Aquí, describimos un protocolo detallado para aislar el extracto nuclear activo de la etapa larvaria 4 de C. elegans y visualizar la actividad de transcripción en un sistema in vitro .
Caenorhabditis elegans ha sido un importante sistema modelo para la investigación biológica desde que se introdujo en 1963. Sin embargo, C. elegans no se ha utilizado completamente en el estudio bioquímico de reacciones biológicas utilizando sus extractos nucleares, como la transcripción in vitro y la replicación del ADN. Un obstáculo significativo para el uso de C. elegans en estudios bioquímicos es interrumpir la gruesa cutícula externa del nematodo sin sacrificar la actividad del extracto nuclear. Si bien se utilizan varios métodos para romper la cutícula, como la homogeneización o la sonicación de Dounce, a menudo conducen a la inestabilidad de las proteínas. No existen protocolos establecidos para aislar proteínas nucleares activas de larvas o adultos de C. elegans para reacciones in vitro . Aquí, el protocolo describe en detalle la homogeneización de la etapa larvaria 4 C. elegans utilizando un homogeneizador Balch. El homogeneizador Balch utiliza presión para forzar lentamente a los animales a través de un estrecho espacio que rompe la cutícula en el proceso. El diseño uniforme y el mecanizado preciso del homogeneizador Balch permiten una molienda constante de animales entre experimentos. El fraccionamiento del homogeneizado obtenido del homogeneizador Balch produce un extracto nuclear funcionalmente activo que se puede utilizar en un método in vitro para evaluar la actividad de transcripción de C. elegans.
El pequeño nematodo de vida libre Caenorhabditis elegans es un organismo modelo simple pero poderoso para abordar una amplia gama de preguntas biológicas. Desde su introducción en 1963, los nematodos han sido invaluables para responder preguntas en neurobiología, metabolismo, envejecimiento, desarrollo, inmunidad y genética1. Algunas de las muchas características del animal que lo convierten en un organismo modelo ideal incluyen el corto tiempo de generación, la efectividad de la interferencia de ARN, el cuerpo transparente y los mapas completos tanto de su linaje celular como de su sistema nervioso.
Si bien las contribuciones del nematodo a la ciencia son vastas, se han subutilizado para dilucidar el sistema de transcripción eucariota, y la mayor parte de nuestra comprensión sobre estos mecanismos proviene de estudios que utilizan extracto nuclear de levadura, mosca de la fruta y cultivo de células de mamíferos2. El mayor obstáculo que disuade a los investigadores de extraer extracto nuclear funcional es la dura cutícula externa del nematodo. Este exoesqueleto comprende colágenos, cuticlinas, glicoproteínas y lípidos reticulados, lo que hace que C. elegans desde la etapa larvaria hasta la edad adulta sea resistente a la extracción de proteínas a través de fuerzas químicas o mecánicas3. Una vez se desarrolló un sistema de transcripción in vitro que utiliza extracto nuclear de C. elegans, pero no se adoptó ampliamente debido al alcance limitado del sistema, y el uso del homogeneizador Dounce para preparar el extracto podría conducir a la inestabilidad de la proteína4,5.
A diferencia del protocolo anterior para el aislamiento de extractos nucleares que utilizaba un homogeneizador Dounce para romper C. elegans, este protocolo utiliza un homogeneizador Balch. El homogeneizador Balch consta de dos componentes principales: una bola de carburo de tungsteno y un bloque de acero inoxidable con un canal perforado de un extremo a otro. El homogeneizador Balch se carga con la bola de carburo de tungsteno y se tapa a cada lado para sellar la cámara de molienda. Las jeringas se pueden cargar en los dos puertos verticales que conducen a la cámara de molienda. A medida que el material pasa de una jeringa a la otra a través de la cámara de molienda, la presión de las jeringas fuerza el material a través de un espacio estrecho entre la bola y la pared de la cámara. Esta presión lenta y constante rompe el material hasta que alcanza un tamaño consistente que es capaz de pasar a través del espacio estrecho fácilmente. Forzar a C. elegans a través de la estrecha brecha a través de una presión constante pero suave rompe la apertura de los animales, liberando su contenido en el amortiguador circundante. Cambiar el tamaño de las bolas aprieta aún más la brecha, rompiendo las células recién liberadas y libera los núcleos en el tampón. Múltiples instancias de centrifugación separan los núcleos del resto de los desechos celulares, lo que permite la recolección de un extracto nuclear limpio. El homogeneizador Balch es preferido sobre el homogeneizador Dounce por varias razones: el sistema puede manejar una gran cantidad de animales, lo que permite extraer una gran cantidad de proteínas activas en un solo intento; el mecanizado preciso de las bolas y el bloque de acero permite un rectificado consistente entre múltiples muestras; el bloque de acero pesado actúa como un disipador de calor, extrayendo uniformemente el calor de la cámara de molienda, evitando la desnaturalización.
Después del aislamiento, la actividad transcripcional del extracto nuclear debe verificarse antes de ser utilizada en cualquier experimento bioquímico. Tradicionalmente, la actividad de transcripción se medía utilizando nucleótidos radiomarcados para rastrear y visualizar el ARN recién sintetizado. Sin embargo, el etiquetado radiactivo puede ser oneroso, ya que requiere precaución durante el uso y la eliminación6. Los avances tecnológicos permiten a los investigadores de hoy utilizar métodos mucho menos dañinos o problemáticos para medir incluso pequeñas cantidades de ARN utilizando técnicas como la PCR cuantitativa en tiempo real (qRT-PCR)7. Aquí, el protocolo describe un método para aislar el extracto nuclear activo de la etapa larvaria 4 (L4) C. elegans y visualizar la actividad de transcripción en un sistema in vitro.
C. elegans es un organismo modelo atractivo para estudiar el sistema de transcripción eucariota debido a su bajo costo de mantenimiento y la facilidad de manipulación genética. Aquí se describe un protocolo para el aislamiento consistente del extracto nuclear funcionalmente activo de L4 C. elegans . Aunque este protocolo se centró en visualizar la actividad de transcripción, el ADNc producido post-transcripcionalmente se puede cuantificar mediante RT-qPCR para obtener una medición más precisa de…
The authors have nothing to disclose.
Este trabajo fue apoyado por una subvención NIH MIRA (R35GM124678 a J. S.).
Consumables and reagents | |||
0.2 mL 8-Strip Tubes & Flat Strip Caps, Clear | Genesee Scientific | 24-706 | |
0.2 mL Individual PCR tubes | Genesee Scientific | 24-153G | |
1.7 mL sterile microtubes | Genesee Scientific | 24-282S | |
100% absolute molecular grade ethanol | Fisher Scientific | BP2818 | |
100% ethanol, Koptec | Decon Labs | V1001 | |
10 mL serological pipet | VWR international | 89130-898 | |
150 mm petri plates | Tritech Research | T3325 | |
15 mL conical centrifuge tubes | Genesee Scientific | 28-103 | |
20 mL plastic syringes | Fisher Scientific | 14955460 | |
2 mL Norm-Ject syringes | Henke-Sass Wolf GmbH | 4020 | |
500 mL vacuum filter cup 0.22 µm PES, Stericup Millipore Express Plus | Millipore Sigma | SCGPU10RE | |
50 mL conical centrifuge tubes | ThermoFisher Scientific | 339652 | |
50 mL serological pipet | VWR international | 89130-902 | |
5 mL serological pipet | VWR international | 89130-896 | |
Agar, Criterion | VWR International | C7432 | |
Agarose | Denville Scientific | CA3510-6 | |
Alcohol proof marker | VWR International | 52877-310 | |
Bacto peptone | VWR International | 90000-264 | |
Caenorhabditis elegans | CGC | N2 | |
Calcium dichloride | Millipore Sigma | C4901 | |
Cholesterol | Millipore Sigma | C8667 | |
Control DNA temple cloning primers, Forward 5’- ctc atg ttt gac agc tta tcg atc cgg gc -3’ | |||
Control DNA temple cloning primers, Forward 5’- aca gga cgg gtg tgg tcg cca tga t -3’ | |||
Deionized water | |||
Dithiothreitol | Invitrogen | 15508-013 | |
DNA gel stain, SYBR safe | Invitrogen | S33102 | |
DNA ladder mix, O’gene ruler | Fisher Scientific | SM1173 | |
DNA Loading Dye, 6x TriTrack | Fisher Scientific | FERR1161 | |
DNase, Baseline-ZERO | Lucigen | DB0715K | |
Dry ice | |||
Escherichia coli OP50 strain | CGC | OP50 | |
Glacial acetic acid | Fisher Scientific | A38 | |
Glycerol | Millipore Sigma | G6279 | |
HeLa nuclear extract in vitro transcription system, HeLaScribe | Promega | E3110 | |
Hepes Solution, 1 M Gibco | Millipore Sigma | 15630080 | |
Hydrochloric acid 37% | Millipore Sigma | P0662 | |
Hypochlorite bleach | Clorox | ||
LB Broth | Millipore Sigma | L3022 | |
Magnesium dichloride | Millipore Sigma | M8266 | |
Magnesium Sulfate | Millipore Sigma | M7506 | |
Medium weigh dishes | Fisher Scientific | 02-202-101 | |
microscope slides, Vista vision | VWR International | 16004-368 | |
molecular grade water, Hypure | Hyclone Laboratories | SH30538 | |
Nystatin | Millipore Sigma | N1638 | |
PCR system, FailSafe with premix A | Lucigen | FS99100 | |
Potassium chloride | Millipore Sigma | P39111 | |
Potassium phosphate dibasic | Millipore Sigma | P3786 | |
Potassium phosphate monobasic | Millipore Sigma | P0662 | |
Protease inhibitor, Halt single use cocktail 100x | ThermoFisher Scientific | 78430 | |
protein assay kit, Qubit | ThermoFisher Scientific | Q33211 | |
reverse transcription kit, Sensiscript | Qiagen | 205211 | |
RNA extraction kit RNeasy micro kit | Qiagen | 74004 | |
RNase Inhibitor | Applied Biosystems | N8080119 | |
Sodium Chloride | VWR International | BDH9286-12KG | |
Sodium hydroxide | Millipore Sigma | 1-09137 | |
Sterile syringe filter with 0.2 µm Polyethersulfone membrane | VWR international | 28145-501 | |
Sucrose | VWR International | 200-334-9 | |
transcription primers, Forward 5’- gcc ggg cct ctt gcg gga tat -3’ | |||
transcription primers, Reverse 5’- cgg cca aag cgg tcg gac agt-3’ | |||
Tris-Base | Fisher Scientific | BP152 | |
Tween20 | Millipore Sigma | P2287 | |
Equipment | |||
-20 °C incubator | ThermoFisher Scientific | ||
20 °C incubator | ThermoFisher Scientific | ||
37 °C incubator | Forma Scientific | ||
4 °C refrigerator | ThermoFisher Scientific | ||
-80 °C freezer | Eppendorf | ||
Autoclave | Sanyo | ||
Balch homogenizer, isobiotec cell homogenizer | Isobiotec | ||
Benchtop Vortexer | Fisher Scientific | 2215365 | |
Centrifuge, Eppendorf 5418 R | Eppendorf | 5401000013 | |
Centrifuge, VWR Clinical 50 | VWR International | 82013-800 | |
Dissection microscope, Leica M80 | Leica Microsystems | ||
Fluorometer, Qubit 2.0 | Invitrogen | Q32866 | |
Gel imaging system, iBright FL1500 | ThermoFisher Scientific | A44241 | |
Gel system | ThermoFisher Scientific | ||
Heat block | VWR International | 12621-048 | |
Microcentrifuges, Eppendorf 5424 | Eppendorf | 22620401 | |
PIPETBOY acu 2 | Integra | 155017 | |
Pipette L-1000 XLS+, Pipet-Lite LTS | Rainin | 17014382 | |
Pipette L-10 XLS+, Pipet-Lite LTS | Rainin | 17014388 | |
Pipette L-200 XLS+, Pipet-Lite LTS | Rainin | 17014391 | |
Pipette L-20 XLS+, Pipet-Lite LTS | Rainin | 17014392 | |
Rocking platform | VWR International | ||
Thermocycler, Eppendorf Mastercycler Pro | Eppendorf | 950030010 |