Hier presenteren we een protocol waarin afzonderlijke cellen worden gecontroleerd op acute gebeurtenissen en productieve HIV-1-infectie op een nanofluïdisch apparaat. Beeldvormingsgegevens definiëren virus-host receptorinteracties en signaalroutedynamiek. Dit is de eerste methode voor nanofluïdische longitudinale eencellige cultuur en beeldvorming met hoge doorvoer om signaalkinetiek en moleculaire interacties te bestuderen.
HIV-1 veroorzaakt een chronische infectie die wereldwijd meer dan 37 miljoen mensen treft. Mensen met humaan immunodeficiëntievirus (HIV) ervaren comorbiditeit gerelateerd aan chronische ontsteking ondanks antiretrovirale therapie. Deze ontstekingssignalering is echter niet volledig gekarakteriseerd. De rol van vroege ingangsgebeurtenissen bij de activering van cellulaire signaleringsgebeurtenissen en downstream genexpressie is niet vastgelegd op het niveau van één cel. Hier beschrijven de auteurs een methode die principes van live-cell fluorescentiemicroscopie toepast op een geautomatiseerd eencellig platform dat cellen kweekt en afbeelden gedurende door de gebruiker aangepaste tijdcursussen, waardoor een analyse met hoge doorvoer van dynamische cellulaire processen mogelijk is. Deze test kan eencellige levende fluorescentiemicroscopie volgen van vroege gebeurtenissen die onmiddellijk volgen op hiv-1-infectie, met name de instroom van calcium die gepaard gaat met blootstelling aan het virus en de ontwikkeling van productieve infectie met behulp van een fluorescerend reportervirus. MT-4 cellen worden geladen met een calciumgevoelige kleurstof en gekweekt in geïsoleerde pennen op een nanofluïdisch apparaat. De gekweekte cellen zijn geïnfecteerd met een HIV-1 reporter virus (HIV-1 NLCI). Een fluorescentiemicroscoop boven het nanofluïdische apparaat meet de calciuminstroom gedurende een tijdsverloop van 8 minuten na acute hiv-1-blootstelling. Hiv-1 productieve infectie wordt gemeten in diezelfde cellen over een interval van 4 dagen. Beeldvormingsgegevens uit deze tijdscursussen worden geanalyseerd om virus-host receptorinteracties en signaalroutedynamiek te definiëren. De auteurs presenteren een geïntegreerd, schaalbaar alternatief voor traditionele beeldvormingsmethoden met behulp van een nieuw optofluidic-platform dat in staat is om eencellige sortering, cultivering, imaging en softwareautomatisering te gebruiken. Deze test kan de kinetiek van gebeurtenissen onder verschillende omstandigheden meten, waaronder celtype, agonist of antagonisteffect, terwijl een reeks parameters wordt gemeten. Dit is de eerste gevestigde methode voor nanofluïdische longitudinale eencellige cultuur en beeldvorming met hoge doorvoer: deze techniek kan breed worden aangepast om cellulaire signaalkinetiek en dynamische moleculaire interacties te bestuderen.
Chronische ontsteking is een belangrijke oorzaak van hiv-geassocieerde vroege morbiditeiten enmortaliteit 1,2,3. Er zijn meerdere mechanismen waarbij HIV inflammatoire signalering kan activeren, en recent bewijs suggereert een rol voor de P2X-receptoren in hiv-binnenkomst die calcium-gating adenosinetrifosfaat (ATP) receptoren3,4,5,6,7,8,9,10zijn . Het P2X-subtype van purinergische receptoren (P2XR) kan belangrijke facilitators van deze ontsteking zijn. De moleculaire mechanismen van HIV-P2XR interacties zijn echter grotendeels onbekend en kunnen van invloed zijn op vroege en late HIV-1 virale levenscyclusstappen. Het definiëren van de trajecten en kinetiek die hiv-geassocieerde chronische ontstekingen veroorzaken, is van cruciaal belang voor het bevorderen van behandelingsopties voor mensen met hiv.
Om te beoordelen of HIV-1 P2X-receptoren direct pijnigt, moeten P2XR-activering en HIV-1-infectie parallel worden gemeten. Assays van P2XR-activiteit en HIV-1-infectie zijn onafhankelijk vastgesteld: Cellulaire calciuminstroom is een indicator voor P2XR-activering en HIV-1 productieve infectie kan worden gekwantificeerd door RNA-overvloed. Fluorescentiedetectie van calciuminstroom is mogelijk met de Fluo-4 calciumgevoelige kleurstof, en HIV-1-infectie kan worden gevisualiseerd met het mCherry fluorescent reporter virus HIV-NLCI11,12,13,14,15.
Omdat deze indicatoren van P2X-activering (acute cellulaire calciuminstroom) en HIV-1-infectie (HIV-1 RNA-synthese) op verschillende tijdschalen (minuten versus dagen) voorkomen, ontbreekt er een methode met hoge doorvoer die een gepaarde analyse van P2XR-activering en HIV-1-infectie mogelijk maakt. Standaard experimentele technieken met hoge doorvoer, zoals flowcytometrie, maken de populatieanalyse mogelijk, maar kunnen de relatie tussen acute en longitudinale gebeurtenissen in afzonderlijke cellen niet beoordelen. Als alternatief is eencellige beeldvorming met standaard fluorescentiemicroscopie een lage doorvoer. Deze experimentele beperkingen bieden de behoefte aan nieuwe technieken met hoge doorvoer om associaties tussen acute en longitudinale cellulaire gebeurtenissen rechtstreeks te meten.
Een beschreven optofluidic-systeem is een nieuw platform dat in staat is tot eencellige sortering en isolatie, cultivering, beeldvorming en softwareautomatisering16,17,18,19. Dit systeem biedt een geïntegreerd alternatief met hoge doorvoer voor de beperkingen van traditionele beeldvormingsmethoden. Het Beacon-platform bestaat uit een koolstofdioxide (CO2)en temperatuurgecontroleerde incubator die cellen op een chip ondersteunt. De chip beschikt over lichtgevoelige transistors die een elektrische gradiënt genereren als reactie op gericht licht. Deze resulterende dielectroforetische kracht wordt gebruikt om individuele cellen over de nanofluïdische chip naar de gewenste gebieden te verplaatsen. Cellen worden gesorteerd in pennen op de chip, die een barrière vormen om individuele cellen fysiek te isoleren. Continue laminaire stroom van groeimedia door de chip voorkomt celmigratie uit de pennen en zorgt tegelijkertijd voor de verspreiding van kleine deeltjes van voedingsstoffen en experimentspecifieke reagentia. Een fluorescentiemicroscoop zit boven de chip. Softwareautomatisering wordt gebruikt om afbeeldingen van de chip vast te leggen op het door de gebruiker opgegeven tijdstip.
Alle celkarakterisering werd uitgevoerd met behulp van een optofluidic systeem voor eencellige selectie en manipulatie. Dit systeem bestaat uit geïntegreerde mechanische, microfluïdische en optische componenten die manipulatie, assay, cultuur en beeldvorming met één cel mogelijk maken. Cellen worden geladen en gekweekt op het wegwerp nanofluïdische apparaat bestaande uit 3.500 individuele kamers (pennen), elk in staat om subnanolitervolume vast te houden. Cellen kunnen in hokken worden geplaatst met behulp van lichtgeïnduceerde dielectroforetische “kooien” en gekweekt onder temperatuur- en CO2-gecontroleerdeomstandigheden. De microfluïdica maken perfusie van media of buffers op de chip mogelijk voor celkweek of medicamenteuze behandeling. Een bediende naald maakt de import en export van cellen uit geïncubeerde en geblindeerde putplaten mogelijk. Het chipgebied kan worden afgebeeld op 4x of 10x vergroting in brightfield- en fluorescerende kanalen (inclusief DAPI, FITC, TRed of Cy5) om cellulaire fenotypen of functionele analyse te karakteriseren. Het hele systeem is geautomatiseerd met behulp van software die kan worden gebruikt voor vooraf ontworpen workflows of aangepaste experimenten.
Relaties tussen HIV-1-infectie en P2XR zijn bestudeerd, maar een procedure met hoge doorvoer om deze interacties direct parallel te karakteriseren, is niet gemeld. Hier beschrijven de auteurs een methodologie om HIV-P2XR-interacties te bestuderen door acute calciuminstroom en daaropvolgende HIV-1 productieve infectie op ééncellig niveau te volgen. Dit creëert met name een nieuw hulpmiddel dat directe, hoge doorvoer, longitudinale meting van meerdere doelen in afzonderlijke cellen mogelijk maakt.
De beschreven methodologie om de relatie tussen calciuminstroom en HIV-1 productieve infectie in enkele cellen te bestuderen, kan worden aangepast om intracellulaire calciumkinetiek te bestuderen als reactie op andere agonisten of antagonisten van belang. De voorbereiding van cellen voor beeldvorming is eenvoudig, minimaal tijdsintensief en reagentia zijn verkrijgbaar in handige kits van veelgebruikte fabrikanten. Fluo-4-gebaseerde calciummeting is goed beschreven in de literatuur en HIV-1 kan gemakkelijk worden vervange…
The authors have nothing to disclose.
We zijn dankbaar voor de wetenschappelijke gesprekken met Dr. Benjamin Chen. Dit werk werd gefinancierd door K08AI120806 (THS), R01DA052255 (THS en KB) en R21AI152833 (THS en KB).
Beacon Optofluidic System | Berkeley Lights | ||
Fetal Bovine Serum | Gibco | ||
FIJI | Open-source software | PMID: 22743772, 22930834 | |
Fluo-4 Calcium Imaging Kit | Thermo Fisher | F10489 | |
HIV-1 NLCINL4-3 | Laboratory of Benjamin Chen | PMID: 28148796 | |
Hyclone Pennecillin Streptomycin solution | GE Healthcare Life sciences | SV30010 | |
MT-4 cells | NIH AIDS Reagent | ARP-120 | |
OptoSelect 3500 chip | Berkeley Lights | ||
Pipettor Tips | Denville Scientific | P3020-CPS | |
Prism 9.0.0 | GraphPad | ||
RPMI-1640 Medium | Sigma-Aldrich | R8758 | |
Serological Pipettes | Fisher Brand | 13-678-11E | |
Tissue Culture Hood | Various models | ||
T75 flasks | Corning | 3073 |