このプロトコルは、積極的に収縮している心臓の柱状の筋柱からサルコメア、カルシウム、および巨視的幾何学的データの集合 を提示する。これらの同時測定は3つのイメージのモダリティの統合によって可能にされる。
心筋において、細胞内Ca2+ 過渡は収縮筋線維を活性化し、収縮、巨視的な短縮、幾何学的変形を引き起こす。これらの事象間の内部関係に関する我々の理解は、筋肉の内部を「見る」ことも、興奮収縮ダイナミクスの時空間的性質を正確に追跡することもできないため、限られている。これらの問題を解決するために、イメージングモダリティのスイートを組み合わせたデバイスを構築しました。具体的には、サルコメアの長さと組織株の局所的変化を測定するための明視野顕微鏡、Ca2+ 過渡性を視覚化する蛍光顕微鏡、および心臓周期の時間経過を通じて組織の幾何学的変化を捉える光学コヘレンストモグラフを統合する。ここでは、イメージングインフラストラクチャと関連するデータ収集フレームワークを紹介します。データは、トラベキュラカルネとして知られている孤立した棒様組織構造から収集されます。私たちの器械では、位置制御されたプラチナフックのペアは、それが継続的に栄養豊富な生理食塩水で過重化しながら、 元生体筋 サンプルの両端を保持します。フックは独立した制御下にあり、筋肉の長さと力のリアルタイム制御が可能です。縦方向の翻訳により、サンプルの部分走査が可能になり、顕微鏡イメージングウィンドウの相対サイズ(540 μm x 540 μm)と典型的な柱管の長さ(>2000 μm)に関連する制限を克服できます。筋肉室の両端にある白金電極は、ユーザー定義の速度でトラベキュラを刺激する。刺激信号を各イメージングウィンドウからデータを同期させるトリガーとして利用し、定常状態の下でサンプル全体のけいれんを再構築します。これらの明視野画像データに画像処理技術を適用することで、組織変位およびサルコメア長さの地図が提供されます。このようなデータの収集は、実験モデリングパイプラインに組み込まれると、筋肉の収縮性均質性と生理学および病理生理学における不均一性のより深い理解を提供する。
分離された心筋組織製剤の重ね合いは、心臓イオン活性化および力学1を研究するための標準および広く使用されるプロトコルである。特に、心室壁からの柱状構造の単離により、収縮2の長さ依存的活性化、収縮3、4、および心組織の伸縮性5の伸縮性応答を含む現象の評価が可能となった。テル・ケールスは、孤立した線維柱を重ね合わせたこの技術のイニシエータであり、最初はサルコメア長を決定するためのCa2+測定とレーザー回折のための蛍光イメージングの組み合わせを使用した。これらの初期の研究以来、明視野顕微鏡画像上の2D高速フーリエ変換(FFT)ベースの技術6を用いて、より大きな空間解像度でサルコメアの長さの情報を抽出することがますます一般的になっています。2つの画像システムはCa2+放出とサルコメアの長さに依存する力の生産の間の基礎的な関係の部分的な評価を可能にする。
心臓の筋肉は、厚くて厚いフィラメントからなる収縮ユニットの基礎となる一連の基になる一連の関連付けられた可視バンディングで、線条化される。サルコメアを構成するこれらの構成フィラメントの相互作用は、次のように開始する力の生成の根底にある:脱分極電気信号、または作用電位は、細胞膜の電圧依存性L型Ca2+チャネルを開く原因となる。Ca2+の続く細胞流入は、Ca2+誘導Ca2+放出7として知られているプロセスで、細胞内Ca2+ストアであるサルコプラスミクスレチクル(SR)からのCa2+の放出を誘導する。ナノモルからマイクロモル範囲への細胞内Ca2+濃度のこの急激な増加は、力生産が発生することを可能にする;Ca2+ポンプは、細胞質ゾルからCa2+をSRおよび細胞外コンパートメントに連続的に押し出します。細胞内Ca2+濃度がナノモル範囲に戻ると、力の産生が停止し、筋肉が弛緩する。力の生産の間に、構成厚く、薄いフィラメントは互いの上に滑る。サルコメアの長さは、重なり合いの相対的な程度を決定し、したがって、筋肉の力産生の可能性をマクロコスティックに決定する。
本論文では、これらの蛍光・明視野イメージング技術を拡張し、光コヘレンス断層撮影(OCT)を含む。OCTは、干渉の物理的原理を利用し、筋肉収縮不均一性8を理解するために組織の幾何学的変形を獲得することができる。当社のデバイス(図1)は、スペクトルドメインOCT(SD-OCT)システムを使用しています。SD-OCTでは、ビームスプリッタは、広帯域短いコヘレンス長超発光ダイオードからの光をリファレンスアームと測定アームに分割します。リファレンスアームには固定ミラーが含まれ、測定アームには2D-ガルバノメーターが含まれ、光を操縦します。サンプルから後方散乱した光が収集され、参照アームの反射光に干渉して干渉パターンを形成します。深度情報は、スペクトル縞の周波数でエンコードされます。情報を抽出するために、信号は分光計を通り、逆FFTが結果に適用されます。対応する1D信号は、屈折率9(A-スキャン)の変化に対応する異なる深度の構造を表す。レーザーを単軸に操舵させることにより、目的のサンプルの断面(B-スキャン)を構築することができ、同様に、残りの軸にステップワイズパターンで工程を繰り返すことで、3次元画像を生成することができる(C-スキャン)。延長すると、外部トリガに基づいて時間変動の被験者を繰り返し行う一連のBスキャンを収集し、3次元スキャンを繰り返して生成し、時間変動平面画像10を表すことができる。
3つのイメージングシステムを統合する際には、次の2つの原理を検討しました。第一に、イメージングセンサは代替画像モダリティからの光を検出せず、第2に、物理設計には少なくとも3つの同時イメージングプレーンのための空き領域が含まれるべきです。最初の要件に対応するために、明視野顕微鏡は660 nmの波長LEDを使用して、逆の構成でサンプルを照らします。蛍光顕微鏡は、放出された光の励起および収集の両方に同じ対物レンズが使用される、励起構成である。励起光は340nm~380nmの波長を有し、光増倍管(PMT)は510nmの波長で放出された光を測定する。二色性ミラーのペアは、これら2つの光路が反対の測定を妨げることなく同じ物理的フットプリントを共有することを可能にする(図2)。最後に、OCT は、他の 2 つのモダリティとは異なる、中心波長 840 nm の広帯域 (100 nm スペクトル幅) ライトを使用します。OCT に使用される光の低コメレンスの性質上、明視野蛍光源からの散乱光は深度情報をコードする干渉パターンに寄与しません。第二の要件のために、キャピラリーチューブのハウジング設計は、サンプルの前部、劣った、および優れた平面へのアクセス可能な光学経路を有する。実験中、2つのプラチナフックは、酸素化されたクレブス・ヘンセレイト(KH)溶液を透過させた毛細管内に柱管を保持します。OCTのガルバノメータヘッドは、第3直交光学平面を利用する明視野蛍光イメージング経路に直交方向に向けられた(図3)。
この論文では、カルシウム、サルコメアの長さ、筋肉の形状を同時にイメージングできるデバイスを構築するための設計上の考慮事項について説明します。これらの測定能力を実証するために、心室性線維柱を単離するプロセス、必要な緩衝液の調製、 およびエクスビボ トラベキュラの取り扱いと蛍光負荷に関与する重要なステップについて述べています。最後に、データセットをより有用な視覚化に変換するために必要なプロセスの概要を説明します。
本研究では、明視野、蛍光、OCTイメージングを組み合わせた3つの光学系を組み立てて、積極的に収縮するex vivo心臓柱管路筋道からデータを収集できる構成を提示する(図1および図2)。このような調整された統合は、測定チャンバ(図3)の設計により、明視野蛍光軸にOCTの直交配置を可能にするため可能である。筋肉取り付けシステムは、心筋励起収縮ダイナミクスを特徴付ける上で主要指数の同時定量化の成功に同様に重要な役割を果たす。その新しさは、筋肉の機械的性能に明らかな妨害を伴う筋肉スキャン手順を可能にすることに存在する(図6)。このシステムは、力測定用のイメージング構成と電動フックシステムを組み合わせることで、Ca2+過渡性、変位、サルコメアの長さの地域異質性を、収縮する柱管の巨視的幾何学的情報と共に、ツイッチの時間経過を通じて評価することができます(図7および図8)。
心臓研究所内の明視野-蛍光イメージングシステムの普遍性を考えると、これらの結果の再現は、いくつかのマイナーなハードウェアの考慮事項で達成することができます。ここでは、基礎となる収縮性異種性の解析に不可欠な、明視野発蛍光とOCTを組み合わせるための画像処理ツールキットを紹介する。OCTの統合には遮るもののない光路が必要ですが、ゲート付きイメージングには刺激とOCTと明視野イメージングカメラの両方の間の外部トリガラインと、測定チャンバー全体でサンプルを移動できるマッスルマウントフックが必要です。必要な後処理ソフトウェアと方法は自由に利用できます。特に、使用されるセグメンテーションソフトウェアWEKA14はオープンソースである。材料点8、サルコメア長さ、ゲート容積画像10、およびメッシュ生成コードのマーカーレス追跡の技術も同様にアクセス可能であり、対応する著者からの要求に応じて利用可能にすることができる。
筋生存率、Fura-2の最適な荷重、画像フォーカスは、実験の基礎となる3本の柱です。BDMを含む解剖溶液を用いて拘縮を防ぎ、注射器中の筋肉の輸送、溶液の継続的な酸素化、および実験の日に新しい実験溶液を調製し、すべてが高い筋肉生存率に寄与する。Fura-2AMでトラベキュラをロードする前に、自家蛍光を収集する必要があり、測定されたCa2+ 過渡過渡15に大きな影響を与えることができるので、1つは、研究に興味を持っている。フラ-2AMローディング溶液の酸素化は、色素の負荷を助けるために界面活性剤pluronic-F127の必要な包含によって複雑である。この界面活性剤によって引き起こされる過剰な気泡の形成に対抗するために、ローディング溶液中の抗泡剤の小さな低下は、ユーザが酸素化速度を増加させ、それによって、線維柱が負荷プロセス全体で機能的な生存率を維持する可能性を改善する。最後に、明視野情報と蛍光情報のノイズ比に対する信号を最大にするために、画像化焦点は筋肉の長さに沿って均一でなければならない。
ここで説明する方法には、2 つの制限事項があります。1つ目は、蛍光顕微鏡の空間分解能です。OCTと明視野イメージングの空間分解能は高いが、蛍光顕微鏡の分解能は、540 μm x 540 μmのイメージングウィンドウ内で撮影された体積からの蛍光の積分に限定される。PMTの代わりに高利電結合デバイスカメラを用いて蛍光顕微鏡の空間分解能を高める範囲があり、信号対雑音比16を犠牲にして蛍光信号を捕捉する。第二は、測定可能なサルコメアの長さと幾何学的深さの点で研究することができる柱の直径です。サルコメアの長さを計算するためのウィンドウ付きFFTアプローチは、空間分解能の向上の利点を利用しますが、ロバストネスの低下に関連しています(図8D)。濁ったまたは大口径の線維が研究される場合、より大きい組織サンプルの肉体バンドに関連するコントラストが減少するため、FFTの解決性は大きく低下する。同様に、OCT 内では、300 μm を超えるイメージング深度からのバック反射は、セグメント化段階で解決するには弱すぎる。したがって、我々の技術は、直径300μm未満のトラベキュラに限定されています。しかし、刺激率が高い17の間に筋核の拡散性酸素化に問題がある可能性があるので、大径サンプルを研究することはお勧めできません。
健康筋や病気筋の筋肉幾何学に関連したイオン性機械的機能の評価が可能となり、心筋生理学、病態生理学、薬理学を理解するための強力なアプローチを提供します。ここで概説する画像処理パイプラインは、収縮性の不均一性に対する深い理解を得るための極めて重要なデータを抽出します。このような豊富なデータセットの可能性を十分に認識する1つの手段は、これらのデータを統合して解釈する数学的モデルの構築と、私たちのデバイスを使用して実験的にテストできる予測をすることです。
The authors have nothing to disclose.
この研究は、オークランド大学(JDおよびMCに授与)、サー・チャールズ・ハーカス健康研究フェローシップ(20/011および21/116)ニュージーランド保健研究評議会(J-CHからKTに授与)の博士奨学金によって資金提供されました。 それぞれ)、国立心臓財団(AAに授与)、ニュージーランド王立協会からのマースデン・ファスト・スタート交付金(UOA1504およびUOA1703)によって授与された博士課程の奨学金(J-CHおよびKTに授与される) それぞれ)、ニュージーランド王立協会(ATに授与)のジェームズ・クック研究フェローシップを授与。この楽器の元の開発は、ニュージーランド王立協会(ATとPNに授与)からのマースデン助成金(11-UOA-199)によって資金提供されました。
2,3-Butanedione monoxime | Acros Organics | 150375000 | |
20× microscope lens | Nikon | CFI Super Fluor 20× | NA 0.75 |
2D Galvanometer | Thorlabs | GVSM002/M | |
50-50 beam splitter | Thorlabs | FC850-40-50-APC | |
90-10 beam-splitter | Thorlabs | TW850R2A2 | |
Analogue input module | National Instruments | NI-9205 | Records the PMT signal at 200 kHz |
Brightfield imaging light source | CoolLED | PE-2 | 660 nm LAM |
Broadband light source | Superlum | Broadlighter-840 | |
CaCl2 | Sigma-Aldrich | C4901 | |
Cameralink card | National Instruments | NI-1429 | Brightfield imaging frame grabber |
Carbogen 5 | BOC | Gas code: 181 | |
Condensor lens | Nikon | LWD 0.52 | |
D(+)-Glucose | Merck | 108337 | |
DAQ | National Instruments | NI-6259 | Triggers the galvanometer movement |
Dichroic mirror 1 | Semrock | FF409-Di03 | |
Dichroic mirror 2 | Semrock | FF552-Di02 | |
Diffraction grating | Wasatch Photonics | 1200 lines/mm @840 nm | |
Dimethyl sulfoxide | Sigma-Aldrich | 276855 | |
Direct-Q 3 UV System | Merck Millipore | ZRQSVR3WW | Distilled water machine |
Dry bath | Corning | 6875-SB | LSE digital dry bath |
FIJI | ImageJ | Open-source image processing software | |
Fura-2AM pentapotassium salt | Thermofisher | F14186 | |
Hardware FPGA card | National Instruments | NI-7813R | Also controls the triggering of the brightfield capture |
Heparin | Pfizer | 61024 | |
HEPES | PanReac AppliChem | A1069 | |
Inverted microscope | Nikon | TI-DH illumination pillar | |
Isofluorane | MedSource | VAPDRUGISO250 | |
KCl | Sigma-Aldrich | P9541 | |
KH2PO4 | Sigma-Aldrich | P5655 | |
Line-scan camera | Basler | spL2048-70km | Spectrometer camera |
Magnetic stirrer | IKA | 3810000 | RCT basic |
Matlab | Mathworks | Data processing code | |
MgCl2 | Sigma-Aldrich | M8266 | |
MgSO4.7H2O | Sigma-Aldrich | M1880 | |
NaCl | Sigma-Aldrich | 71376 | |
NaH2PO4.2H2O | Sigma-Aldrich | 71505 | |
NaHCO3 | Sigma-Aldrich | S6014 | |
OCT FPGA card | National Instruments | NI-1483R | |
Oxygen tank | BOC | Gas code: 100D | |
pH meter | Mettler Toledo | MP220 | |
Photomultiplier tube | Hamamatsu | H7422-20 | |
Powerload | Thermofisher | P10020 | |
Superluminescent diode | Broadlighter | D-840 | |
Transimpedance amplifier | Custom | ||
Tris(hydroxymethyl)amino-methane | Sigma-Aldrich | 252859 | |
Wistar rat | Vernon Jansen Unit | 8 – 10 weeks | |
Xenon arc lamp | Sutter Instrument | DG-4 | Lambda DG-4 |