Ondanks recente vooruitgang blijven veel mitochondriale gisteiwitten nog steeds met hun functies volledig onbekend. Dit protocol biedt een eenvoudige en betrouwbare methode om de submitchondriale lokalisatie van eiwitten te bepalen, wat fundamenteel is geweest voor de opheldering van hun moleculaire functies.
Ondanks recente vooruitgang in de karakterisering van gist mitochondriaal proteoom, blijft de submitochondrial lokalisatie van een aanzienlijk aantal eiwitten ongrijpbaar. Hier beschrijven we een robuuste en effectieve methode voor het bepalen van de suborganellaire lokalisatie van gist mitochondriale eiwitten, die wordt beschouwd als een fundamentele stap tijdens mitochondriale eiwitfunctie-opheldering. Deze methode omvat een eerste stap die bestaat uit het verkrijgen van zeer zuivere intacte mitochondriën. Deze mitochondriale preparaten worden vervolgens onderworpen aan een subfractionatieprotocol bestaande uit hypotone shock (zwelling) en incubatie met proteïnase K (protease). Tijdens zwelling wordt het buitenste mitochondriale membraan selectief verstoord, waardoor het proteïnase K eiwitten van het intermembraanruimtecompartiment kan verteren. Tegelijkertijd, om informatie te verkrijgen over de topologie van membraaneiwitten, worden de mitochondriale preparaten in eerste instantie gesoniseerd en vervolgens onderworpen aan alkalische extractie met natriumcarbonaat. Ten slotte worden na centrifugeren de pellet- en supernatantfracties van deze verschillende behandelingen geanalyseerd door SDS-PAGE en western blot. De submitchondriale lokalisatie en de membraantopologie van het eiwit van belang wordt verkregen door het western blot-profiel te vergelijken met bekende standaarden.
Mitochondriën zijn essentiële organellen van eukaryote cellen die een cruciale rol spelen in bio-energetica, cellulair metabolisme en signaalroutes1. Om deze taken goed uit te voeren, vertrouwen mitochondriën op een unieke set eiwitten en lipiden die verantwoordelijk zijn voor hun structuur en functie. De ontluikende gist Saccharomyces cerevisiae is veel gebruikt als modelsysteem voor onderzoek naar mitochondriale processen, evenals voor andere organellen2. Het mitochondriale genoom codeert voor slechts acht eiwitten in gist; de overgrote meerderheid van mitochondriale eiwitten (~99%) wordt gecodeerd door nucleaire genen, die worden vertaald op cytosolische ribosomen, en vervolgens geïmporteerd in hun juiste submitochondriale compartimenten door geavanceerde eiwitimportmachines3,4,5. Mitochondriale biogenese hangt dus af van de gecoördineerde expressie van zowel het nucleaire als het mitochondriale genoom6,7. Genetische mutaties die defecten in mitochondriale biogenese veroorzaken, zijn geassocieerd met ziekten bij de mens8,9,10.
In de afgelopen twee decennia resulteerden proteomische studies met hoge doorvoer gericht op sterk gezuiverde mitochondriën in een uitgebreide karakterisering van gist mitochondriaal proteoom, dat naar schatting bestaat uit ten minste 900 eiwitten11,12,13,14. Hoewel deze studies waardevolle informatie opleverden, is de suborganellaire lokalisatie van elk eiwit in de vier mitochondriale subsecties, namelijk het buitenmembraan (OM), de intermembraanruimte (IMS), het binnenmembraan (IM) en de matrix, nog steeds vereist. Deze vraag werd gedeeltelijk beantwoord met proteomische studies van de twee kleinere mitochondriale subcompartementen (OM en IMS)15,16. Meer recent hebben Vögtle en medewerkers een grote stap voorwaarts gezet door een hoogwaardige wereldwijde kaart van de distributie van submitochondriale eiwitten in gist te genereren. Met behulp van een geïntegreerde aanpak die SILAC-gebaseerde kwantitatieve massaspectrometrie, verschillende submitchondriële fractioneringsprotocollen en de dataset van de OM- en IMS-proteomen combineert, hebben de auteurs 818 eiwitten toegewezen aan de vier mitochondriale subcompartmenten13.
Ondanks de vooruitgang die deze high-throughput proteomische studies hebben geboekt, is onze kennis over de samenstelling van het submitochondriale proteoom verre van compleet. Inderdaad, van de 986 eiwitten die door Vögtle en medewerkers werden gerapporteerd als gelokaliseerd in gist mitochondriën, konden er 168 niet worden toegewezen in een van de vier submitchondriële compartimenten13. Bovendien gaven de auteurs geen informatie over de membraantopologie van eiwitten waarvan werd voorspeld dat ze perifeer aan de periferie van mitochondriale membranen waren bevestigd. Het is bijvoorbeeld niet mogelijk om te weten of een eiwit dat is toegewezen als perifeer bevestigd aan het binnenmembraan zich naar de matrix of de intermembraanruimte bevindt. Afgezien van deze ontbrekende gegevens uit de proteoombrede studies, is er tegenstrijdige informatie over de suborganellaire lokalisatie van een aanzienlijk aantal mitochondriale eiwitten. Een voorbeeld is het protease Prd1, dat is toegewezen als een intermembraan ruimte-eiwit in de gemeenschappelijke databases zoals Saccharomyces Genome Database (SGD) en Uniprot. Verrassend genoeg toonden Vögtle en medewerkers met behulp van een subfractionatieprotocol vergelijkbaar met het hier beschreven protocol duidelijk aan dat Prd1 een echt matrixeiwit13 is. Zoals hierboven vermeld, moet de submitchondrial lokalisatie van veel mitochondriale eiwitten worden opgehelderd of opnieuw geëvalueerd. Hier bieden we een eenvoudig en betrouwbaar protocol om de suborganellaire lokalisatie van gist mitochondriale eiwitten te bepalen. Dit protocol is ontwikkeld en geoptimaliseerd door verschillende onderzoeksgroepen en is routinematig gebruikt om de submitchondrial lokalisatie te bepalen, evenals de membraantopologie van veel mitochondriale eiwitten.
Het hier gepresenteerde protocol is met succes gebruikt en continu geoptimaliseerd voor een lange tijd om de eiwitlokalisatie in de submitochondrial compartimenten13,14,18,21,22,23 te bepalen. De betrouwbaarheid en reproduceerbaarheid van dit protocol zijn sterk afhankelijk van de zuiverheid en integriteit van mitochondriale …
The authors have nothing to disclose.
We danken Dr. A. Tzagoloff (Columbia University) voor het leveren van antilichamen tegen submitochondrial marker eiwitten Cyt. b2, αKGD en Sco1. We bedanken ook Dr. Mario Henrique de Barros (Universidade de São Paulo) voor de nuttige discussie en opmerkingen tijdens de oprichting van dit protocol.
Dit werk werd ondersteund door onderzoekssubsidies van Fundação de Amparo à Pesquisa do Estado de São Paulo (FAPESP) (subsidie 2013/07937-8).
Fernando Gomes en Helena Turano worden ook ondersteund door FAPESP, subsidies 2017/09443-3 en 2017/23839-7, respectievelijk. Angélica Ramos wordt ook ondersteund door Coordenação de Aperfeiçoamento de Pessoal de Nível Superior (CAPES).
Bacto Peptone | BD | 211677 | |
Bacto Yeast extract | BD | 212750 | |
Beckman Ultra-Clear Centrifuge Tubes, 14 x 89 mm | Beckman Coulter | 344059 | |
Bovine serum albumin (BSA fatty acid free) | Sigma-Aldrich | A7030 | Component of Homogenization buffer |
DL-Dithiothreitol | Sigma-Aldrich | 43815 | Component of DDT buffer |
D-Sorbitol | Sigma-Aldrich | S1876 | |
Ethylenediaminetetraacetic acid (EDTA) | Sigma-Aldrich | E9884 | |
Galactose | Sigma-Aldrich | G0625 | |
Glucose | Sigma-Aldrich | G7021 | |
MOPS | Sigma-Aldrich | M1254 | |
Phenylmethylsulfonyl fluoride (PMSF) | Sigma-Aldrich | P7626 | Used to inactivate proteinase K |
Potassium phosphate dibasic | Sigma-Aldrich | P3786 | |
Potassium phosphate monobasic | Sigma-Aldrich | P0662 | |
Proteinase K | Sigma-Aldrich | ||
Sucrose | Sigma-Aldrich | S8501 | |
Trichloroacetic acid (TCA) | Sigma-Aldrich | T6399 | |
Trizma Base | Sigma-Aldrich | T1503 | |
Zymolyase-20T from Arthrobacter luteus | MP Biomedicals, Irvine, CA | 320921 | Used to lyse living yeast cell walls to produce spheroplast |