تعد القدرة على الكشف بدقة عن مكونات التقاطع العصبي العضلي أمرا حاسما في تقييم التعديلات في هندسته المعمارية بسبب العمليات المرضية أو التنموية. هنا نقدم وصفا كاملا لطريقة مباشرة للحصول على صور عالية الجودة من تقاطعات الأعصاب العضلية جبل كامل التي يمكن استخدامها لأداء القياسات الكمية.
التقاطع العصبي العضلي (NMJ) هو نقطة اتصال متخصصة بين العصب الحركي والعضلات الهيكلية. هذا المشبك الطرفية معارض عالية اللدونة مورفولوجية ووظيفية. في العديد من اضطرابات الجهاز العصبي ، NMJ هو هدف مرضي مبكر يؤدي إلى فشل التضمين العصبي والضعف والضمور وحتى في موت ألياف العضلات. ونظرا لأهميتها، فإن إمكانية تقييم جوانب معينة من العلاقة بين مكونات NMJ من الناحية الكمية يمكن أن تساعد على فهم العمليات المرتبطة بتجميعها/تفكيكها. العقبة الأولى عند العمل مع العضلات هو الحصول على الخبرة التقنية لتحديد وتشريح بسرعة دون الإضرار أليافها. ويتمثل التحدي الثاني في استخدام أساليب كشف عالية الجودة للحصول على صور NMJ التي يمكن استخدامها لإجراء تحليل كمي. تقدم هذه المقالة بروتوكول خطوة بخطوة لتشريح العضلات الرقمية الملحقة وعضلات سولوس من الفئران. كما أنه يفسر استخدام immunofluorescence لتصور العناصر قبل وبعد متشابك من NMJs جبل كامل. النتائج التي تم الحصول عليها تثبت أن هذه التقنية يمكن استخدامها لتحديد التشريح المجهري للتشابك وتحديد التغيرات الطفيفة في حالة بعض مكوناته في ظل ظروف فسيولوجية أو مرضية.
تقاطع الثدييات العصبية والعضلية (NMJ) هو المشبك الثلاثي الكوليني كبيرة تتكون من نهاية العصب العصبي الحركي, غشاء postynaptic على ألياف العضلات الهيكل العظمي, ومحطة خلايا شوان1,2,3. هذا المشبك معارض عالية اللدونة المورفولوجية والوظيفية4،5،6،7،8، حتى خلال مرحلة البلوغ عندما NMJs يمكن أن تخضع لتعديلات هيكلية ديناميكية. على سبيل المثال، أظهر بعض الباحثين أن النهايات العصبية الحركية تغير شكلها باستمرار على مقياس ميكرومتر9. كما أفيد أن مورفولوجيا NMJ يستجيب لمتطلبات وظيفية، تغيير الاستخدام، والشيخوخة، وممارسة، أو الاختلافات في النشاط الحركي4،10،11،12،13،14،15. وهكذا، فإن التدريب وعدم الاستخدام يمثلان حافزا أساسيا لتعديل بعض خصائص NMJ، مثل حجمها وطولها وتشتت الحويصلات المتشابكة والمستقبلات، وكذلك محطةالأعصاب المتفرعة14و16و17و18و19و20.
وعلاوة على ذلك، فقد ثبت أن أي تغيير هيكلي أو انحطاط هذا التقاطع الحيوي يمكن أن يؤدي إلى موت الخلايا العصبية الحركية وضمور العضلات21. ويعتقد أيضا أن تغيير الاتصال بين الأعصاب والعضلات يمكن أن تكون مسؤولة عن التغيرات الفسيولوجية NMJ المرتبطة بالعمر وربما لتدميرها في الحالات المرضية. التفكيك تقاطع العصبية والعضلية يلعب دورا حاسما في بداية التصلب الجانبي الضموري (ALS), مرض تنكسي عصبي يشكل واحدا من أفضل الأمثلة على ضعف التفاعل بين العضلات والأعصاب3. على الرغم من العديد من الدراسات التي أجريت على خلل الخلايا العصبية الحركية, لا يزال موضع نقاش ما إذا كان التدهور لوحظ في ALS يحدث بسبب الضرر المباشر في الخلايا العصبية الحركية ومن ثم يمتد إلى توقعات القشرية الشوكي22; أو إذا كان ينبغي أن يعتبر اعتلال الاكسونوتاتي البعيدة حيث يبدأ الانحطاط في النهايات العصبية ويتقدم نحو الخلايا العصبية الحركية سوماس23,24. نظرا لتعقيد أمراض ALS ، فمن المنطقي النظر في حدوث مزيج من العمليات المستقلة. وبما أن NMJ هو اللاعب المركزي للتفاعل الفيزيولوجي بين العضلات والأعصاب ، فإن زعزعة استقراره تمثل نقطة محورية في أصل المرض الذي هو ذات صلة ليتم تحليلها.
يتم تنظيم نظام الثدييات العصبي العضلي وظيفيا في وحدات حركية منفصلة ، تتكون من خلية عصبية محركية وألياف العضلات التي يتم تنشيطها حصريا من خلال محطتها العصبية. كل وحدة المحرك والألياف مع خصائص هيكلية مماثلة أو متطابقةوظيفية 25. الخلايا العصبية الحركية التوظيف الانتقائي يسمح تحسين استجابة العضلات لمطالب وظيفية. الآن من الواضح أن عضلات الهيكل العظمي الثديية تتكون من أربعة أنواع مختلفة من الألياف. يتم تسمية بعض العضلات وفقا لخصائص نوع الألياف الأكثر وفرة. على سبيل المثال، السولوس (عضلة خلفية للطرف الخلفي المشاركة في الحفاظ على وضع الجسم) يحمل غالبية وحدات الارتعاش البطيء (النوع 1) ومعترف به كعضلات بطيئة. بدلا من ذلك، يتكون الطول الرقمي المموه (EDL) بشكل أساسي من وحدات ذات خصائص ارتعاش سريع مماثلة (ألياف من النوع 2) ويعرف باسم عضلة سريعة متخصصة في الحركات التدريجية اللازمة للحركة. وبعبارة أخرى، على الرغم من أن عضلات البالغين هي من البلاستيك في الطبيعة بسبب التأثيرات الهرمونية والعصبية، وتكوين الألياف يحدد القدرة على أداء أنشطة مختلفة، كما رأينا في الوحيد الذي يواجه النشاط المستمر منخفضة الكثافة وEDL الذي يظهر ارتعاش واحد أكثر سرعة. ترتبط الميزات الأخرى التي هي متغيرة بين أنواع مختلفة من ألياف العضلات لهيكلها (محتوى الميتوكوندريا، وتمديد reticulum الساركوبلازمي، سمك خط Z)، محتوى MYOSIN ATPase، وتكوين سلسلة ثقيلة myosin26،27،28،29.
بالنسبة للقوارض NMJs ، هناك اختلافات كبيرة بين العضلات28،29. كشفت التحليلات المورفومترية التي أجريت في سولوس وEDL من الفئران عن وجود علاقة إيجابية بين منطقة متشابك وقطر الألياف (أي أن منطقة متشابك في الألياف البطيئة الوحيدة أكبر مما كانت عليه في ألياف EDL السريعة) ولكن النسبة بين منطقة NMJ وحجم الألياف متشابهة في كلتا العضلتين30و31. أيضا، فيما يتعلق المحطات العصبية، كانت المناطق المطلقة endplate في ألياف النوع 1 أقل مما كانت عليه في ألياف النوع 2، في حين أن تطبيع قطر الألياف جعل مناطق من المحطات العصبية في نوع 1 الألياف أكبر32.
ومع ذلك، تركز دراسات قليلة جدا على التحليل المورفومتري لإظهار الأدلة على التغيرات في بعض مكونات NMJ33،34. وبالتالي ، نظرا لأهمية NMJ في وظيفة الكائن الحي ، الذي يتم تغيير مورفولوجيا وعلم وظائف الأعضاء في أمراض مختلفة ، من المهم تحسين بروتوكولات التشريح لأنواع مختلفة من العضلات بجودة كافية للسماح بتصور هيكل NMJ بأكمله. ومن الضروري أيضا لتقييم حدوث تغييرات قبل أو postynaptic في حالات تجريبية مختلفة أو ظروف مثل الشيخوخة أوممارسة 35،36،37،38. وبالإضافة إلى ذلك، يمكن أن يكون من المفيد أن الأدلة على تعديلات أكثر دهاء في مكونات NMJ مثل الفوسفور العصبي المتغيرة في النهايات العصبية الطرفية كما ورد في ALS39.
في هذه المقالة، نقدم بروتوكول مفصل لتشريح اثنين من عضلات الهيكل العظمي الفئران (واحد بطيء الارتعاش والآخر سريع نشل)، عزل العضلات الألياف والكشف عن المناعة من علامات ما قبل وما بعد متشابك لتقييم كميا التغييرات NMJ فضلا عن عمليات التجميع / تفكيك. هذا النوع من البروتوكول يمكن أن تكون مفيدة في ن…
The authors have nothing to disclose.
شكرا جزيلا ل CSIC و PEDECIBA على الدعم المالي المقدم لهذا العمل. إلى ناتاليا روسانو لتصحيحاتها المخطوطة؛ إلى مارسيلو Casacuberta الذي يجعل الفيديو ونيكولاس بولاتو لإعارة صوته لذلك.
Stereomicroscope with cool light illumination | Nikon | SMZ-10A | |
Rocking platform | Biometra (WT 16) | 042-500 | |
Cover glasses (24 x 32 mm) | Deltalab | D102432 | |
Premium (Plus) microscope slides | PORLAB | PC-201-16 | |
Tweezers | F.S.T | 11253-20 | |
Uniband LA-4C Scissors 125mm | E.M.S | 77910-26 | |
Disponsable surgical blades #10 | Sakira Medical | 1567 | |
Disponsable sterile syringe (1 ml) | Sakira Medical | 1569 | |
Super PAP pen | E.M.S | 71310 | |
100 μl or 200 μl pipette | Finnpipette | 9400130 | |
Confocal microscope | Zeiss | LSM 800 – AiryScan | |
NTac:SD-TgN(SOD1G93A)L26H rats | Taconic | 2148-M | |
1X PBS (Dulbecco) | Gibco | 21600-010 | |
Paraformaldehyde | Sigma | 158127 | |
Triton X-100 | Sigma | T8787 | |
Glycine | Amresco | 167 | |
BSA | Bio Basic INC. | 9048-46-8 | |
Glycerol | Mallinckrodt | 5092 | |
Tris | Amresco | 497 | |
Purified anti-Neurofilament H (NF-H), Phosphorylated Antibody | BioLegend | 801601 | Previously Covance # SMI 31P |
Purified anti-Neurofilament H (NF-H), Nonphosphorylated Antibody | BioLegend | 801701 | Previously Covance # SMI-32P |
Alexa Fluor 488 goat anti-Mouse IgG (H+L) | Thermo Scientific | A11029 | |
α-Bungarotoxin, biotin-XX conjugate | Invitrogen | B1196 | |
Streptavidin, Alexa Fluor 555 conjugate | Invitrogen | S32355 | |
Diaminophenylindole (DAPI) | Sigma | D8417 |