Summary

Implantation directe de canules dans la Cisterna Magna des porcs

Published: June 09, 2021
doi:

Summary

Cet article présente un protocole étape par étape pour l’implantation directe de canules dans la cisterna magna des porcs.

Abstract

Le système glymphatique est un système d’élimination des déchets dans le cerveau qui repose sur l’écoulement du liquide céphalo-rachidien (LCR) dans les espaces périvasculaires liés aux astrocytes et a été impliqué dans la clairance des peptides neurotoxiques tels que l’amyloïde-bêta. L’altération de la fonction glymphatique exacerbe la pathologie de la maladie dans les modèles animaux de maladies neurodégénératives, telles que la maladie d’Alzheimer, ce qui souligne l’importance de comprendre ce système de clairance. Le système glymphatique est souvent étudié par les canules cisterna magna (CMc), où les traceurs sont délivrés directement dans le liquide céphalo-rachidien (LCR). La plupart des études, cependant, ont été réalisées sur des rongeurs. Ici, nous démontrons une adaptation de la technique CMc chez les porcs. En utilisant CMc chez les porcs, le système glymphatique peut être étudié à une résolution optique élevée dans les cerveaux gyrencéphales et, ce faisant, combler le fossé des connaissances entre les rongeurs et les glymphatiques humains.

Introduction

Le liquide céphalo-rachidien (LCR) est un ultrafiltrat de sang qui se trouve à l’intérieur et autour du système nerveux central (SNC)1,2. En plus de donner de la flottabilité au cerveau ou d’absorber les forces mécaniques dommageables, le LCR joue également un rôle central dans l’élimination des déchets métaboliques du SNC3. L’élimination des déchets est facilitée par le système glymphatique récemment caractérisé qui permet le flux convectif du LCR à travers le parenchyme cérébral via des espaces périvasculaires (PVS), qui encerclent les artères pénétrantes3,4,5. Il a été démontré que ce processus dépend de l’aquaporine-4 (AQP4), un canal d’eau exprimé principalement sur les pieds astrologiques, lié au PVS4,6. L’étude du système glymphatique est réalisée par imagerie in vivo et ex vivo, à l’aide de la microscopie optique avancée ou de l’imagerie par résonance magnétique (IRM), à la suite de l’introduction d’un traceur fluorescent / radioactif ou d’un agent de contraste dans le LCR7,8,9,10,11.

Un moyen efficace d’introduire un traceur dans le LCR sans subir de dommages au parenchyme cérébral consiste à utiliser la canulation cisterna magna (CMc)12,13. Une grande majorité de toutes les études glymphatiques, jusqu’à présent, ont été réalisées chez des rongeurs et évitées chez les mammifères supérieurs en raison du caractère invasif du CMc associé à la simplicité pratique du travail avec un petit mammifère. De plus, les crânes minces de souris permettent l’imagerie in vivo sans avoir besoin d’une fenêtre crânienne et permettent par la suite une extraction cérébrale simple11,14. Les expériences menées chez l’homme ont fourni de précieuses données macroscopiques in vivo sur la fonction glymphatique, mais se sont appuyées sur des injections intrathécales de traceurs dans la colonne lombaire distale et, en outre, utilisent l’IRM qui ne donne pas une résolution suffisante pour capturer la microanatomie du système glymphatique7,15,16 . Comprendre l’architecture et l’étendue du système glymphatique chez les mammifères supérieurs est essentiel pour sa traduction chez l’homme. Afin de faciliter la traduction glymphatique chez l’homme, il est important d’appliquer les techniques qui sont effectuées chez les rongeurs aux mammifères supérieurs afin de permettre des comparaisons directes du système glymphatique entre les espèces de complexité croissante de la cognition et du cerveau17. Les cerveaux des porcs et des humains sont gyrencéphales, possédant une neuroarchitecture pliée, tandis que les cerveaux des rongeurs sont lissencéphales, ayant ainsi une différence substantielle entre eux. En termes de taille globale, les cerveaux de porc sont également plus comparables à ceux des humains, étant 10 à 15 fois plus petits que le cerveau humain, tandis que les cerveaux de souris sont 3 000 fois plus petits18. En comprenant mieux le système glymphatique chez les grands mammifères, il pourrait être possible d’utiliser le système glymphatique humain pour une intervention thérapeutique future dans des conditions telles que les accidents vasculaires cérébraux, les lésions cérébrales traumatiques et la neurodégénérescence. Le CMc direct chez les porcs in vivo est une méthode qui permet la microscopie optique à haute résolution du système glymphatique chez un mammifère supérieur. En outre, en raison de la taille des porcs utilisés, il est possible d’appliquer des systèmes de surveillance similaires à ceux utilisés dans les chirurgies humaines, ce qui permet de documenter et de réguler étroitement les fonctions vitales afin d’évaluer comment celles-ci contribuent à la fonction glymphatique.

Protocol

Toutes les procédures ont été effectuées conformément à la directive européenne 2010/63/UE et ont été approuvées par le comité d’éthique de Malmö-Lund sur la recherche animale (Dnr 5.8.18-05527/2019) et menées conformément aux directives CODEX du Conseil suédois de la recherche. 1. Préparation Traceur Préparer le LCR artificiel (126 mM NaCl, 2,5 mM KCl, 1,25 mM NaH2PO4, 2 mM MgCl2, 2 mM CaCl2, 10 mM de glucose, 2…

Representative Results

Une fois que le porc est inconscient, il est palpé et son anatomie de surface est marquée, en commençant par la crête occipitale (OC) et en travaillant vers les vertèbres thoraciques (TV) et chaque base de l’oreille (EB). C’est dans ce sens que sont pratiquées les incisions cutanées (Figure 1A). Les trois couches musculaires, dont le trapèze, le semispinalis capitus biventer et le semispinalis capitus complexus, sont réséquées et maintenues ouvertes par deux ensembles de rétr…

Discussion

Ici, est décrit, un protocole détaillé pour effectuer la canulation directe de la cisterna magna chez les porcs, y compris la préparation nécessaire, la procédure chirurgicale, la perfusion de traceur et l’extraction du cerveau. Cela nécessite une personne ayant de l’expérience et une certification pour travailler avec de gros animaux. S’il est effectué correctement, cela permet la livraison des molécules souhaitées avec caution directement dans le LCR, après quoi une série de différentes modalités a…

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Ce travail a été soutenu par la Fondation Knut et Alice Wallenberg, Hjärnfonden, les Fondations Wenner Gren et la Fondation Crafoord.

Materials

0.01% azide in PBS Sigmaaldrich S2002
18G needle Mediq
1ml Syringe FischerSci 15849152
20G cannula Mediq NA
22G cannula Mediq NA
4% paraformaldehyde Sigmaaldrich P6148
Anatomical forceps NA NA
Bovine serum albumin Alexa-Fluor 647 Conjugate ThermoFischer A34785 2 vials (10mg)
CaCl2 Sigmaaldrich C1016
Chisel ClasOhlson 40-8870
Dental cement Agnthos 7508
compact saw ClasOhlson 40-9517
Glucose Sigmaaldrich G8270
Hammer ClasOhlson 40-7694
Insta-Set CA Accelerator BSI-Inc BSI-151
IV line TAP, 3-WAYS with 10cm extension Bbraun NA
KCl Sigmaaldrich P9333
Marker pen NA NA
MgCl2 Sigmaaldrich M8266
MilliQ water NA NA
NaCL Sigmaaldrich S7653
NaH2PO4 Sigmaaldrich S8282
NaHCO3 Sigmaaldrich S5761
No. 20 scalpel blade Agnthos BB520
No. 21 Scalpel blade Agnthos BB521
No. 4 Scalpel handle Agnthos 10004-13
Saline Mediq NA
Salmon knife Fiskers NA
Self-retaining retractors NA NA
Superglue NA NA
Surgical curved scissors NA NA
Surgical forceps NA NA
Surgical towel clamps NA NA

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Cite This Article
Bèchet, N. B., Shanbhag, N. C., Lundgaard, I. Direct Cannula Implantation in the Cisterna Magna of Pigs. J. Vis. Exp. (172), e62641, doi:10.3791/62641 (2021).

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