplifies the quantitative analysis of PRE data. Journal of Biomolecular NMR. 51 (1-2), 105-114 (2011).
  29. Bleicken, S., et al. gem-Diethyl pyrroline nitroxide spin labels: Synthesis, EPR characterization, rotamer libraries and biocompatibility. ChemistryOpen. 8 (8), 1035 (2019).
  30. Iwahara, J., Tang, C., Clore, G. M. Practical aspects of 1H transverse paramagnetic relaxation enhancement measurements on macromolecules. Journal of Magnetic Resonance. 184, 185-195 (2007).
  31. Venditti, V., Fawzi, N. L. Probing the atomic structure of transient protein contacts by paramagnetic relaxation enhancement solution NMR. Methods in Molecular Biology. 1688, 243-255 (2018).
  32. Delaglio, F., et al. NMRPipe: a multidimensional spectral processing system based on UNIX pipes. Journal of Biomolecular NMR. 6 (3), 277-293 (1995).
  33. Lee, W., Tonelli, M., Markley, J. L. NMRFAM-SPARKY: enhanced software for biomolecular NMR spectroscopy. Bioinformatics. 31 (8), 1325-1327 (2015).
  34. Vranken, W. F., et al. The CCPN data model for NMR spectroscopy: development of a software pipeline. Proteins. 59 (4), 687-696 (2005).
  35. Johnson, B. A. Using NMRView to visualize and analyze the NMR spectra of macromolecules. Methods in Molecular Biology. 278, 313-352 (2004).
  36. Sjodt, M., Clubb, R. T. Nitroxide labeling of proteins and the determination of paramagnetic relaxation derived distance restraints for NMR studies. Bio-Protocol. 7 (7), (2017).
  37. Zhang, H., van Ingen, H. Isotope-labeling strategies for solution NMR studies of macromolecular assemblies. Current Opinion in Structural Biology. 38, 75-82 (2016).
  38. Rabdano, S. O., et al. Onset of disorder and protein aggregation due to oxidation-induced intermolecular disulfide bonds: case study of RRM2 domain from TDP-43. Scientific Reports. 7 (1), 11161 (2017).
  39. Burns, J. A., Butler, J. C., Moran, J., Whitesides, G. M. Selective reduction of disulfides by tris(2-carboxyethyl)phosphine. Journal of Organic Chemistry. 56 (8), 2648-2650 (1991).
  40. Ellman, G. L. Tissue sulfhydryl groups. Archives of Biochemistry and Biophysics. 82 (1), 70-77 (1959).
  41. Binbuga, B., Boroujerdi, A. F., Young, J. K. Structure in an extreme environment: NMR at high salt. Protein Science. 16 (8), 1783-1787 (2007).
  42. Schwartz, J. C., Cech, T. R., Parker, R. R. Biochemical properties and biological functions of FET proteins. Annual Review of Biochemistry. 84, 355-379 (2015).
  43. Nabuurs, S. M., de Kort, B. J., Westphal, A. H., van Mierlo, C. P. Non-native hydrophobic interactions detected in unfolded apoflavodoxin by paramagnetic relaxation enhancement. European Biophysics Journal. 39 (4), 689-698 (2010).
  44. Wiedemann, C., Kumar, A., Lang, A., Ohlenschlager, O. Cysteines and disulfide bonds as structure-forming units: Insights from different domains of life and the potential for characterization by NMR. Frontiers in Chemistry. 8, 280 (2020).
  45. Wommack, A. J., et al. NMR solution structure and condition-dependent oligomerization of the antimicrobial peptide human defensin 5. Biochemistry. 51 (48), 9624-9637 (2012).
  46. Taylor, A. M., et al. Detailed characterization of cysteine-less P-glycoprotein reveals subtle pharmacological differences in function from wild-type protein. British Journal of Pharmacology. 134 (8), 1609-1618 (2001).
  47. Hu, K., Doucleff, M., Clore, G. M. Using multiple quantum coherence to increase the 15N resolution in a three-dimensional TROSY HNCO experiment for accurate PRE and RDC measurements. Journal of Magnetic Resonance. 200 (2), 173-177 (2009).
  48. Anthis, N. J., Doucleff, M., Clore, G. M. Transient, sparsely populated compact states of apo and calcium-loaded calmodulin probed by paramagnetic relaxation enhancement: interplay of conformational selection and induced fit. Journal of the American Chemical Society. 133 (46), 18966-18974 (2011).
  49. Battiste, J. L., Wagner, G. Utilization of site-directed spin labeling and high-resolution heteronuclear nuclear magnetic resonance for global fold determination of large proteins with limited nuclear overhauser effect data. Biochemistry. 39 (18), 5355-5365 (2000).
  50. Donaldson, L. W., et al. Structural characterization of proteins with an attached ATCUN motif by paramagnetic relaxation enhancement NMR spectroscopy. Journal of the American Chemical Society. 123 (40), 9843-9847 (2001).
  51. Gaponenko, V., et al. Protein global fold determination using site-directed spin and isotope labeling. Protein Science. 9 (2), 302-309 (2000).
  52. Trindade, I. B., Invernici, M., Cantini, F., Louro, R. O., Piccioli, M. PRE-driven protein NMR structures: an alternative approach in highly paramagnetic systems. FEBS Journal. 288 (9), 3010-3023 (2021).
  53. Nitsche, C., Otting, G. Pseudocontact shifts in biomolecular NMR using paramagnetic metal tags. Progress in Nuclear Magnetic Resonance Spectroscopy. 98-99, 20-49 (2017).

Play Video

Cite This Article
Johnson, C. N., Libich, D. S. Paramagnetic Relaxation Enhancement for Detecting and Characterizing Self-Associations of Intrinsically Disordered Proteins. J. Vis. Exp. (175), e63057, doi:10.3791/63057 (2021).

View Video