Summary

Modelos 2D y 3D basados en células madre pluripotentes inducidas por humanos para diseccionar la participación del cilio primario durante el desarrollo neocortical

Published: March 25, 2022
doi:

Summary

Presentamos protocolos detallados para la generación y caracterización de modelos de desarrollo neocortical basados en células madre pluripotentes inducidas humanas (hIPSC) 2D y 3D, así como metodologías complementarias que permiten el análisis cualitativo y cuantitativo de la biogénesis y función del cilio primario (PC).

Abstract

Los cilios primarios (PC) son orgánulos dinámicos no móviles basados en microtúbulos que sobresalen de la superficie de la mayoría de las células de mamíferos. Emergen del centriolo más antiguo durante la fase G1/G0 del ciclo celular, mientras que se desmontan a medida que las células vuelven a entrar en el ciclo celular en el límite de la fase G2/M. Funcionan como centros de señales, detectando y transduciendo señales extracelulares cruciales para muchos procesos celulares. Al igual que en la mayoría de los tipos de células, se ha demostrado que todas las células madre y progenitoras neurales neocorticales (NSPC) albergan una PC que les permite detectar y transducir señales específicas requeridas para el desarrollo cortical cerebral normal. Aquí, proporcionamos protocolos detallados para generar y caracterizar modelos bidimensionales (2D) y tridimensionales (3D) basados en células a partir de células madre pluripotentes inducidas por humanos (hIPSC) para diseccionar aún más la participación de la PC durante el desarrollo neocortical. En particular, presentamos protocolos para estudiar la biogénesis y la función de la PC en NSPC derivados de rosetas neuronales 2D, incluida la transducción de la vía Sonic Hedgehog (SHH). Para aprovechar la organización tridimensional (3D) de los organoides cerebrales, describimos un método simple para la obtención de imágenes 3D de organoides cerebrales in toto inmunoteñidos. Después de la limpieza óptica, la rápida adquisición de organoides completos permite la detección de centrosomas y PC en progenitores neocorticales y neuronas de todo el organoide. Finalmente, detallamos el procedimiento para la inmunotinción y limpieza de gruesas secciones organoides que flotan libremente, preservando un grado significativo de información espacial 3D y permitiendo la adquisición de alta resolución requerida para el análisis cualitativo y cuantitativo detallado de la biogénesis y la función de la PC.

Introduction

Los cilios primarios (PC) son orgánulos basados en microtúbulos que detectan y transducen una gran cantidad de señales químicas y mecánicas del entorno extracelular. En particular, la PC es el orgánulo central para la transducción de la vía de señalización del erizo en vertebrados1,2. Si bien se ha demostrado durante mucho tiempo que la mayoría de las células neuronales albergan una PC, la contribución de este orgánulo en la configuración del sistema nervioso central ha sido subestimada durante mucho tiempo. Los estudios sobre el desarrollo neocortical han llevado al descubrimiento de múltiples células madre y progenitoras neurales (NSPC), todas albergando una PC, cuya ubicación se ha propuesto que es crucial para la determinación del destino de los progenitores3,4,5,6,7. La PC ha demostrado ser crucial para los mecanismos celulares que se requieren para el desarrollo cortical cerebral normal, incluida la expansión y el compromiso de NSPC8,9,10,11,12, así como la polaridad apicobasal del andamio glial radial que apoya la migración neuronal13. Además, se requieren PC durante la migración tangencial de las interneuronas a la placa cortical14,15. Finalmente, se ha propuesto un papel para el PC en el establecimiento de conexiones sinápticas de neuronas en la corteza cerebral16,17. En conjunto, estos hallazgos abogan por un papel crucial de la PC en los principales pasos del desarrollo cortical cerebral18,19 y plantean la necesidad de investigar su participación en los mecanismos patológicos subyacentes a las anomalías del desarrollo cortical cerebral.

Estudios recientes han mejorado en gran medida nuestra comprensión de las importantes diferencias celulares y moleculares entre el desarrollo cortical en modelos humanos y animales, enfatizando la necesidad de desarrollar sistemas modelo humanos. Desde este punto de vista, las células madre pluripotentes inducidas por humanos (hIPSC) representan un enfoque prometedor para estudiar la patogénesis de la enfermedad en un contexto genético y celular relevante. Los modelos adherentes bidimensionales (2D) basados en células o rosetas neuronales contienen NSPC similares a los observados en la corteza cerebral en desarrollo, que se organizan en estructuras en forma de roseta que muestran una polaridad apicobasal correcta20,21,22. Además, el sistema de cultivo tridimensional (3D) permite la generación de organoides del cerebro anterior dorsal que recapitulan muchas características del desarrollo cortical cerebral humano23,24,25,26. Esos dos enfoques complementarios de modelado basado en células ofrecen perspectivas emocionantes para diseccionar la participación de la PC durante el desarrollo normal y patológico de la corteza cerebral.

Aquí, proporcionamos protocolos detallados para la generación y caracterización de rosetas neurales y NSPC derivados, así como organoides del cerebro anterior dorsal. También proporcionamos protocolos detallados para analizar la biogénesis y la función de la PC presente en los NSPC mediante la prueba de la transducción de la vía Sonic Hedgehog y el análisis de la dinámica de moléculas cruciales involucradas en esta vía. Para aprovechar la organización 3D de los organoides cerebrales, también establecimos un método simple y rentable para la obtención de imágenes 3D de organoides cerebrales in toto inmunoteñidos que permiten una rápida adquisición, gracias a un microscopio de lámina de luz, de todo el organoide, con alta resolución que permite visualizar PC en todo tipo de progenitores neocorticales y neuronas de todo el organoide. Finalmente, adaptamos la inmunohistoquímica en secciones de flotación libre de 150 μm con posterior limpieza y adquisición utilizando microscopio confocal de barrido resonante que permite la adquisición de imágenes de alta resolución, que se requiere para el análisis detallado de la biogénesis y la función de la PC. Específicamente, el software de imágenes 3D permite la reconstrucción 3D de PC con el análisis posterior de parámetros morfológicos que incluyen longitud, número y orientación de PC, así como la medición de la intensidad de la señal de los componentes ciliares a lo largo del axonema.

Protocol

1. Generación de modelos 2D basados en células hIPS de desarrollo neocortical Formación de rosetas neurales Comience con cultivos hIPSC que albergan grandes colonias regulares, que exhiben menos del 10% de diferenciación y no más del 80% de confluencia. Enjuague las hIPSC con 2 ml de PBS. Añadir 2 mL de medio de inducción NSPC suplementado con el inhibidor de Rock (NIM + 10 μM de Y-27632). Diseccionar manualmente cada colonia h…

Representative Results

Modelos 2D basados en células hIPS para estudiar la biogénesis y la función del cilio primarioEl protocolo aquí detallado ha sido adaptado de estudios publicados anteriormente20,21,22. Este protocolo permite la generación de estructuras de rosetas neurales que contienen progenitores neocorticales y neuronas similares a las observadas en el neocórtex en desarrollo. La validación detallada se puede real…

Discussion

En la actualidad, los PC se consideran orgánulos clave que regulan pasos cruciales durante el desarrollo cortical cerebral normal18,19,31 incluyendo la expansión y el compromiso de NSPC8,9,10,11,12, así como la migración neuronal13,14<…

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Este trabajo fue apoyado por subvenciones de la Agence Nationale de la Recherche (ANR) a S.T. (ANR-17-CE16-0003-01) y N.B.B. (ANR-16-CE16-0011 y ANR-19-CE16-0002-01). LB cuenta con el apoyo de la ANR en el marco del programa Investissements d’avenir (ANR-10-IAHU-01) y la Fondation Bettencourt Schueller (programa MD-PhD). El Imagine Institute cuenta con el apoyo de fondos estatales de la ANR en el marco del programa Investissements d’avenir (ANR-10-IAHU-01, proyectos CrossLab) y como parte del segundo programa Investissements d’Avenir (ANR-17-RHUS-0002).

Materials

2-Mercaptoéthanol (50 mM) ThermoFisher Scientific 31350010
6-well Clear Flat Bottom Ultra-Low Attachment Multiple Well Plates Corning 3471
96-well Clear Round Bottom Ultra-Low Attachment Microplate Corning 7007
B-27 Supplement (50X), minus vitamin A ThermoFisher Scientific 12587010
B-27 Supplement (50X), serum free ThermoFisher Scientific 17504044
CellAdhere Dilution Buffer StemCell Technologies 7183
DMEM/F-12, Glutamax ThermoFisher Scientific 31331028
DMSO ATCC 4-X
Dorsomorphin StemCell Technologies 72102
Easy Grip 35 10mm Falcon 353001
EDTA ThermoFisher Scientific 15575020
EGF , 25µg Thermofischer PHG0315
FGF2 , 25µg Thermofischer PHG0264
Gentle Cell Dissociation Reagent StemCell Technologies 7174
Insulin ThermoFisher Scientific 12585014
KnockOut Serum ThermoFisher Scientific 10828028
Laminin (1mg) Thermofischer 23017015
LDN193189 StemCell Technologies 72147
Matrigel Growth Factor Reduced Corning 354230
MEM Non-Essential Amino Acids Solution (100X) ThermoFisher Scientific 11140050
Mowiol 4-88 Sigma Aldrich 81381-250G
mTeSR1 StemCell Technologies 85850
Neural Basal Medium Thermofischer 21103049
Orbital shaker Dutscher 995002
PBS ThermoFisher Scientific 14190094
Penicillin-Streptomycin (10,000 U/mL) ThermoFisher Scientific 15140122
PFA 32% Electron Microscopy Sciences 15714
Poly-L-Ornithine (PO) Sigma P4957
Recombinant human BDNF 10 µg Stem Cell Technologies 78005
Recombinant Human FGF-basic Peprotech 100-18B
rSHH R&D Systems 8908-SH
SAG Santa Cruz Sc-202814
SB431542 StemCell Technologies 72232
Stembeads FGF2 StemCulture SB500
Sucrose Sigma Aldrich S7903-250G
Superfrost Plus Adhesion Slides Thermo Scientific J1800AMNZ
Supplément N2- (100X) ThermoFisher Scientific 17502048
TDE 2,2’-Thiodiethanol Sigma Aldrich 166782-500G
Vitronectin StemCell Technologies 7180
Y-27632 StemCell Technologies 72304
Primary Antibodies
ARL13B Abcam Ab136648 1/200e
ARL13B Proteintech 17711-1-AP 1/500e
CTIP2 Abcam Ab18465 1/500e
GLI2 R&D Systems AF3526 1/100
GPR161 Proteintech 13398-1-AP 1/100
N-Cadherin BD Transduction Lab 610921 1/500e
P-Vimentin MBL D076-3 1/500e
PAX6 Biolegend PRB-278P 1/200e
PCNT Abcam Ab4448 1/1000e
S0X2 R&D Systems MAB2018 1/200e
SATB2 Abcam Ab51502 1/200e
TBR2 Abcam Ab216870 1/400e
TPX2 NovusBio NB500-179 1/500e
γTUBULIN Sigma Aldrich T6557 1/500e
Secondary Antibodies
Donkey anti-rabbit AF488 ThermoFisher Scientific A21206 1/500e
Goat anti-mouse AF555 ThermoFisher Scientific A21422 1/500e
Goat anti-mouse AF647 ThermoFisher Scientific A21236 1/500e
Goat anti-rat AF555 ThermoFisher Scientific A21434 1/500e

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Boutaud, L., Michael, M., Banal, C., Calderon, D., Farcy, S., Pernelle, J., Goudin, N., Maillard, C., Dimartino, C., Deleschaux, C., Dupichaud, S., Lebreton, C., Saunier, S., Attié-Bitach, T., Bahi-Buisson, N., Lefort, N., Thomas, S. 2D and 3D Human Induced Pluripotent Stem Cell-Based Models to Dissect Primary Cilium Involvement during Neocortical Development. J. Vis. Exp. (181), e62667, doi:10.3791/62667 (2022).

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