التهاب العنبية المتفطر (PMU) كنموذج لالتهاب العنبية بعد العدوى
Summary
يحدد هذا البروتوكول خطوات إحداث التهاب القزحية المتفطر (PMU) في الفئران. تحدد هذه الطريقة الخطوات للمساعدة في إنتاج التهاب عين موثوق وقوي في نظام نموذج الماوس. باستخدام هذا البروتوكول ، قمنا بتوليد عيون UVEITIC وعيون زميلة غير ملتهبة من مفردة لمزيد من التقييم باستخدام المقايسات المناعية والنسخية والبروتينية.
Abstract
يصف مصطلح “التهاب العنبية” مجموعة غير متجانسة من الحالات التي تتميز جميعها بالتهاب داخل العين. على نطاق واسع ، يتم تعريف التهاب القزحية من خلال المسببات: العدوى أو المناعة الذاتية. يتطلب التهاب العنبية المعدي العلاج بالعوامل المضادة للميكروبات المناسبة، بينما يتطلب التهاب العنبية المناعي الذاتي العلاج بالكورتيكوستيرويدات أو غيرها من العوامل المثبطة للمناعة. التهاب العنبية التالي للعدوى هو شكل من أشكال التهاب العنبية المزمن الذي يتطلب الكورتيكوستيرويدات للسيطرة على عقابيل المناعة بعد العدوى الأولية. التهاب القزحية المرتبط بعدوى المتفطرة السلية (Mtb) هو شكل معترف به جيدا من التهاب القزحية بعد العدوى ، لكن آليات المرض ليست مفهومة تماما. لفهم الدور الذي تلعبه المستضدات الفطرية والروابط الفطرية في تحفيز التهاب العين المزمن بعد الإصابة بالسل ، تم تطوير نموذج التهاب القزحية المتفطر (PMU) للاستخدام في الفئران. توضح هذه المخطوطة طرق توليد PMU ومراقبة المسار السريري للالتهاب باستخدام قاع العين الملون والتصوير المقطعي للتماسك البصري (OCT). يتم تحفيز PMU عن طريق التحصين بمستخلص المتفطرات المقتولة بالحرارة متبوعا بالحقن داخل الجسم الزجاجي لنفس المستخلص في عين واحدة بعد سبعة أيام. تتم مراقبة التهاب العين طوليا باستخدام التصوير في الجسم الحي ويتبعه جمع العينات لمجموعة واسعة من المقايسات ، بما في ذلك الأنسجة ، وقياس التدفق الخلوي ، وتحليل السيتوكين ، و qPCR ، أو تسلسل mRNA. يعد نموذج الماوس الخاص ب PMU أداة جديدة مفيدة لدراسة استجابات العين ل mTB ، وآلية التهاب القزحية المزمن ، ولاختبارات الفعالية قبل السريرية للعلاجات الجديدة المضادة للالتهابات.
Introduction
يصف مصطلح “التهاب العنبية” مجموعة غير متجانسة من الحالات التي تتميز جميعها بالتهاب داخل العين1. تعد النماذج الحيوانية لالتهاب العنبية مهمة لفهم آليات المرض وللاختبار قبل السريري للعلاجات الجديدة. تم إنشاء عدد من النماذج الحيوانية لالتهاب القزحية2. الاثنان اللذان تمت دراستهما على نطاق واسع هما التهاب القزحية المناعي الذاتي التجريبي (أو التهاب الشبكية الدهنية. EAU) والتهاب القزحية الناجم عن السموم الداخلية (EIU). عادة ما يتم إنشاء EAU عن طريق التحصين بمستضدات العين أو يمكن أن يحدث تلقائيا عندما يتعطل التسامح المركزي في غياب جين AIRE 3,4. ومنذ ذلك الحين تم تطوير متغيرات أخرى من النموذج5،6،7 لتشمل الببتيدات العنبية المختلفة. تمت مراجعتها على نطاق واسع8،9،10. EAU هو النموذج الأساسي لأشكال التهاب العنبية المناعي الذاتي المعتمد على الخلايا التائية مثل مرض Vogt-Koyanagi-Harada والتهاب مشيمية الطيور في البشر. يتم إنشاء EIU عن طريق الحقن الجهازي أو المحلي لعديد السكاريد الدهني البكتيري (LPS)10,11. تم استخدام EIU كنموذج لالتهاب العنبية الحاد الناتج عن تنشيط مسارات الإشارات المناعية الفطرية12. كان كلا النموذجين فعالين في الفهم الحالي لمناعة العين، ولكن لا يعد أي منهما نموذجين فعالين لالتهاب العنبية المزمن بعد العدوى. يوفر نموذج التهاب القزحية الفطري (PMU) ، الذي تم إنشاؤه مؤخرا في الفئران ، نهجا لاستجواب وتقييم الجوانب السريرية والخلوية لهذا النوع من التهاب القزحية13.
هناك انتشار مرتفع للعدوى الفطرية في جميع أنحاء العالم ، مع أكثر من 10 ملايين حالة جديدة وأكثر من 1.4 مليون حالة وفاة أبلغت عنها منظمة الصحة العالمية في عام 201914. يشمل المظهر خارج الرئة لعدوى السل النشط (TB) التهاب القزحية وهو سبب معترف به جيدا لالتهاب القزحية المعدي15,16. مظاهر التهاب القزحية المرتبط بالسل هي البروتيان ، والتي من المحتمل أن تعكس آليات متميزة متعددة للمرض لتشمل عدوى العين المباشرة بالإضافة إلى التهاب المناعة الأقل فهما17،18،19. تشمل الآليات المقترحة لهذه العواقب اللاحقة للعدوى استجابة التهابية مزمنة يحفزها استمرار عدوى عصوية في ظهارة الشبكية الصبغية (RPE) ، واستجابة التهابية مزمنة يحفزها وجود أنماط جزيئية متبقية مرتبطة بمسببات الأمراض (PAMPs) من عدوى العين التي تم تطهيرها بنجاح ، والتنشيط غير المناسب للاستجابة المناعية التكيفية ضد مستضدات العين من خلال عملية التقليد الجزيئي أو المستضد. الانتشار الناجم عن عدوى السل الجهازية20،21،22،23.
من أجل الحصول على فهم ميكانيكي أفضل لالتهاب القزحية المزمن بعد العدوى ودراسة دور المستضدات الفطرية في بدء المرض ، تم تطوير نموذج PMU للاستخدام في الفئران13,24. وفقا لذلك ، لاستنباط الالتهاب ، يتلقى الفأر أولا حقنة تحت الجلد من مستضد من سلالة المتفطرة السلية H37Ra المقتولة بالحرارة لتقليد العدوى الجهازية ، تليها بعد سبعة أيام الحقن داخل الجسم الزجاجي لنفس المستضد الذي يتم إعطاؤه للعين اليسرى أو اليمنى لتقليد عدوى العين المحلية. تتم مراقبة شدة ومدة التهاب القزحية التالي عن طريق التصوير المقطعي الطولي للتماسك البصري في الجسم الحي (OCT) والتصوير القاعي للعين25. تتميز PMU بالتهاب العنبية الحاد المهيمن على النخاع والذي يتطور إلى التهاب العنبية الخلفي المزمن المهيمن على الخلايا التائية مع التهاب الزجاجية والتهاب الشبكية حول الأوعية الدموية والمناطق البؤرية لتلف الشبكية الخارجية26. يشير وجود التهاب حبيبي في الجزء الخلفي من العين إلى أنه يمكن استخدام نموذج PMU لدراسة بعض أشكال التهاب القزحية الأمامي (الحبيبي وغير الحبيبي) والتهاب القزحية المتوسط ، الذي يظهر في المرضى الذين يعانون من أدلة مناعية على عدوى Mtb السابقة27. بالإضافة إلى ذلك ، تم اقتراح مكونات Mtb المقتولة بالحرارة المستخدمة في نموذج PMU لتحفيز الاستجابات المناعية الكامنة وراء جوانب التهاب القزحية المتكرر في المرضى الذين يعانون من مرض السل العيني الذين يستجيبون للعلاج المضاد للسل (ATT)28. نظرا للاختلافات في بدء المرض ومسار الالتهاب عند مقارنته ب EAU و EIU ، تمثل PMU نموذجا حيوانيا جديدا لالتهاب القزحية لا يعتمد على التحصين بمستضدات العين وقد يساعد في توضيح آليات المرض لدى المرضى الذين يعانون من التهاب القزحية المزمن. يحدد هذا البروتوكول طرق توليد PMU ، ومراقبة المسار السريري للالتهابات ، وجمع عينات العين لتحليل ما بعد الوفاة مع قياس التدفق الخلوي.
Protocol
Representative Results
Discussion
لعبت النماذج الحيوانية لالتهاب العنبية دورا أساسيا في فهم آليات التهاب العين والتوازن بالإضافة إلى تمكين التقييم قبل السريري للعلاجات الطبية والجراحية لمرضى التهاب العنبية37. أثبتت كل من متغيرات الأرانب والجرذان لنموذج PMU قيمتها في العلاج قبل السريري من خلال إثبات دراسات المفهوم38،39،40. نظرا لتوافر مجموعة متنوعة من السلالات المعدلة وراثيا في الفئران ، فإن إنشاء نظام نموذج PMU للفأر يسمح الآن بإجراء دراسات ميكانيكية أكثر تفصيلا لتحديد أنواع معينة من الخلايا والمسارات والجينات التي تساهم في أمراض هذا المرض.
يمكن أن تظهر النماذج الحيوانية لالتهاب العنبية التباين من إلى في حدوث الالتهابوشدته 41. في سلالة الماوس C57BL / 6 ، يتم إنشاء PMU بشكل موثوق باستخدام البروتوكول الموضح هنا. تم الإبلاغ عن اختلافات خاصة بالسلالة في مسار التهاب القزحية وشدته لكل من EAU و EIU42,43. في حين أن التأثيرات الخاصة بالسلالة على شدة ومسار PMU لم يتم قياسها تجريبيا ، فقد تم استخدام هذا النموذج في النوع البري C57BL / 6J وكذلك في الفئران البيضاء (B6 (Cg) -Tyrc-2J / J) وأنتج استجابات التهابية مماثلة. عند إنشاء نموذج PMU، يمكن أن يساعد التحكم في الاعتبارات المذكورة أدناه الباحثين الجدد على الحد من التباين وإنتاج التهاب العنبية الأكثر اتساقا وقابلية للتكرار.
ضمان الاتساق في الحقن تحت الجلد:
لتوفير حقن متسق تحت الجلد ، تأكد من إزالة جميع فقاعات الهواء من المستحلب. تشمل الاعتبارات جهاز طرد مركزي قصير (30 ثانية عند 400 × جم) من المستحلب الجاهز قبل تحميل المحقنة. سيؤدي ذلك إلى إزالة الهواء المحبوس في المستحلب. أيضا ، عند تحميل المحقنة ، قم بعكس (تلميح) بشكل دوري واضغط على المحقنة لإزالة أي فقاعات هواء. أثناء الحقن ، لا تضع المحقنة عميقا جدا لتجنب الحقن العضلي. على العكس من ذلك ، يمكن أن يؤدي الحقن الضحل (داخل الأدمة) إلى تآكل المستحلب عبر الجلد. تذكر أن تتوقف لفترة وجيزة قبل إزالة المحقنة من موقع الحقن لضمان الحقن الكامل للمستحلب اللزج السميك ولمنع الارتجاع من الجلد.
بعد سبعة أيام من وضع الحقن تحت الجلد ، تأكد من وجود عقيدات واضحة على جانبي الساقين الخلفيتين. إذا لم يتم تحديد العقيدات ، فمن الممكن أن يكون الهواء قد تم حقنه بدلا من المستحلب. في هذه الحالة ، قد لا يكون الالتهاب الحاد قويا ، وقد لا يتطور الالتهاب المزمن.
منع تطور التهاب باطن المقلة المعدية:
سوف يولد التهاب باطن المقلة البكتيري أو الفطري متغيرا مربكا إذا لم يتم منعه44. من أجل منع التهاب باطن المقلة الجرثومي ، مارس دائما تقنية معقمة جيدة عند إجراء التعليق داخل الجسم الزجاجي ، والتعامل ، وتنظيف جميع الأدوات القابلة لإعادة الاستخدام التي ستتلامس مع العين. من المهم استخدام العناصر المعقمة ذات الاستخدام الواحد أو التعقيم أو التنظيف باستخدام 95٪ من الغسول أو المناديل الكحولية. الاستخدام المناسب للبيتادين المطبق على سطح العين والأغطية والفراء حول العين سيساعد أيضا في منع التهاب باطن المقلة45. من السهل التعرف على العين المصابة بالعدوى حيث سيتم طمس هياكل العين بسبب الالتهاب الشديد أثناء دورة ما بعد الحقن. هذا ليس نموذجيا لجامعة الأمير محمد بن فهد. يمكن أن يشير وجود نزيف داخل العين أيضا إلى التهاب باطن المقلة أو صدمة من الحقن. في مثل هذه الحالات ، استبعد هذه الحيوانات من الدراسة.
ضمان الاتساق في الحقن داخل الجسم الزجاجي:
يعد الحقن داخل الجسم الزجاجي خطوة حاسمة في تحريض الالتهاب الموثوق به والقابل للتكرار في PMU. إن توفير كمية ثابتة من تعليق Mtb مع كل حقنة ، وتجنب الصدمات ، ومنع ارتداد التعليق كلها عوامل يجب مراعاتها عند إجراء الحقن. لضمان تعليق ثابت ، قم بتدوير تعليق المخزون جيدا عند الذوبان وقبل تحميله في المحقنة. نظرا لأن مستخلص Mtb المستخدم لا يشكل حلا ، يمكن أن يخضع التعليق للترسيب بمرور الوقت. لضمان تركيز موحد لمستخلص Mtb في كل حقنة ، استخدم أو طرد وإعادة تحميل المحقنة في غضون 15 دقيقة من التحميل. يستخدم فينيليفرين للتوسع لتوفير مجال رؤية أكبر للعين الخلفية وتقليل خطر حدوث صدمة للعين أثناء الحقن. يولد هذا الانخفاض تراجعا طبيعيا للغطاء وبروبتوزا طفيفا للكرة الأرضية ، مما يسمح بتصور جيد للمنطقة الخلفية 1-2 مم إلى الحافة دون الحاجة إلى إمساك العين بالملقط. يمكن أن يؤدي استخدام الملقط لتقييد العين إلى حدوث صدمة محتملة وزيادة ضغط العين بشكل عابر وخطر ارتجاع تعليق MTB. يمكن أن تحدث الصدمة أيضا بسبب محاولة حقن الكثير من الحجم في العين. يقتصر حجم الحقن على 2 ميكرولتر لمنع الارتفاع الكبير والمطول لضغط العين والصدمات في العين. بالإضافة إلى ذلك ، سيكون للحيوانات الأصغر سنا عيون أصغر من الفئران البالغة. عادة ما توفر الفئران التي تتراوح مدتها بين 6 و 8 أسابيع (20-25 جم) حجما موحدا للعين وتضمن اتساقا أكبر في الالتهاب بعد حقن MTB. لوحظ تواتر أعلى من ارتداد ما بعد الحقن من تعليق المتفطرات في الفئران الأصغر. وهذا بدوره يؤدي إلى التهاب حاد أقل من المتوقع. يتم استخدام محلول الفلوريسئين المخفف لتزويد الحاقن المبتدئ بملاحظات بصرية حول نجاح تقنية الحقن الخاصة بهم. سيسمح التمدد في وقت الحقن بالتصور المباشر للمادة المحقونة في التجويف الزجاجي وفرصة ملاحظة أي دليل على صدمة العدسة. في حالة صدمة العدسة ، يمكن أن يتسبب ذلك في تغيير وضوح العدسة الذي سيؤدي إلى إعتام عدسة العين الذي يمكن تصوره في OCT. في حالة صدمة العين ، يجب استبعاد العينين من الدراسة بسبب احتمال الإصابة بالتهاب القزحية46 الناجم عن العدسة. نوصي بالتوقف لمدة 10 ثوان قبل إزالة المحقنة من العين للسماح بتشتت تعليق Mtb داخل العين وتقليل الارتجاع.
يمكن تعديل نموذج PMU لتغيير شدة الالتهاب الحاد عن طريق تغيير تركيز Mtb في الحقن داخل الجسم الزجاجي. تم اختبار جرعات مختلفة تتراوح من 2.5 ميكروغرام / ميكرولتر إلى 15 ميكروغرام / ميكرولتر سابقا في مختبرنا. ومع ذلك ، تم العثور على جرعات أعلى من 10 ميكروغرام / ميكرولتر تسبب تلفا شديدا للعين ، بما في ذلك تمزق العدسة التلقائي ، وذمة القرنية الشديدة والتندب ، و hyphema. هذه الدرجة من الشدة ليست نموذجية في المرضى الذين يعانون من التهاب القزحية بعد العدوى ، وبالتالي ، لا ينصح بهذه التركيزات. تم العثور على جرعة 5 ميكروغرام / ميكرولتر لإنتاج التهاب حاد خفيف إلى معتدل والتهاب العنبية المزمن الخفيف. تنتج جرعة 10 ميكروغرام / ميكرولتر مرضا حادا معتدلا إلى شديدا ومرضا مزمنا أكثر بروزا. وبالتالي ، فإن تغيير التركيز داخل الجسم الزجاجي يمكن أن يوفر شدة مرض بديلة للاستخدام حسب الحاجة بناء على السؤال التجريبي. يجب اختيار الضوابط للتأكد من أن النتائج ناتجة عن الاستجابة ل mTB وليس الصدمة المرتبطة بالحقن تحت الجلد أو داخل الجسم الزجاجي. في ضوابط الحقن الوهمية ، يمكن استخدام PBS بدلا من مستخلص mTB. بالنسبة للمقارنات مع الحيوانات غير المعرضة ، يجب اعتبار العينات الساذجة الحقيقية لأن عيون الزملاء ليست متكافئة دائما.
نظرا لصغر حجم عين الفأر ، يمكن أن يكون OCT مقايسة أكثر حساسية للكشف عن الالتهاب في الغرفة الأمامية من التصور المباشر أو التصوير المجهري للمجال الساطع. حدد العمل السابق مع PMU في الفئران25 أنه يمكن اكتشاف المزيد من الخلايا عن طريق الأنسجة أكثر من OCT ولكن هناك علاقة جيدة بين الطريقتين. OCT لديه ميزة إضافية أنه يمكن استخدامه لمراقبة الالتهاب طوليا في نفس الحيوان. كما استخدمت نماذج الفئران الرئيسية الأخرى لالتهاب القزحية ، مثل EAU و EIU ، OCT للتحليل الكمي12،47،48. في نموذج PMU للفئران ، تكون خلايا الغرفة الأمامية مرئية فقط في OCT ولا يمكن رؤيتها في الاختبارات السريرية ما لم يكن هناك نقص كبير في البويون. يمكن ملاحظة الالتهاب الزجاجي (التهاب الزجاجية الزجاجي) من خلال تصوير قاع العين الملون ، ولكن لا يمكن اكتشاف التغير الكمي إلا من خلال التصوير المقطعي المحوسب. يمكن التعرف بسهولة على الجوانب الأخرى للنموذج ، مثل التهاب الأوعية الدموية في شبكية العين وتلف الشبكية ، إما من خلال التصوير المقطعي المحوسب والتصوير المجهري لقاع العين الساطع.
عند استخدام OCT ، من المهم التفكير في كيفية تأثر التصوير الموضعي بالاختلافات الإقليمية في درجة الالتهاب. حددت التقارير السابقة توزيعا غير متساو للخلايا في الغرفة الأمامية للبشر ، مع وجود المزيد من الخلايا بشكل أقل شأنا49. في الفئران ، استعداد مماثل أمر شائع. وبالتالي ، فإن المسح الرأسي أو الشعاعي من خلال التيار المتردد سيساعد في ضمان الصور التي تلتقط نطاق الالتهاب. بالإضافة إلى ذلك ، فإن إجراء التصوير في نفس المكان سيوفر أيضا اتساقا للصور التي تم جمعها في نفس العين طوليا. للحصول على صور في نفس الجزء من العين ، استخدم معالم مستقرة ونهج منهجي. بالنسبة لصور الغرفة الأمامية ، يتم توسيط الصورة مباشرة بجوار قمة القرنية وتوجيهها عموديا بحيث يمكن اكتشاف وجود hypopyon في الزاوية السفلية. بالنسبة لصور المقطع الخلفي ، تتمركز الصورة على العصب البصري. يوصى بالتفكير في استخدام 3 عمليات مسح على الأقل للتسجيل لضمان التقاط التباين الإقليمي. في الحالات التي يقتصر فيها الالتهاب على المواقع الطرفية ، يمكن أن يكون الحصول على فحوصات الحجم مفيدا. يمكن أن تساعد مجموعة عمليات فحص الحجم أيضا في التقاط الاختلافات الإقليمية ولكنها ستزيد من متطلبات تخزين البيانات.
تشمل المقايسات الأخرى في الجسم الحي التي يمكن استخدامها لتوصيف الالتهاب في نموذج الماوس PMU التصوير الحيوي13,35. يمكن إجراء فحوصات ما بعد الوفاة مثل تحليل قياس التدفق الخلوي متعدد المعلمات لتحديد وقياس مجموعات الخلايا المناعية المتسللة في الغرفة المائية والخلفية للعين12,26. في نموذج PMU ، يتميز الالتهاب الحاد باستجابة فطرية مع تسلل العدلات السائد ، يليه استجابة مهيمنة للخلايا التائية التكيفية المزمنة والمستمرة والتي تستمر لأكثر من شهر35. تشمل المقايسات الأخرى لوظيفة المناعة التي يمكن إجراؤها على أنسجة ما بعد الوفاة تحليل السيتوكين السائل العيني. بالإضافة إلى ذلك ، يمكن استخدام فحوصات أخرى في اتجاه مجرى النهر مثل تسلسل mRNA والتصوير المناعي لتقييم أنماط التعبير الجيني والبروتيني لمجموعات الخلايا المناعية في شبكية العين في التهاب القزحية50,51.
يمكن تكرار نموذج PMU في أنظمة القوارض الأخرى باستخدام التعديلات المناسبة للأنواع المختلفة. تم استخدام نموذج PMU سابقا في الفئران والأرانب38،39،40. في الفئران ، يتطور التهاب العنبية الحاد بعد الحقن داخل الجسم الزجاجي الذي يزول تلقائيا على مدار 14 يوما دون ظهور علامات التهاب مزمن بواسطة علم الأنسجة24. في الأرانب، يستخدم تحريض التهاب العنبية جولتين من الحقن تحت الجلد قبل الحقن داخل الجسم الزجاجي ولكنه يولد أيضا التهاب العنبية القوي. تتمثل إحدى مزايا استخدام نموذج الماوس في التوافر السهل للعديد من السلالات المعدلة وراثيا والضربة القاضية التي يمكن أن تساعد في فهم الآلية الأساسية لالتهاب القزحية52. يمكن استخدام جميع نماذج القوارض لاختبار العلاج قبل السريري إذا تم إعطاء العامل بشكل منهجي أو كقطرة موضعية. ومع ذلك ، نظرا لحجمها الأكبر ، تعد عيون الفئران والأرانب نماذج أفضل للاستخدام في الدراسات قبل السريرية لخيارات العلاج بالحقن القابلة للزرع أو المحلية لالتهاب القزحية.
باختصار ، يوفر هذا البروتوكول للباحثين المهتمين بدراسة آليات التهاب العين المزمن أداة جديدة لا تعتمد على التحصين المسبق بمستضدات العين.
Disclosures
The authors have nothing to disclose.
Acknowledgements
يتم دعم هذا العمل بتمويل من المعاهد الوطنية للصحة ، بيثيسدا ، ماريلاند ، الولايات المتحدة (KP) K08EY0123998 ، (KP) R01EY030431 ، (KP) R21 EY02939 ، منحة UW Vision Research الأساسية (NEI P30EY01730) ، هدايا من Mark Daily ، صندوق أبحاث MD وصندوق أبحاث كريستوفر وأليدا لاثام ، منحة إدارية غير مقيدة من Research to Prevent Blindness ، وجائزة التطوير الوظيفي من Research to Prevent Blindness (KP). تم دعم العمل الذي تم إجراؤه في بريستول بتمويل إضافي من Sight Research UK و The Underwood Trust.
Materials
| AK-FLUOR | Akorn Pharmaceuticals, IL, USA | 10% Fluorescein sodium 100 mg/mL in 5 mL vial | |
| AnaSed | Akorn Animal Health, IL, USA | NDC 59399-110-20 | Xylazine 20 mg/mL |
| Betadine 5% Sterile Ophthalmic Prep Solution | Alcon, TX, USA | 8007-1 | |
| B-D Precision Glide Needles -25 G | Becton, Dickinson and Company, NJ, USA | 305122 | |
| B-D Precision Glide needle -30-G | Becton, Dickinson and Company, NJ, USA | 305106 | |
| Bond MAX, Bond Rx | Leica Biosystems, IL,USA | Automated IHC staining system | |
| Chloramphenicol ointment | Martindale Pharma, Romford, UK | 1% w/w Chloramphenicol | |
| EG1150H | Leica Biosystems, IL,USA | Tissue Embedding | |
| Envisu R2300 | Bioptigen/Leica | OCT Machine | |
| Freund's Incomplete Adjuvant | BD Difco, NJ, USA | 263910 | |
| GenTeal lubricant eye ointment | Alcon, TX, USA | — | |
| GenTeal lubricant eye gel | Alcon, TX, USA | — | |
| H37Ra lyophilized Mycobacteria extract | BD Difco, NJ, USA | 231141 | |
| Hamilton RN Needle (33/12/2)S | Hamilton, Reno, NV | 7803-05(33/12/2) | 33 G |
| Hamilton syringe | Hamilton, Reno, NV | CAL7633-01 | 5 µL |
| Insulin needle | Exel International, USA | 26029 | 1 mL |
| Isoflurane | |||
| Ketaset | Zoetis, USA | 377341 | Ketamine HCL 100 mg/mL |
| Microinjection Syringe Pump and Micro4Controller | World Precision Instruments, FL, USA | UMP3 | |
| Micron IV | Phoenix Research Laboratories, Pleasanton, CA | Alternative Imaging/OCT Machine | |
| Nanofil 10 µL syringe | World Precision Instruments, FL, USA | NANOFIL | |
| Nanofil Intraocular Injection Kit | World Precision Instruments, FL, USA | IO-KIT | |
| Olympus SZX10 | Olympus | Dissection scope | |
| PBS | Gibco | 14190 | |
| Phenylephrine Hydrochloride Ophthalmic Solution USP 2.5% Sterile 15 mL | Akorn Pharmaceuticals, IL, USA | 17478020115 | |
| RM2255 | Leica Biosystems, IL,USA | Tissue Sectioning | |
| TB Syringe | Becton, Dickinson and Company, NJ, USA | 309602 | 1 mL |
| Tetracaine 0.5% | Alcon, TX, USA | 1041544 | |
| Tissue Tek VIP series | Sakura Finetek USA, Inc.,CA. | Histology Tissue Processing | |
| Tropicamide 1% | Chauvin Pharmaceuticals, Romford, UK | Minims | |
| Tylenol | Johnson & Johnson Consumer Inc, PA, USA | NDC 50580-614-01 | Acetaminophen |
| Viscotears | Novartis Pharmaceuticals, Camberley, UK | Carbomer eye gel 0.2% w/w |
References
- American Academy of Ophthalmology. Aao 2019-2020 Basic and Clinical Science Course, Section 09: Uveitis and Ocular Inflammation. American Academy of Ophthalmology. , (2019).
- Caspi, R. R. Animal models of autoimmune and immune-mediated uveitis. Drug Discovery today. Disease Models. 3 (1), 3-9 (2006).
- DeVoss, J., et al. Spontaneous autoimmunity prevented by thymic expression of a single self-antigen. The Journal of Experimental Medicine. 203 (12), 2727-2735 (2006).
- Caspi, R. R., et al. A new model of autoimmune disease. Experimental autoimmune uveoretinitis induced in mice with two different retinal antigens. Journal of Immunology. 140 (5), 1490-1495 (1988).
- Tang, J., Zhu, W., Silver, P. B., Su, S. -. B., Chan, C. -. C., Caspi, R. R. Autoimmune uveitis elicited with antigen-pulsed dendritic cells has a distinct clinical signature and is driven by unique effector mechanisms: Initial encounter with autoantigen defines disease phenotype. The Journal of Immunology. 178 (9), 5578-5587 (2007).
- Broekhuyse, R. M., Kuhlmann, E. D., Winkens, H. J. Experimental melanin-protein induced uveitis (EMIU) is the sole type of uveitis evoked by a diversity of ocular melanin preparations and melanin-derived soluble polypeptides. Japanese Journal of Ophthalmology. 40 (4), 459-468 (1996).
- Pennesi, G., et al. A humanized model of experimental autoimmune uveitis in HLA class II transgenic mice. The Journal of Clinical Investigation. 111 (8), 1171-1180 (2003).
- Caspi, R. R. Understanding autoimmune uveitis through animal models. The Friedenwald lecture. Investigative Ophthalmology & Visual Science. 52 (3), 1872-1879 (2011).
- Bansal, S., Barathi, V. A., Iwata, D., Agrawal, R. Experimental autoimmune uveitis and other animal models of uveitis: An update. Indian Journal of Ophthalmology. 63 (3), 211-218 (2015).
- Smith, J. R., Hart, P. H., Williams, K. A. Basic pathogenic mechanisms operating in experimental models of acute anterior uveitis. Immunology and Cell Biology. 76 (6), 497-512 (1998).
- Rosenbaum, J. T., McDevitt, H. O., Guss, R. B., Egbert, P. R. Endotoxin-induced uveitis in rats as a model for human disease. Nature. 286 (5773), 611-613 (1980).
- Chu, C. J., et al. Multimodal analysis of ocular inflammation using the endotoxin-induced uveitis mouse model. Disease Models & Mechanisms. 9 (4), 473-481 (2016).
- Gutowski, M. B., Wilson, L., Van Gelder, R. N., Pepple, K. L. In vivo bioluminescence imaging for longitudinal monitoring of inflammation in animal models of uveitis. Investigative Ophthalmology & Visual Science. 58 (3), 1521-1528 (2017).
- World Health Organization. Global tuberculosis report 2019. World Health Organization. , (2019).
- Biswas, J., Badrinath, S. S. Ocular morbidity in patients with active systemic tuberculosis. International Ophthalmology. 19 (5), 293-298 (1995).
- Donahue, H. C. Ophthalmologic experience in a tuberculosis sanatorium. American Journal of Ophthalmology. 64 (4), 742-748 (1967).
- El-Asrar, M. A., Abouammoh, M., Al-Mezaine, H. S. Tuberculous uveitis. Middle East African Journal of Ophthalmology. 16 (4), 188-201 (2009).
- Bodaghi, B., et al. Chronic severe uveitis: etiology and visual outcome in 927 patients from a single center. Medicine. 80 (4), 263-270 (2001).
- Cunningham, E. T., Forrester, J. V., Rao, N. A., Zierhut, M. Post-infectious uveitis. Ocular Immunology and Inflammation. 24 (6), 603-606 (2016).
- Wroblewski, K. J., Hidayat, A. A., Neafie, R. C., Rao, N. A., Zapor, M. Ocular tuberculosis: a clinicopathologic and molecular study. Ophthalmology. 118 (4), 772-777 (2011).
- Yeh, S., Sen, H. N., Colyer, M., Zapor, M., Wroblewski, K. Update on ocular tuberculosis. Current Opinion in Ophthalmology. 23 (6), 551-556 (2012).
- Tagirasa, R., Parmar, S., Barik, M. R., Devadas, S., Basu, S. Autoreactive T cells in immunopathogenesis of TB-associated uveitis. Investigative Ophthalmology & Visual Science. 58 (13), 5682-5691 (2017).
- Agrawal, R., et al. Insights into the molecular pathogenesis of ocular tuberculosis. Tuberculosis. 126, 102018 (2021).
- Pepple, K. L., et al. Primed mycobacterial uveitis (PMU): Histologic and cytokine characterization of a model of uveitis in rats. Investigative Ophthalmology & Visual Science. 56 (13), 8438-8448 (2015).
- Pepple, K. L., Choi, W. J., Wilson, L., Van Gelder, R. N., Wang, R. K. Quantitative assessment of anterior segment inflammation in a rat model of uveitis using spectral-domain optical coherence tomography. Investigative Ophthalmology & Visual Science. 57 (8), 3567-3575 (2016).
- Pepple, K. L., Wilson, L., Van Gelder, R. N. Comparison of aqueous and vitreous Lymphocyte populations from two rat models of experimental uveitis. Investigative Ophthalmology & Visual Science. 59 (6), 2504-2511 (2018).
- Basu, S., Elkington, P., Rao, N. A. Pathogenesis of ocular tuberculosis: New observations and future directions. Tuberculosis. 124, 101961 (2020).
- Basu, S., Rao, N., Elkington, P. Animal models of ocular tuberculosis: Implications for diagnosis and treatment. Ocular Immunology and Inflammation. , 1-7 (2020).
- Mattapallil, M. J., et al. The Rd8 mutation of the Crb1 gene is present in vendor lines of C57BL/6N mice and embryonic stem cells, and confounds ocular induced mutant phenotypes. Investigative Ophthalmology & Visual Science. 53 (6), 2921-2927 (2012).
- Underwood, W., Anthony, R. . AVMA guidelines for the euthanasia of animals: 2020 edition. 2013 (30), 2020-2021 (2020).
- Donovan, J., Brown, P., Coligan, J. E. Handling and restraint. Current protocols in immunology. , (2006).
- Tremoleda, J. L., Kerton, A., Gsell, W. Anaesthesia and physiological monitoring during in vivo imaging of laboratory rodents: considerations on experimental outcomes and animal welfare. EJNMMI Research. 2 (1), 44 (2012).
- Cardiff, R. D., Miller, C. H., Munn, R. J. Manual hematoxylin and eosin staining of mouse tissue sections. Cold Spring Harbor protocols. 2014 (6), 655-658 (2014).
- Paques, M., et al. Panretinal, high-resolution color photography of the mouse fundus. Investigative Ophthalmology & Visual Science. 48 (6), 2769-2774 (2007).
- John, S., Rolnick, K., Wilson, L., Wong, S., Van Gelder, R. N., Pepple, K. L. Bioluminescence for in vivo detection of cell-type-specific inflammation in a mouse model of uveitis. Scientific Reports. 10 (1), 11377 (2020).
- Fortmann, S. D., Lorenc, V. E., Hackett, S., Campochiaro, P. A. Murine Vitreous Tap (MurViTap): a novel technique to extract uncontaminated mouse vitreous humor, quantify retinal vascular permeability, and compare proteins secreted by diseased and normal retina. Investigative ophthalmology & visual science. 58 (8), 5978 (2017).
- Caspi, R. R. Understanding autoimmunity in the eye: from animal models to novel therapies. Discovery Medicine. 17 (93), 155-162 (2014).
- Mruthyunjaya, P., et al. Efficacy of low-release-rate fluocinolone acetonide intravitreal implants to treat experimental uveitis. Archives of Ophthalmology. 124 (7), 1012-1018 (2006).
- Jaffe, G. J., Yang, C. S., Wang, X. C., Cousins, S. W., Gallemore, R. P., Ashton, P. Intravitreal sustained-release cyclosporine in the treatment of experimental uveitis. Ophthalmology. 105 (1), 46-56 (1998).
- Pepple, K. L., et al. Uveitis therapy with shark variable novel antigen receptor domains targeting tumor necrosis factor alpha or inducible t-cell costimulatory ligand. Translational Vision Science & Technology. 8 (5), 11 (2019).
- Mattapallil, M. J., et al. Characterization of a New epitope of IRBP that induces moderate to severe uveoretinitis in mice with H-2b haplotype. Investigative Ophthalmology & Visual Science. 56 (9), 5439-5449 (2015).
- Silver, P. B., Chan, C. C., Wiggert, B., Caspi, R. R. The requirement for pertussis to induce EAU is strain-dependent: B10.RIII, but not B10.A mice, develop EAU and Th1 responses to IRBP without pertussis treatment. Investigative Ophthalmology & Visual Science. 40 (12), 2898-2905 (1999).
- Li, Q., Peng, B., Whitcup, S. M., Jang, S. U., Chan, C. C. Endotoxin induced uveitis in the mouse: susceptibility and genetic control. Experimental Eye Research. 61 (5), 629-632 (1995).
- Astley, R. A., Coburn, P. S., Parkunan, S. M., Callegan, M. C. Modeling intraocular bacterial infections. Progress in Retinal and Eye Research. 54, 30-48 (2016).
- Lau, P. E., Jenkins, K. S., Layton, C. J. Current evidence for the prevention of endophthalmitis in anti-VEGF intravitreal injections. Journal of Ophthalmology. 2018, 8567912 (2018).
- Nche, E. N., Amer, R. Lens-induced uveitis: an update. Graefe’s Archive for Clinical and Experimental Ophthalmology. 258 (7), 1359-1365 (2020).
- Chu, C. J., et al. Assessment and in vivo scoring of murine experimental autoimmune uveoretinitis using optical coherence tomography. PLoS ONE. 8 (5), 63002 (2013).
- Harimoto, K., Ito, M., Karasawa, Y., Sakurai, Y., Takeuchi, M. Evaluation of mouse experimental autoimmune uveoretinitis by spectral domain optical coherence tomography. The British Journal of Ophthalmology. 98 (6), 808-812 (2014).
- Li, Y., Lowder, C., Zhang, X., Huang, D. Anterior chamber cell grading by optical coherence tomography. Investigative Ophthalmology & Visual Science. 54 (1), 258-265 (2013).
- Bell, O. H., et al. Single eye mRNA-seq reveals normalisation of the retinal microglial transcriptome following acute inflammation. Frontiers in Immunology. 10, 3033 (2019).
- Lipski, D. A., et al. Retinal endothelial cell phenotypic modifications during experimental autoimmune uveitis: a transcriptomic approach. BMC Ophthalmology. 20 (1), 106 (2020).
- Agarwal, R. K., Silver, P. B., Caspi, R. R., Perl, A. Rodent Models of Experimental Autoimmune Uveitis. Autoimmunity. Methods in Molecular Biology (Methods and Protocols). , 443-469 (2012).
