Summary

Stimolazione durale e test di von Frey periorbitale nei topi come modello preclinico di cefalea

Published: July 29, 2021
doi:

Summary

Il sintomo più notevole dell’emicrania è il forte dolore alla testa, e si ipotizza che questo sia mediato dai neuroni sensoriali che innervano le meningi. Qui, presentiamo un metodo per applicare localmente sostanze alla dura in modo minimamente invasivo mentre si utilizza l’ipersensibilità facciale come output.

Abstract

Si ritiene che le meningi craniche, composte da dura madre, aracnoide e pia madre, servano principalmente funzioni strutturali per il sistema nervoso. Ad esempio, proteggono il cervello dal cranio e ancorano / organizzano l’apporto vascolare e neuronale della corteccia. Tuttavia, le meningi sono anche implicate in disturbi del sistema nervoso come l’emicrania, dove il dolore sperimentato durante un’emicrania è attribuito all’infiammazione sterile locale e alla successiva attivazione di afferenze nocicettive locali. Tra gli strati nelle meningi, la dura madre è di particolare interesse nella fisiopatologia dell’emicrania. È altamente vascolarizzato, ospita neuroni nocicettivi locali ed è sede di una vasta gamma di cellule residenti come le cellule immunitarie. Sottili cambiamenti nel microambiente meningeo locale possono portare all’attivazione e alla sensibilizzazione dei nocicettori perivascolari durali, portando così al dolore emicranico. Gli studi hanno cercato di affrontare il modo in cui le afferenze durali vengono attivate / sensibilizzate utilizzando elettrofisiologia in vivo, tecniche di imaging o modelli comportamentali, ma questi comunemente richiedono interventi chirurgici molto invasivi. Questo protocollo presenta un metodo per l’applicazione relativamente non invasiva di composti sulla dura madre nei topi e un metodo adatto per misurare la sensibilità tattile simile alla cefalea utilizzando il test periorbitale di von Frey dopo stimolazione durale. Questo metodo mantiene l’integrità della dura e del cranio e riduce gli effetti confondenti delle tecniche invasive iniettando sostanze attraverso una cannula modificata di 0,65 mm alla giunzione di suture sagittali e lambdoidi non fuse. Questo modello preclinico consentirà ai ricercatori di studiare una vasta gamma di stimoli durali e il loro ruolo nella progressione patologica dell’emicrania, come l’attivazione dei nocicettori, l’attivazione delle cellule immunitarie, i cambiamenti vascolari e i comportamenti del dolore, il tutto mantenendo condizioni prive di lesioni al cranio e alle meningi.

Introduction

Il dolore emicranico rimane un importante problema di salute pubblica in tutto il mondo. L’Organizzazione Mondiale della Sanità la classifica come la sesta malattia più diffusa al mondo, che affligge poco meno del 15% della popolazione della Terra1 e causa un notevole onere socioeconomico sulla società 2,3. Le opzioni di trattamento e la loro efficacia sono state non ottimali e forniscono solo sollievo sintomatico e non modificano significativamente gli eventi fisiopatologici che sono alla base dell’insorgenza di emicrania 4,5. La mancanza di successo del trattamento è probabilmente dovuta al fatto che l’emicrania è un disturbo multifattoriale la cui patologia è poco conosciuta, portando a un numero limitato di bersagli terapeutici. L’emicrania è anche difficile da catturare completamente nei modelli animali, soprattutto dato che la diagnosi di emicrania è fatta sulla base della comunicazione verbale con i pazienti che descrivono la loro esperienza con segni distintivi di emicrania come aura, mal di testa, fotofobia e allodinia. Ciononostante, è importante notare che i recenti progressi nei trattamenti per l’emicrania stanno attualmente superando i trattamenti per molte condizioni neurologiche che sono state ben convalidate dai modelli preclinici. Ad esempio, gli anticorpi monoclonali e le piccole molecole che colpiscono il peptide correlato al gene della calcitonina o il suo recettore hanno avuto molto successo nel migliorare la qualità della vita di chi soffre di emicrania e possono potenzialmente trasformare la gestione clinica dell’emicrania. Mentre c’è stato un progresso nella comprensione di questo disturbo, continua ad esserci molto ancora da chiarire.

Sulla base di modelli animali preclinici e studi sull’uomo, è ampiamente accettato che l’emicrania è iniziata dall’attivazione aberrante delle fibre nocicettive all’interno delle meningi che segnalano attraverso i gangli della radice dorsale del trigemino e della cervicale superiore 6,7,8,9,10. Nonostante questa teoria, molti studi usano ancora la somministrazione sistemica di farmaci per comprendere i meccanismi sottostanti che contribuiscono all’emicrania. Mentre il dosaggio sistemico dei farmaci ha sostanzialmente rafforzato la nostra comprensione, questi risultati non valutano direttamente se le azioni locali all’interno del tessuto bersaglio di interesse svolgono un ruolo nell’emicrania. Al contrario, diversi studi hanno adottato un approccio per stimolare la dura; tuttavia, questi esperimenti richiedono l’impianto di cannula tramite una craniotomia invasiva e tempi di recupero prolungati11,12. A causa di queste limitazioni, abbiamo sviluppato un approccio minimamente invasivo per stimolare localmente la dura in cui la mancanza di una craniotomia elimina il recupero post-chirurgico e consente test immediati in animali svegli 12,13,14. Queste iniezioni vengono eseguite in anestesia con isoflurano leggero e somministrate alla giunzione delle suture sagittale e lambdoide nei topi.

Sono stati sviluppati diversi approcci per valutare le risposte comportamentali nocicettive nei roditori15. L’allodinia cutanea è stata riportata in circa l’80% dei malati di emicrania16,17 e rappresenta un potenziale endpoint traslazionale per l’uso nei roditori. Nei modelli preclinici, l’applicazione di filamenti di von Frey alla regione plantare della zampa del roditore è stata utilizzata per valutare i comportamenti del dolore nei modelli preclinici di emicrania. Il limite principale di questo approccio è che non testa la regione cefalica. Il punteggio della smorfia facciale è stato utilizzato per catturare i comportamenti del dolore nei roditori analizzando le espressioni facciali dopo l’induzione di stimoli dolorosi18,19. Tuttavia, i suoi limiti includono solo la cattura di risposte a stimoli acuti e non condizioni di dolore orofacciale cronico. La toelettatura facciale e la diminuzione dell’allevamento sono anche considerate output di risposte comportamentali in modelli preclinici di emicrania20,21. I limiti del primo includono difficoltà nel differenziare le risposte al dolore dalla normale toelettatura di routine e altre sensazioni come il prurito. Nel caso di quest’ultimo, i comportamenti di allevamento in genere diminuiscono rapidamente dopo l’introduzione dei roditori in nuovi ambienti. Sebbene ciascuno di questi endpoint comportamentali sia prezioso nella comprensione di vari meccanismi che contribuiscono alle condizioni del dolore, vi è un bisogno critico di modelli preclinici di disturbi del dolore come l’emicrania per includere endpoint che catturano specificamente le risposte di ipersensibilità cefalica. Valutare l’ipersensibilità tattile della pelle periorbitale dopo stimolazione durale è un metodo che può fornire una migliore comprensione dei meccanismi che contribuiscono all’emicrania in cui i sintomi sensoriali sono prevalentemente di natura cefalica. Qui, descriviamo un metodo per somministrare sostanze sulla dura del topo come modello preclinico di emicrania. Dopo l’applicazione durale, presentiamo anche un metodo dettagliato per testare l’ipersensibilità tattile periorbitale utilizzando filamenti di von Frey calibrati applicati nel metodo Up-down di Dixon.

Protocol

Tutte le procedure sono state condotte previa approvazione del Comitato istituzionale per la cura e l’uso degli animali presso l’Università del Texas a Dallas. In questo studio sono stati utilizzati topi ICR (CD-1) (30-35 g) e C57/BL6 (25-30 g) di età compresa tra 6-8 settimane. 1. Infusore durale Creare gli infusori/iniettori del mouse modificando una cannula interna e un infusore disponibili in commercio per iniezioni unilaterali con un cappuccio in plastica silice fusa non metal…

Representative Results

Questo metodo di iniezione viene utilizzato per somministrare stimoli sulla dura dei topi in modo che possano verificarsi successivi test comportamentali. L’output comportamentale più comune misurato con questo modello è l’ipersensibilità facciale cutanea valutata tramite von Frey 12,13,14. Qui mostriamo come questo modello può essere utilizzato per valutare i potenziali contributi specifici del sesso alla patologia dell’emi…

Discussion

I cambiamenti disadattivi nel sistema nocicettivo locale nella dura sono considerati un contributo chiave alla fase di mal di testa degli attacchi di emicrania nonostante la mancanza di lesioni tissutali25,26. Qui lo studio presenta un metodo in base al quale la stimolazione minimamente invasiva della dura può indurre ipersensibilità tattile facciale. Chiarire i meccanismi e gli eventi coinvolti nell’attivazione del nocicettore durale senza causare danni al cra…

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Questo studio è stato supportato dal National Institutes of Health (NS104200 e NS072204 a GD).

Materials

4 oz Hot Paper Cups Choice Paper Company 5004W https://www.webstaurantstore.com/choice-4-oz-white-poly-paper-hot-cup-case/5004W.html
Absorbent Underpads Fisherbrand 14-206-65 https://www.fishersci.com/shop/products/fisherbrand-absorbent-underpads-8/p-306048
C313I/SPC Internal 28 G cannula P1 Technologies (formerly Plastics One) 8IC313ISPCXC I.D. 18 mm, O.D. 35 mm
Gastight Model 1701 SN Syringes Hamilton 80008 https://www.hamiltoncompany.com/laboratory-products/syringes/80008
Ismatec Pump Tubing, 0.19 mm Cole-Palmer EW-96460-10 https://www.coleparmer.com/i/ismatec-pump-tubing-2-stop-tygon-s3-e-lab-0-19-mm-id-12-pk/9646010
Stand with chicken wire Custom The galvanized steel chicken wire dimensions are 0.25 in. x 19-gauge
Testing Rack with individual  Chambers Custom Each chamber should have a division between each mouse and lids to contain the mouse. The chambers should also be large enough to hold a 4 oz. paper cup.
von Frey Filaments Touch test/Stoelting 58011 https://www.stoeltingco.com/touch-test.html

References

  1. GBD 2016 Disease and Injury Incidence and Prevalence Collaborators. Global, regional, and national incidence, prevalence, and years lived with disability for 328 diseases and injuries for 195 countries, 1990-2016: a systematic analysis for the Global Burden of Disease Study 2016. Lancet. 390 (10100), 1211-1259 (2017).
  2. Woldeamanuel, Y. W., Cowan, R. P. Migraine affects 1 in 10 people worldwide featuring recent rise: A systematic review and meta-analysis of community-based studies involving 6 million participants. Journal of the Neurological Sciences. 372, 307-315 (2017).
  3. Burch, R. C., Loder, S., Loder, E., Smitherman, T. A. The prevalence and burden of migraine and severe headache in the United States: updated statistics from government health surveillance studies. Headache. 55 (1), 21-34 (2015).
  4. Ashina, M. Migraine. New England Journal of Medicine. 383 (19), 1866-1876 (2020).
  5. Ashina, M., et al. Migraine: integrated approaches to clinical management and emerging treatments. Lancet. 397 (10283), 1505-1518 (2021).
  6. Jacobs, B., Dussor, G. Neurovascular contributions to migraine: Moving beyond vasodilation. Neuroscience. 338, 130-144 (2016).
  7. Koyuncu Irmak, D., Kilinc, E., Tore, F. Shared Fate of Meningeal Mast Cells and Sensory Neurons in Migraine. Frontiers in Cellular Neuroscience. 13, 136 (2019).
  8. Levy, D. Migraine pain, meningeal inflammation, and mast cells. Current Pain and Headache Reports. 13 (3), 237-240 (2009).
  9. Levy, D., Labastida-Ramirez, A., MaassenVanDenBrink, A. Current understanding of meningeal and cerebral vascular function underlying migraine headache. Cephalalgia. 39 (13), 1606-1622 (2019).
  10. Phebus, L. A., Johnson, K. W. Dural inflammation model of migraine pain. Current Protocols in Neuroscience. , (2001).
  11. Fried, N. T., Maxwell, C. R., Elliott, M. B., Oshinsky, M. L. Region-specific disruption of the blood-brain barrier following repeated inflammatory dural stimulation in a rat model of chronic trigeminal allodynia. Cephalalgia. 38 (4), 674-689 (2018).
  12. Avona, A., et al. Dural calcitonin gene-related peptide produces female-specific responses in rodent migraine models. The Journal of Neuroscience. 39 (22), 4323-4331 (2019).
  13. Burgos-Vega, C. C., et al. Non-invasive dural stimulation in mice: A novel preclinical model of migraine. Cephalalgia. 39 (1), 123-134 (2019).
  14. Avona, A., et al. Meningeal CGRP-Prolactin interaction evokes female-specific migraine behavior. Annals of Neurology. 89 (6), 1129-1144 (2021).
  15. Deuis, J. R., Dvorakova, L. S., Vetter, I. Methods used to evaluate pain behaviors in rodents. Frontiers in Molecular Neuroscience. 10, 284 (2017).
  16. Lipton, R. B., et al. Cutaneous allodynia in the migraine population. Annals of Neurology. 63 (2), 148-158 (2008).
  17. Goadsby, P. J. Migraine, allodynia, sensitisation and all of that. European Neurology. 53, 10-16 (2005).
  18. Langford, D. J., et al. Coding of facial expressions of pain in the laboratory mouse. Nature Methods. 7 (6), 447-449 (2010).
  19. Mogil, J. S., Pang, D. S. J., Silva Dutra, G. G., Chambers, C. T. The development and use of facial grimace scales for pain measurement in animals. Neuroscience & Biobehavioral Reviews. 116, 480-493 (2020).
  20. Vuralli, D., Wattiez, A. S., Russo, A. F., Bolay, H. Behavioral and cognitive animal models in headache research. The Journal of Headache and Pain. 20 (1), 11 (2019).
  21. Mason, B. N., et al. Induction of migraine-like photophobic behavior in mice by both peripheral and central CGRP mechanisms. The journal of Neuroscience. 37 (1), 204-216 (2017).
  22. Dixon, W. J., Mood, A. M. A method for obtaining and analyzing sensitivity data. The Journal of the American Statistical Association. 43 (241), 109-126 (1948).
  23. Dixon, W. The up-and-down method for small samples. The Journal of the American Statistical Association. 60, (1965).
  24. Bonin, R. P., Bories, C., De Koninck, Y. A simplified up-down method (SUDO) for measuring mechanical nociception in rodents using von Frey filaments. Molecular Pain. 10, 26 (2014).
  25. Ramachandran, R. Neurogenic inflammation and its role in migraine. Seminars in Immunopathology. 40 (3), 301-314 (2018).
  26. Edvinsson, L., Haanes, K. A., Warfvinge, K. Does inflammation have a role in migraine. Nature Reviews Neurology. 15 (8), 483-490 (2019).
  27. Stokely, M. E., Orr, E. L. Acute effects of calvarial damage on dural mast cells, pial vascular permeability, and cerebral cortical histamine levels in rats and mice. Journal of Neurotrauma. 25 (1), 52-61 (2008).
  28. Theoharides, T. C., Donelan, J., Kandere-Grzybowska, K., Konstantinidou, A. The role of mast cells in migraine pathophysiology. Brain Research Reviews. 49 (1), 65-76 (2005).
  29. Conti, P., et al. Progression in migraine: Role of mast cells and pro-inflammatory and anti-inflammatory cytokines. European Journal of Pharmacology. 844, 87-94 (2019).
  30. Rea, B. J., et al. Peripherally administered calcitonin gene-related peptide induces spontaneous pain in mice: implications for migraine. Pain. 159 (11), 2306-2317 (2018).

Play Video

Cite This Article
Mason, B. N., Avona, A., Lackovic, J., Dussor, G. Dural Stimulation and Periorbital von Frey Testing in Mice As a Preclinical Model of Headache. J. Vis. Exp. (173), e62867, doi:10.3791/62867 (2021).

View Video