31 31 ЯМР является мощным инструментом для структурного выяснения полифенолов. Эта быстрая, простая, точная, количественная и высоко воспроизводимая аналитическая процедура, которая позволяет количественно оценивать и дифференцировать различные типы гидрокси,фенольных и карбоксильных групп в лигнинах и танинах, теперь стала обычным аналитическим инструментом.
Разработка устойчивых продуктов биоперерабатывающей продукции сталкивается, в частности, с проблемой валоризации лигнина и танина. Эти обильные, возобновляемые ароматические биополимеры не получили широкого применения из-за присущей им структурной сложности и высокой степени изменчивости и видового разнообразия. Отсутствие определенной первичной структуры для этих полифенолов дополнительно усугубляется сложными химическими изменениями, вызванными во время обработки, в конечном итоге придав большое разнообразие структурных особенностей, имеющих чрезвычайное значение для любых дальнейших усилий по использованию.
Следовательно, протокол для быстрой, простой и однозначной идентификации и количественной оценки различных функциональных групп, присутствующих в природных полифенолах, является фундаментальной предпосылкой для понимания и, соответственно, адаптации их реакционной способности и возможной полезности.
Количественный ЯМР 31дает возможность быстро и надежно идентифицировать незамещенные, о-монозамещенные и o-дисзамещенные фенолы, алифатические ОТн и часть карбоновой кислоты в лигнинах и танинах с широким потенциалом применения.
Методология состоит из процедуры количественной маркировки лигнина или танина in situ с использованием подходящего зонда, содержащего 31P, с последующим получением количественного спектра ЯМР 31P в присутствии внутреннего стандарта. Высокая естественная плотность ядра 31P позволяет использовать небольшое количество образца (~ 30 мг) и короткое время получения ЯМР (~ 30-120 мин) с хорошо разрешенными сигналами 31P, которые сильно зависят от окружающей химической среды меченых групп OH.
Эта процедура, которая была недавно опубликована в Nature Protocols1, была процитирована более 3000 раз в архивной литературе и стала обычным измерением характеристики лигнина и танина, поскольку она обеспечивает важную, быструю и воспроизводимую структурную информацию.
Лигнин и дубильные вещества
Когда Зеленая химия была введена Полом Т. Анастасом и Джоном К. Вернером2,3,она резко изменила общую концепцию химии. В частности, важность использования устойчивых материалов вместо ископаемого сырья, такого как нефть и уголь, в качестве отправной точки подчеркивается в качестве важнейшего аспекта2,3. Среди различных типов биомассы лигнин является наиболее распространенным ароматическим биополимером и может рассматриваться как потенциальный источник промышленных товаров и продуктов с высокой добавленной стоимостью4.
Лигнин является вторым наиболее распространенным древесным компонентом (причем целлюлоза является первой, а гемицеллюлоза третьей). Его содержание в растениях варьируется в зависимости от типа растения: например, лиственные породы характеризуются меньшим количеством лигнина по сравнению с хвойными породами (20% ± 4% против 28% ± 4%). Кроме того, распределение лигнина в растительной ткани не однородно: более высокое содержание лигнина можно найти в клеточнойстенке5,6. Лигнин представляет собой полифенолический материал, полученный промышленным способом в качестве побочного продукта бумажной/целлюлозной промышленности7. Его извлекают из процесса древесной массы, в котором древесная щепа в основном перерабатывается в присутствии ионных условий OH– и/или OH– + HS– для отделения целлюлозы от гемицеллюлозы и лигнина (процессы соды и / или крафта)8,9.
Первые попытки изучения лигнина были предприняты Пайеном и Шульце, соответственно, в 1838 и 1865годах 10. В 1977 году Адлер обобщил все соответствующие имеющиеся знания тоговремени 11. В настоящее время признано, что строительными блоками лигнина являются три фенилпропаноидные единицы: п-кумариловый, хвойный и синапиловый спирты. Эти мономеры, благодаря процессу свободнорадикальной полимеризации, дают начало р-гидроксифенильным, гваяциловым и синапиловым единицам, которые в конечном итоге широко составляют лигнин(рисунок 1)12. Отсутствие первичной структуры в лигнинах подразумевает присущую ему трудность для его структурной характеристики. Соответственно, оценка распределения молекулярной массы всегда была несколько спорной. Измельченный древесный лигнин, лигнин, выделенный в мягких условиях, которые в основном приближаются к протолигнину10,состоит из олигомеров13, которые сильно взаимодействуют через процессы супрамолекулярной агрегации14,15.
Рисунок 1:Репрезентативная модель лигнина хвойных пород, в которой выделены различные типы связей. Пожалуйста, нажмите здесь, чтобы просмотреть увеличенную версию этого рисунка.
Лигнины обычно классифицируются в зависимости от: а) типа древесины, из которой они получены (например, лиственная и хвойная древесина), b) процесса, используемого для ее выделения. Наиболее важными промышленными типами лигнина являются крафт, лигносульфонаты и органосольв.
Структура лигнина сильно зависит от его происхождения и химии обработки. Более конкретно, когда довольно сложная и нерегулярная структура лигнина усугубляется его природным разнообразием и сложными химическими данными обработки, появляется материал чрезвычайной изменчивости, разнообразия и неоднородности, ограничивающий его использование низкоценными приложениями16. В то время как лигнины древесины хвойных пород содержат главным образом гуаяциловые единицы (G) с незначительными количествами p-гидроксифенильных групп (G-лигнин), лиственные лигнины состоят из гуаяциловых и синингильных субъединиц (GS лигнин) в различных соотношениях, а травяные лигнины состоят из субъединиц гуаяцила, сирингила и p-гидроксифенила (GSH лигнин). Экстрактивный подход, используемый для выделения, резко влияет на структуру возникающего лигнина17. На рисунке 2 показаны три структуры лигнина, отличающиеся используемым подходом к изоляции. Можно было бы выделить некоторые соображения, касающиеся воздействия метода экстракции. Во-первых, крафт-лигнин представляет собой салкилированный, сильно фрагментированный и конденсированный лигнин, в то время как лигнин Organosolv имеет структуру, похожую на измельченный древесный лигнин (выделенный с использованием подхода Бьоркмана)18,19,20. Наконец, лигносульфонаты характеризуются высокой степенью сульфирования в зависимости от интенсивности и условий процесса экстрактивного сульфирования.
Рисунок 2:Репрезентативные структуры для технических лигнинов. На этом рисунке можно увидеть различия между различными типами лигнина. (A)Крафт-лигнин хвойной древесины сильно конденсирован,(B)лигносульфонаты характеризуются сульфонными группами на насыщенных углеродах, а(C)органосольв-лигнин имеет структуру, аналогичную структуре измельченного древесного лигнина. Пожалуйста, нажмите здесь, чтобы просмотреть увеличенную версию этого рисунка.
Подобно лигнинам, танины представляют собой полифенольные соединения, которые содержатся в растениях. Недавний и обновленный обзор экстрактивных подходов и применений танинов был недавно выпущен Das et al.21. Значение дубильных веществ в повседневной жизни можно выделить на двух примерах: они придают вкус и цвет винам22; кроме того, их полифенольная структура обеспечивает антиоксидантные характеристики и делает их идеальными для применения в кожевенной промышленности23. Танины делятся на два класса: гидролизуемые и негидролизуемые. Гидролизуемые танины можно считать полимером сложных эфиров галльской, дигаллической и эллаговой кислот(рис. 3). Эти сложные эфиры являются результатом этерификации фенольных кислот молекулами сахара (например, глюкозы, ромнозы и арабинозы).
Рисунок 3:Типичные гидролизуемые танины: дубильной кислоты, вескальгина. Пожалуйста, нажмите здесь, чтобы просмотреть увеличенную версию этого рисунка.
Негидролизуемые танины, также известные как конденсированные танины, представляют собой полимеры и олигомеры, полученные из флаван-3-ол. Среди флаван-3-олов наиболее частыми являются катехины и галлокатехин. Они представляют собой бесцветные кристаллические соединения(рисунок 4). Полимеризация создает полимер, характеризующийся геликоидальной структурой. Ароматические гидроксигруппы направлены на внешнюю сторону спирали, в то время как пирановые кислороды находятся внутри.
Рисунок 4:Структуры проантоцианидина: R = H, OH, OCH3. Пожалуйста, нажмите здесь, чтобы просмотреть увеличенную версию этого рисунка.
Характеристика лигнинов и дубильных веществ с помощью ЯМР
При характеристике лигнина или танина решающее значение имеют два типа информации: (а) химическая структура (например, содержание гидроксигруппы, характер и частота взаимосвязей между собой) и (б) молекулярная масса и полидисперсность. Начиная с ранних исследований лигнина, для достижения этих целей использовались различные методы, и появились два класса методов: химические и физические методы.
В химии лигнина химические методы, такие как щелочное окисление нитробензола, дериватизация с последующим восстановительным расщеплением, окисление перманганата и тиоацидолиз, исторически широко использовались24,25,26,27,28,29. Однако, даже если аналитические протоколы были внедрены и оптимизированы, они требуют много времени, трудоемки и требуют обширных экспериментальных навыков30. Альтернативно, с самого начала инструментального анализа физические методы использовались для выполнения характеристик лигнина и танина31. Эти методики позволяют преодолеть проблемы классических методов, облегчая характеристику структуры лигнина.
Ядерный магнитный резонанс (ЯМР) позволяет получить информацию о структуре и химическом составе лигнина среди инструментальных методов. В частности, данные количественных моноразмерных спектров ЯМР 1Ч и количественных ЯМР-спектров 13С могут дать информацию о различных типах лигниновых межъединых связей32,33,34,35. К сожалению, моноразмерные спектры страдают от перекрытия сигналов, что может серьезно подорвать усилия по интеграции сигналов. Количественные версии HSQC (гетероядерная одиночная квантовая когерентность), Q-HSQC (количественная – гетероядерная одиночная квантовая когерентность) были использованы для лучшего понимания структуры лигнина, предоставляя полезную информацию о внутренних связях. Тем не менее, они не могут быть полностью использованы для количественного определения различных зданийблоков 13,36,37.
Для преодоления проблем, связанных с моно- и двумерным ЯМР, рассмотрена дериватизация субстрата. Одним из преимуществ этого подхода является то, что специфические метки могут быть введены в сложную макромолекулу и не возникает спектральной интерференции от растворителя, в котором растворяются меченыеподложки1. Verkade был пионером в этой области, выполнив 31P ЯМР-анализ производных фосфора, производных угля и родственных соединений38. В его публикации был проведен скрининг различных фосфорсодержащих реагентов (фосфоланов), и зафиксирован химический сдвиг других меченых соединений. Команда Аргиропулоса впервые представила дериватизацию для количественного и качественного анализа гидроксигрупп в лигнине в 1991году. После изучения дериватизации модельных соединений лигнина с использованием фосфорсодержащих реагентов, его группа проложила путь для одного из наиболее ежедневно используемых методов в химии лигнина, 31P ЯМР-анализа39,40,41,42,43. Среди различных исследованных фосфоланов Аргиропулос пришел к использованию 2-хлор-4,4,5,5-тетраметил-1,3-2-диоксафосфолана (TMDP) как наиболее подходящего для проведения анализа лигнина44. TMDP избирательно реагирует с гидроксигруппами, вызывая количественное образование фосфорсодержащих производных, характеризующихся специфическими химическими сдвигами ЯМР 31(рис. 5).
Рисунок 5:Химия лигнина и танина фосфитилирования. Маркировка лигнина и танина лабильных групп H осуществляется путем реакции in situ. Меченые полифенолы характеризуются специфическими 31ЯМР-полосами, соответствующими различным типам гидроксигрупп. Пожалуйста, нажмите здесь, чтобы просмотреть увеличенную версию этого рисунка.
Дериватизацию проб проводят в смеси пиридин/хлороформ (1,6:1); этот выбор является результатом точной оценки. Пиридин имеет два преимущества. Во-первых, выбор растворителя, характеризующегося параметром Хильдебранда около 22,1МПа 1/2, упрощает и усиливает солюбилизацию лигнина45. Следовательно, добавление пиридина в качестве растворителя, параметр Хильдебранда которого равен 21,7, таким образом, является оптимальным. Во-вторых, реакция TMDP с гидроксигруппами сопровождается образованием соляной кислоты (HCl) в качестве побольного продукта с сопутствующими негативными последствиями для легкого образования лигнин-фосфолановых производных. По этой причине полученный HCl необходимо нейтрализовать. При наличии значительного избытка основность пиридина по отношению к TMDP позволяет нейтрализовать HCl (путем образования гидрохлорида пиридина).
Использование рекомендуемой системы бинарных растворителей пиридин/дейтерированный хлороформ основано на трех причинах. Во-первых, это способствует растворению образца. Во-вторых, поскольку пиридина гидрохлорид растворим в хлороформе, он может предотвратить осаждение и ухудшение конечного спектра. В-третьих, дейтерированный хлороформ выбирается за его уникальный синглетный сигнал, позволяющий блокировать ЯМР-спектрометр в процессе сбора. Дериватизация образца проводится при наличии внутреннего стандарта. Таким образом, когда образец и стандарт дериватизированы, сравнение интегралов пиков образца и стандарта позволяет количественно оценить количество для каждого типа присутствующей гидроксигруппы. Различные соединения рассматривались в качестве внутренних стандартов. Эти соединения характеризуются одной гидроксигруппой на молекулу, предлагая один резкий сигнал в спектре ЯМР 31после дериватизации. Выбор стандарта должен быть сделан тщательно. Его сигнал не должен перекрываться с сигналами дериватизированного образца. Холестерин широко использовался в первые дни. Однако частичное перекрытие сигналами, возникающими из алифатической гидроксигруппы, ограничивает его использование. Для рутинного анализа предпочтительны внутренние стандартные растворы N-гидрокси-5-норборнен-2,3-дикарбоксимида (NHND). Однако из-за нестабильности NHND его стандартные решения могут храниться только в течение несколькихдней 46.
Описанный способ представляет собой реализацию и оптимизацию аналитического протокола, направленного на качественную и количественную характеристику лигнинов, разработанного Argyropoulos37,38,39,40,41,42. По сравнению со многими другими методами, доступными для структурного выяснения лигнина, этот метод был широко принят как один из самых быстрых, быстрых и воспроизводимых. Обоснованность влажных химических методов (например, нитробензола, окисления перманганата и т. д.) зависит от хороших экспериментальных навыков оператора, эффективно ограничивая метод ограниченными операторами. Кроме того, нередко в литературе по мокрым химическим методам встречаются поправочный коэффициент, чтобы учесть несколько недостатков. Описанный протокол ЯМР 31не требует продвинутых экспериментальных навыков, что делает его легко применимым, удобным для пользователя и широко доступным. По сравнению с другими инструментальными аналитическими методами, ЯМР 31является единственным методом, способным точно обнаруживать и количественно оценивать различные гидроксигруппы в лигнинах. Например, FTIR может быть использован для идентификации различных гидроксигрупп, таких как ЯМР 1H. Оба метода, однако, страдают, поскольку они не могут предложить надежные количественные данные из-за обширных проблем перекрытия сигналов. Другим широко используемым методом является спектроскопия UV-Vis, впервые сообщенная Гольдшмидом. Подход, однако, ограничен общим определением гидроксигрупп, поскольку он не может эффективно дифференцироваться между алифатическими, ароматическими и карбокилическими OHs47.
С экономической точки зрения единственным ограничением метода ЯМР 31является цена TMDP, который является относительно дорогим реагентом. Стоит около 190 usd за грамм; следовательно, если стоимость анализа будет приближена только к цене TMDP, исключая затраты, полученные из смеси пиридина/хлороформа, и стоимость времени оператора, то она составит около 24 долл. Для решения этого вопроса многие лаборатории прибегают к синтезу TMDP, тем самым снижая затраты на реагенты. Для этого пинаколь и трихлорид фосфора реагируют в присутствии триэтиламина44. Технически эта реакция относительно проста; однако требуется осторожность при использовании трихлорида фосфора и его доработке, включая хорошо контролируемую вакуумную дистилляцию. Более подробная информация о синтезе TMDP может быть предоставлена по запросу.
Несмотря на то, что этот протокол является одним из лучших с точки зрения простоты, воспроизводимости и точности, необходимо выделить некоторые критические моменты. Во-первых, образец должен быть полностью растворим в идентифицированной смеси пиридин/хлороформ. Это соображение является фундаментальным, поскольку количественная реакция фосфитилирования гидроксильных групп должна происходить в полностью однородных условиях. Если солюбилизируется только часть образца, полученный анализ будет неточным. Во-вторых, исследуемый образец должен быть без влаги и растворителей, поскольку эти переменные будут пагубно влиять на точность и общий успех анализа. Следы влажности будут реагировать с TMDP, давая 2-гидрокси-4,4′-5,5′-тетраметил-1,3,2-диоксафосфолан. Это соединение представляет собой бледно-желтую флокуляющую соль, нерастворимую в смеси растворителей пиридина и хлороформа, вызывая недостаточное получение сигнала ЯМР. Поскольку требуется только небольшой вес (~ 30 мг) образца, он должен быть свободен от летучих веществ, чтобы его точный вес был точно известен до анализа.
Иногда проблемы сольватации образцов могут быть повышены (особенно для сильно окисленные образцы) путем добавления небольших количеств совыщетеля (т.е. диметилформамида), способствующего растворению образца. В принципе, каждый растворитель, который не взаимодействует с TMDP, может быть использован для растворения образца. Выбор сорастворителя не может включать сорастворители, содержащие лабильную гидрокси или аминогруппы, поскольку они вступают в реакцию с реагентом, вызывая вводящие в заблуждение конечные спектры. Примечательно, что диметилсульфоксид также реагирует с TMDP, что исключает его использование в качестве совреждателя. Ионные жидкости на основе пиридина, такие как 1-аллил-3-бутилпиридиний хлорид, могут использоваться при возникновении проблем с растворимостью; однако ионная жидкость должна быть снова сухой48. Для растворения лигносульфонатов (тип лигнина, характеризующийся высокой степенью сульфирования) было показано, что предварительная обработка, включающая превращение нейтрализованных групп в их кислую форму, является полезной. Лигносульфонаты могут быть удобно преобразованы в их кислые условия с использованием кислотно-обменных смол в водных средах. Полученные лигносульфоновые кислоты выделяют из раствора путем их адсорбции на специфических смолах (например, XAD-7) и десорбции в этаноле. Выпаривание этанольных растворов при пониженном давлении при 40 °C позволяет изолирует лигносульфонные кислоты. Эти лигнины могут быть охарактеризованы 31ЯМР, поскольку они растворимы в смеси пиридин/хлороформ, предложенной протоколом.
Длительная вакуумная сушка при умеренных температурах эффективно снижает количество влаги и других летучих веществ в каждом образце. Примечательно, что небольшие количества воды не влияют на конечный спектр, потому что TMDP добавляется в избытке. Кроме того, в некоторых случаях небольшое количество 2-гидрокси-4,4′-5,5′-тетраметил-1,3,2-диоксафосфолана может быть результатом влажности, присутствующей в пробирке ЯМР или флаконе образца. В этих случаях достаточно перемешивания, чтобы полностью растворить количество образовавого осадка. Если образуется большое количество 2-гидрокси-4,4′-5,5′-тетраметил-1,3,2-диоксафосфолана, предлагается повторить пробоподготовку, улучшая обработку сушки. Например, перед использованием вся стеклянная посуда может быть ненадолго нагрета с помощью тепловой пушки.
Спектральный диапазон, используемый для записи спектра, широк по сравнению с областью, интересуемой для сигнала в отношении различных гидроксильных групп. Однако это необходимо для понимания того, успешно ли произошла дериватизация образца. Подтверждение полной дериватизации образца дает наличие сильного сигнала около 174 ppm. Этот резкий пик обусловлен нереактированным TMDP, и его существование гарантирует, что реагент присутствовал в избытке, и, следовательно, все гидроксильные группы были дериватизированы. Если этот пик отсутствует, двумя наиболее вероятными причинами являются: (1) количество используемого TMDP недостаточно для выполнения полной дериватизации образца или (2) в образце присутствует большое количество воды. В первом случае использование более высокого количества TMDP, скорее всего, обеспечит полную дериватизацию образца, и появится сигнал при 174 ppm. Во втором случае образец следует высушить более широко. Как только избыток TMDP обеспечен, можно выполнить пиковую интеграцию. Перед этой операцией увеличьте масштаб до более узкого окна (от 150 до 132 ppm), которое ограничивает интересующих сигналы.
Количество образца (~ 30 мг), которое должно быть проанализировано, сообщается в приведенном выше экспериментальном протоколе, было выбрано для сбора спектров хорошего качества для ЯМР-спектрометра 300 МГц или более. Тем не менее, мы заметили, что можно уменьшить количество образца, если использовать полевой магнит 500 МГц или выше. Например, на рисунке 8Dпоказан спектр ЯМР (полученный из прибора 700 МГц) образца, приготовленного с 7,2 мг лигнина. Интеграция сигналов этого спектра дает те же результаты, что и при использовании более высоких количеств лигнина. Этот факт усиливает применимость этого протокола для всех исследований, в которых доступны небольшие количества продуктов.
В целом, этот экспериментальный протокол может быть применен ко многим исследованиям и разработкам, когда требуется понимание происхождения и судьбы различных гидроксигрупп, присутствующих в лигнинах и танинах. В частности, в сочетании с данными GPC и HSQC полученные данные предоставляют возможность для дальнейшего развития и спекуляции над структурой лигнина или танина. Во многих случаях, когда химические модификации применяются к гидроксигруппам лигнина или танина, количественные анализы ЯМР 31могут быть чрезвычайно ценными для определения того, произошли ли эти модификации и в какой степени. Например, на рисунке 9 показаны два ЯМР-спектра одного и того же лигнина до и после его окисления. Простая качественная оценка показывает восстановление как алифатических, так и ароматических гидроксигрупп при окислении, что обеспечивает ценную информацию и рекомендации.
Рисунок 9:Количественные 31ЯМР спектры того же Лигнина Organosolv, дериватизированного с использованием TMDP (A)до и(B)после его окисления. Спектры регистрировались с помощью 300 ЯМР-спектрометра. Пожалуйста, нажмите здесь, чтобы просмотреть увеличенную версию этого рисунка.
В заключение, этот метод имеет все атрибуты быть одним из самых важных и мощных инструментов, когда запросы, касающиеся полифенольных, ОН-несущих лигнинов и дубильных веществ (и даже синтетических полимеров)49,50,51, должны быть сделаны в различных областях, начиная от химии до инженерии, от биологии до полимеров и фармацевтических применений.
The authors have nothing to disclose.
Эта работа на протяжении многих лет поддерживалась различными финансовыми наградами, в которые входили такие организации, как Научно-исследовательский институт целлюлозы и бумаги Канады, Университет Макгилла в Монреале, Совет по естественным наукам и инженерным исследованиям Канады, Национальный научный фонд США, Министерство сельского хозяйства Соединенных Штатов и компания Solvay.
100 – 1000 µl Eppendorf micropipette | VWR | 613-0866 | |
20 – 200 µl Eppendorf micropipette | VWR | 613-0865 | |
2-chloro-4,4,5,5-tetramethyl-1,3-2-dioxaphospholane, 95% | Sigma-Aldrich | 447536 | |
Analytical balance (sensibility ± 0.1 mg) | Precisa | LX220 A | |
Binder Vacuum Oven | Binder | VD53 | |
Certified Vial Kit, Low Adsorption (LA), 2 mL, pk of 100 | Sigma-Aldrich | 29651-U | |
Chloroform-d | Sigma-Aldrich | 151823 | |
Cholesterol, Sigma-grade | Sigma-Aldrich | C8667 | |
Molecular sieves, 4A | Sigma-Aldrich | 208604 | |
N-hydroxy-5-norbornene-2,3-dicarboximide, 97% | Sigma-Aldrich | 226378 | |
NMR spectrometer, 300 MHz | Bruker | ||
Norell natural quartz 3 mm NMR tubes | Sigma-Aldrich | NORS33007 | |
Pipette tips, 100-1000 µL UltraFine (blue) | VWR | 613-0342 | |
Pipette tips, 20-200 µL Bevel Point (yellow) | VWR | 613-0239 | |
Pyridine, anhydrous, 99.8% | Sigma-Aldrich | 270970 | |
Stirring bars,micro, 3 mm lenght | VWR | 442-0360 | |
Stirring bars,micro, 6 mm lenght | VWR | 442-0362 | |
Triphenylphospine oxide, 97% | Sigma-Aldrich | T84603 | |
Vials for environmental analysis, WHEATON, 20.00 mL | DWK Life Sciences | WHEAW224609 | |
Weighing paper, grade 531 | VWR | 516-0318P |