Summary

出芽酵母サッカロミセスセレビシエにおけるサブソキアドタンパク質の局在化の評価

Published: July 19, 2021
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Summary

最近の進歩にもかかわらず、多くの酵母ミトコンドリアタンパク質は依然としてその機能が全く知られていません。このプロトコルは、タンパク質の分子機能の解明の基礎であったタンパク質の局所的な局在を決定するための、シンプルで信頼性の高い方法を提供します。

Abstract

酵母ミトコンドリアプロテオームの特徴付けの最近の進歩にもかかわらず、かなりの数のタンパク質の局所的な局在は依然として不可解である。ここでは、ミトコンドリアタンパク質機能解明の基本的なステップと考えられる酵母ミトコンドリアタンパク質の副組織化機能の局在を決定するための堅牢かつ効果的な方法について述べた。この方法は、非常に純粋な無傷のミトコンドリアを得ることを含む最初のステップを含む。これらのミトコンドリア製剤は、次に、低張性ショック(腫脹)およびプロテナーゼK(プロテアーゼ)によるインキュベーションからなる亜分画プロトコールを受ける。腫脹の間、外のミトコンドリア膜は選択的に破壊され、プロテイナーゼKが膜間空間コンパートメントのタンパク質を消化することを可能にする。並行して、膜タンパク質のトポロジーに関する情報を得るために、ミトコンドリア製剤は、最初に超音波処理され、次いで炭酸ナトリウムによるアルカリ抽出を行う。最後に、遠心分離後、これらの異なる治療からのペレットおよび上清画分は、SDS-PAGEおよびウェスタンブロットによって分析される。局所的局在化と、関心のあるタンパク質の膜トポロジーは、そのウェスタンブロットプロファイルを既知の標準と比較することによって得られる。

Introduction

ミトコンドリアは、生物エネルギー、細胞代謝、およびシグナル伝達経路において重要な役割を果たす真核細胞の重要なオルガネラである1。これらのタスクを適切に実行するために, ミトコンドリアは、その構造と機能を担当するタンパク質と脂質のユニークなセットに依存しています。.出芽酵母サッカロミセス・セレビシエは、ミトコンドリアプロセスおよび他のオルガネラ2の研究のためのモデルシステムとして広く使用されています。酵母の8つのタンパク質についてのミトコンドリアゲノムコード;ミトコンドリアタンパク質の大部分(99%)は、細胞質リボソームに翻訳された核遺伝子によってコード化され、その後、高度なタンパク質輸入機によって正しいサブコションコンパートメントに輸入されます3,4,5。したがって、ミトコンドリアの生生成は、核ゲノムとミトコンドリアゲノムの両方の協調発現に依存する6,7。ミトコンドリア生検における欠損を引き起こす遺伝子変異は、ヒト疾患8,9,10と関連している

過去20年間で、高精製ミトコンドリアを標的としたハイスループットプロテオミクス研究は、酵母ミトコンドリアプロテオームの包括的な特性化をもたらし、少なくとも900タンパク質11,12,13,14から構成されると推定されています。これらの研究は貴重な情報を提供したが、4つのミトコンドリアサブコンパートメントにおける各タンパク質のサブオーガネラの局在、すなわち、外膜(OM)、膜間空間(IMS)、内膜(IM)、およびマトリックスが依然として必要である。この質問は、2つの小さなミトコンドリアサブコンパートメント(OMおよびIMS)15,16のプロテオミオミ全体の研究で部分的に対処された。最近では、Vögtleと共同研究者は、酵母におけるサブコションドリアルタンパク質分布の高品質なグローバルマップを生成することで大きな前進を遂げた。著者らは、SILACベースの定量的質量分析、異なるサブコセンドローム分画プロトコル、およびOMおよびIMSプロテオームからのデータセットを組み合わせた統合アプローチを用いて、818タンパク質を4つのミトコンドリアサブコンパートメント13に割り当てた。

これらのハイスループットプロテオーム研究によって達成された進歩にもかかわらず、提出プロテオーム組成に関する我々の知識は決して完全ではないほどです。実際、Vögtleおよび共同研究者によって酵母ミトコンドリアに局在していると報告された986タンパク質のうち、168は4つのサブソキアドリアコンパートメント13のいずれにも割り当てることができなかった。さらに、ミトコンドリア膜の周囲に末梢に付着すると予測されたタンパク質の膜トポロジーに関する情報は提供しなかった。例えば、内膜に末梢に付着したタンパク質がマトリックスや膜間空間に向いているかどうかを知ることはできない。プロテオーム全体の研究からこれらの欠けているデータとは別に、かなりの数のミトコンドリアタンパク質のサブオーガネラの局在に関する矛盾する情報があります。その一例が、サッカロマイセスゲノムデータベース(SGD)やユニプロットなどの一般的なデータベースで膜間空間タンパク質として割り当てられたプロテアーゼPrd1です。驚くべきことに、ここで説明したような亜分解析プロトコルを使用して、Vögtleと共同研究者は、Prd1が本物のマトリックスタンパク質13であることを明確に示した。前述のように、多くのミトコンドリアタンパク質の局所的な局在化を解明または再評価する必要があります。ここでは、酵母ミトコンドリアタンパク質の副オーガンエリアの局在を決定するための、シンプルで信頼性の高いプロトコルを提供します。このプロトコルは、様々な研究グループによって開発され、最適化され、多くのミトコンドリアタンパク質の膜トポロジーと同様に、サブソクオントリアル局在化を決定するために日常的に使用されてきました。

Protocol

1. 酵母細胞の増殖 細胞の小さな部分を-80°CグリセロールストックからYPD(1%酵母エキス、2%ペプトン、2%グルコース)寒天プレートにストリークさせることにより、目的の株の単一コロニーを単一分離する。プレートを30°Cで2~3日間インキュベートします。注:このプロトコルで使用されるS.セレビシエ株はBY4741(MATα;;彼の3Δ1;leu2Δ0;met15Δ0;<em…

Representative Results

提出分画プロトコルの成功は、高度に精製された無傷のミトコンドリアを得るにかかっています。このために、酵母細胞のリシスの間、オルガネラの無傷性はほぼ完全に保存されたままである必要があります。これは、Dounceホモジナイザーを使用して、細胞壁の酵素消化とそれに続く細胞膜の物理的破壊を組み合わせた細胞ライシスプロトコルを使用することによって達成される。ミトコン?…

Discussion

ここに示すプロトコルは、送信コンパートメント13、1418212223におけるタンパク質の局在を決定するために長い間使用され、継続的に最適化されています。このプロトコルの信頼性と再現性は、ミトコンドリア製剤の純度と完全性に強…

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

サブションドリアルマーカータンパク質Cytに対して抗体を提供してくれたA.ツァゴロフ博士(コロンビア大学)に感謝します。 b2、αKGD、およびスコ1。また、この議定書の確立に際して、マリオ・エンリケ・デ・バロス博士(サンパウロ大学)の有益な議論とコメントに感謝します。

この研究は、プンダサン・デ・アンパロ・ア・ペスキサ・ド・エスタド・デ・サンパウロ(FAPESP)(助成金2013/07937-8)からの研究助成金によって支えられました。

フェルナンド・ゴメスとヘレナ・トゥラーノもFAPESP、助成金2017/09443-3と2017/23839-7によってサポートされています。アンジェリカ・ラモスは、コルデナサン・デ・アペルフェイソアメント・デ・ペソアル・デ・ニーヴェル・スーペリア(CAPES)の支援も受けます。

Materials

Bacto Peptone BD 211677
Bacto Yeast extract BD 212750
Beckman Ultra-Clear Centrifuge Tubes, 14 x 89 mm Beckman Coulter 344059
Bovine serum albumin (BSA fatty acid free) Sigma-Aldrich A7030 Component of Homogenization buffer
DL-Dithiothreitol Sigma-Aldrich 43815 Component of DDT buffer
D-Sorbitol Sigma-Aldrich S1876
Ethylenediaminetetraacetic acid (EDTA) Sigma-Aldrich E9884
Galactose Sigma-Aldrich G0625
Glucose Sigma-Aldrich G7021
MOPS Sigma-Aldrich M1254
Phenylmethylsulfonyl fluoride (PMSF) Sigma-Aldrich P7626 Used to inactivate proteinase K
Potassium phosphate dibasic Sigma-Aldrich P3786
Potassium phosphate monobasic Sigma-Aldrich P0662
Proteinase K Sigma-Aldrich
Sucrose Sigma-Aldrich S8501
Trichloroacetic acid (TCA) Sigma-Aldrich T6399
Trizma Base Sigma-Aldrich T1503
Zymolyase-20T from Arthrobacter luteus MP Biomedicals, Irvine, CA 320921 Used to lyse living yeast cell walls to produce spheroplast

References

  1. Pfanner, N., Warscheid, B., Wiedemann, N. Mitochondrial proteins: from biogenesis to functional networks. Nature Reviews Molecular Cell Biology. 20 (5), 267-284 (2019).
  2. Malina, C., Larsson, C., Nielsen, J. Yeast mitochondria: An overview of mitochondrial biology and the potential of mitochondrial systems biology. FEMS Yeast Research. 18 (5), 1-17 (2018).
  3. Wiedemann, N., Pfanner, N. Mitochondrial machineries for protein import and assembly. Annual Review of Biochemistry. 86, 685-714 (2017).
  4. Chacinska, A., Koehler, C. M., Milenkovic, D., Lithgow, T., Pfanner, N. Importing mitochondrial proteins: machineries and mechanisms. Cell. 138 (4), 628-644 (2009).
  5. Schmidt, O., Pfanner, N., Meisinger, C. Mitochondrial protein import: from proteomics to functional mechanisms. Nature Reviews. Molecular Cell Biology. 11 (9), 655-667 (2010).
  6. Couvillion, M. T., Soto, I. C., Shipkovenska, G., Churchman, L. S. Synchronized mitochondrial and cytosolic translation programs. Nature. 533 (7604), 499-503 (2016).
  7. Richter-Dennerlein, R., et al. Mitochondrial protein synthesis adapts to influx of nuclear-encoded protein. Cell. 167 (2), 471-483 (2016).
  8. Suomalainen, A., Battersby, B. J. Mitochondrial diseases: The contribution of organelle stress responses to pathology. Nature Reviews Molecular Cell Biology. 19 (2), 77-92 (2018).
  9. Nicolas, E., Tricarico, R., Savage, M., Golemis, E. A., Hall, M. J. Disease-associated genetic variation in human mitochondrial protein import. American Journal of Human Genetics. 104 (5), 784-801 (2019).
  10. Calvo, S. E., Mootha, V. K. The mitochondrial proteome and human disease. Annual Review of Genomics and Human Genetics. 11, 25-44 (2010).
  11. Reinders, J., Zahedi, R. P., Pfanner, N., Meisinger, C., Sickmann, A. Toward the complete yeast mitochondrial proteome: Multidimensional separation techniques for mitochondrial proteomics. Journal of Proteome Research. 5 (7), 1543-1554 (2006).
  12. Sickmann, A., et al. The proteome of Saccharomyces cerevisiae mitochondria. Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America. 100 (23), 13207-13212 (2003).
  13. Vögtle, F. N., et al. Landscape of submitochondrial protein distribution. Nature Communications. 8 (1), 00359 (2017).
  14. Morgenstern, M., et al. Definition of a high-confidence mitochondrial proteome at quantitative scale. Cell Reports. 19 (13), 2836-2852 (2017).
  15. Zahedi, R. P., et al. Proteomic analysis of the yeast mitochondrial outer membrane reveals accumulation of a subclass of preproteins. Molecular Biology of the Cell. 17 (3), 1436-1450 (2006).
  16. Vögtle, F. -. N., et al. Intermembrane space proteome of yeast mitochondria. Molecular & Cellular Proteomics. 11 (12), 1840-1852 (2012).
  17. Gregg, C., Kyryakov, P., Titorenko, V. I. Purification of mitochondria from yeast cells. Journal of Visualized Experiments: JoVE. (30), e1417 (2009).
  18. Boldogh, I. R., Pon, L. A. Purification and subfractionation of mitochondria from the yeast Saccharomyces cerevisiae. Methods in Cell Biology. 80 (06), 45-64 (2007).
  19. Gomes, F., et al. Proteolytic cleavage by the inner membrane peptidase (IMP) complex or Oct1 peptidase controls the localization of the yeast peroxiredoxin Prx1 to distinct mitochondrial compartments. Journal of Biological Chemistry. 292 (41), 17011-17024 (2017).
  20. Fujiki, Y., Hubbard, L., Fowler, S., Lazarow, P. B. Isolation of intracellular membranes by means of sodium carbonate treatment: Application to endoplasmic reticulum. Journal of Cell Biology. 93 (1), 97-102 (1982).
  21. Glick, B. S., et al. Cytochromes c1 and b2 are sorted to the intermembrane space of yeast mitochondria by a stop-transfer mechanism. Cell. 69 (5), 809-822 (1992).
  22. Diekert, K., de Kroon, A. I., Kispal, G., Lill, R. Isolation and subfractionation of mitochondria from the yeast Saccharomyces cerevisiae. Methods in Cell Biology. 65, 37-51 (2001).
  23. Glick, B. S. Pathways and energetics of mitochondrial protein import in Saccharomyces cerevisiae. Methods in Enzymology. 260 (1992), 224-231 (1995).
  24. Meisinger, C., Sommer, T., Pfanner, N. Purification of Saccharomcyes cerevisiae mitochondria devoid of microsomal and cytosolic contaminations. Analytical Biochemistry. 287 (2), 339-342 (2000).
  25. Meisinger, C., Pfanner, N., Truscott, K. N. Isolation of yeast mitochondria. Methods in molecular biology. 313 (1), 33-39 (2006).
  26. Kang, Y., et al. Tim29 is a novel subunit of the human TIM22 translocase and is involved in complex assembly and stability. eLife. 5, 17463 (2016).
  27. Wrobel, L., Sokol, A. M., Chojnacka, M., Chacinska, A. The presence of disulfide bonds reveals an evolutionarily conserved mechanism involved in mitochondrial protein translocase assembly. Scientific Reports. 6, 27484 (2016).
  28. Callegari, S., et al. TIM29 is a subunit of the human carrier translocase required for protein transport. FEBS letters. 590 (23), 4147-4158 (2016).
  29. Neupert, W., Herrmann, J. M. Translocation of proteins into mitochondria. Annual Review of Biochemistry. 76, 723-749 (2007).
  30. Meineke, B., et al. The outer membrane form of the mitochondrial protein Mcr1 follows a TOM-independent membrane insertion pathway. FEBS Letters. 582 (6), 855-860 (2008).

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Cite This Article
Gomes, F., Turano, H., Ramos, A., Netto, L. E. S. Assessment of Submitochondrial Protein Localization in Budding Yeast Saccharomyces cerevisiae. J. Vis. Exp. (173), e62853, doi:10.3791/62853 (2021).

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