Subarachnoïdale bloeding blijft een hoge last van mortaliteit en morbiditeit bij de mens met zich meebrengen. Om verder onderzoek naar de aandoening en de pathofysiologie ervan te vergemakkelijken, wordt een pre-chiasmatisch, enkelvoudig injectiemodel gepresenteerd.
Ondanks de vooruitgang in de behandeling in de afgelopen decennia, blijft subarachnoïdale bloeding (SAH) een hoge last van morbiditeit en mortaliteit met zich meebrengen, grotendeels een vrij jonge bevolking treffend. Verschillende diermodellen van SAH zijn ontwikkeld om de pathofysiologische mechanismen achter SAH te onderzoeken en farmacologische interventies te testen. Het pre-chiasmatische, enkele injectiemodel bij de rat dat in dit artikel wordt gepresenteerd, is een experimenteel model van SAH met een vooraf bepaald bloedvolume. Kortom, het dier wordt verdoofd, geïntubeerd en onder mechanische ventilatie gehouden. De temperatuur wordt geregeld met een verwarmingskussen. Een katheter wordt in de staartslagader geplaatst, waardoor continue bloeddrukmeting en bloedafname mogelijk is. Het atlantooccipitale membraan wordt ingesneden en een katheter voor drukregistratie wordt in de cisterna magna geplaatst om intracerebrale drukmeting mogelijk te maken. Deze katheter kan ook worden gebruikt voor intrathecale therapeutische interventies. De rat wordt in een stereotaxisch frame geplaatst, een braamgat wordt anterieur naar de bregma geboord en een katheter wordt door het braamgat ingebracht en net voor het optische chiasma geplaatst. Autoloog bloed (0,3 ml) wordt uit de staartkatheter gehaald en handmatig geïnjecteerd. Dit resulteert in een stijging van de intracerebrale druk en een afname van de cerebrale bloedstroom. Het dier wordt gedurende 30 minuten verdoofd gehouden en krijgt onderhuidse zoutoplossing en pijnstillers. Het dier wordt geëxtubeerd en teruggebracht naar zijn kooi. Het pre-chiasmatische model heeft een hoge reproduceerbaarheidssnelheid en beperkte variatie tussen dieren vanwege het vooraf bepaalde bloedvolume. Het bootst SAH bij mensen na, waardoor het een relevant model is voor SAH-onderzoek.
Niet-traumatische subarachnoïdale bloeding (SAH) is een vorm van beroerte, die ongeveer 5% van alle gevallen vertegenwoordigt. De meest voorkomende oorzaak van niet-traumatische SAH is de plotselinge breuk van een aneurysma (aSAH), dat goed is voor 85% van de SAHs. Andere oorzaken zijn de breuk van een arterio-veneuze malformatie, coagulopathieën en scheuring van aderen bij perimesencefale bloeding1. De incidentie is 9 per 100.000 persoonsjaren met sterfte rond een op de drie en nog eens een derde die de ondersteuning van het dagelijks leven nodig heeft na SAH 2,3.
Na de eerste stabilisatie en bevestiging van de diagnose hangt de behandeling af van de ernst van de bloeding. De zwaarst getroffen patiënten krijgen een extra-ventriculaire drain ingebracht in de ventrikels om de intracerebrale druk (ICP) te verminderen en worden opgenomen op de neurointensieve zorgafdeling, waar ze nauwlettend worden gevolgd. Patiënten zullen een angiografie ondergaan om het (waarschijnlijke) aneurysma te identificeren en daarna het aneurysma laten oprollen of knippen om rebloeding te voorkomen4. Ondanks talrijke onderzoeken naar farmacologische therapieën, heeft alleen nimodipine, een calciumkanaalantagonist, aangetoond de resultaten te verbeteren5. Meerdere klinische onderzoeken zijn momenteel aan de gang. Zie de review van Daou en collega’s voor een uitgebreide lijst6.
De breuk van een aneurysma is beschreven als het plotselinge begin van de ergste hoofdpijn ooit ervaren of een donderslag hoofdpijn. De breuk resulteert in een sterke stijging van de ICP gevolgd door een vermindering van de cerebrale bloedstroom (CBF). Deze vermindering resulteert in globale ischemie van de hersenen, wat kan resulteren in een verlies van bewustzijn. Deze meer mechanistische route, samen met de geïnitieerde afbraak van de geëxtravaseerde elementen van bloed, geeft aanleiding tot cytokine-afgifte en activering van het aangeboren immuunsysteem, wat resulteert in steriele neuro-inflammatie. Bovendien wordt vaak afbraak van de bloed-hersenbarrière, resulterend in hersenoedeem en verstoring van de ionhomeostase, waargenomen. Al deze veranderingen en meer, bedacht vroeg hersenletsel (EBI), treden op binnen de eerste paar dagen en resulteren in neuronaal verlies en apoptose7.
Ongeveer 1/3 van de patiënten met aSAH zal tussen dag 4-14 8 vertraagde cerebrale ischemie (DCI)ontwikkelen. DCI wordt gedefinieerd als het debuut van een focale, neurologische stoornis of een daling van minimaal twee punten op de Glasgow-comaschaal die minimaal 1 uur duurt, wanneer andere oorzaken, waaronder epileptische aanvallen en herbloedingen, zijn uitgesloten. DCI is geassocieerd met een verhoogd risico op overlijden en verminderde functionele uitkomst na aSAH9. Cerebraal vasospasme (CVS), de vernauwing van de hersenslagaders, is al tientallen jaren bekend als geassocieerd met DCI en werd voorheen beschouwd als de enige reden voor DCI. Sindsdien is aangetoond dat CVS kan optreden zonder de ontwikkeling van DCI en meer factoren, waaronder microvasculaire trombose en vernauwing, corticale verspreidende depressie en een ontstekingsreactie van EBI zijn sindsdien geïdentificeerd10,11,12.
Vanwege de grote invloed van EBI en DCI op het verloop van de ziekte en de uitkomst van de getroffen patiënten, moeten diermodellen deze in de grootst mogelijke mate nabootsen, terwijl ze nog steeds reproduceerbaar zijn. Onderzoekers hebben een breed scala aan verschillende modellen gebruikt bij een verscheidenheid aan dieren, van muizen tot niet-menselijke primaten, om te proberen aSAH te simuleren. Sprague-Dawley en Wistar wildtype ratten zijn momenteel de meest gebruikte proefdieren, en de meest voorkomende modellen zijn het endovasculaire perforatiemodel, het cisterna-magna dubbele injectiemodel en ten slotte het pre-chiasmatische model met enkele injectie, dat in dit artikel13 zal worden beschreven.
Het pre-chiasmatische, enkele injectiemodel werd oorspronkelijk ontwikkeld door Prunell en collega’s om enkele van de tekortkomingen van de andere experimentele modellen tegen te gaan14. De operatie, wanneer onder de knie, is zeer reproduceerbaar en minimaliseert variatie tussen dieren. Het model bootst SAH bij mensen op meerdere punten na, waaronder de plotselinge stijging van ICP na de injectie van bloed, resulterend in voorbijgaande globale ischemie als gevolg van een daling van de CBF15,16. Het beïnvloedt de voorste circulatie, waar de meeste aSAH bij mensen voorkomen17. De mortaliteit varieert van 10%-33% afhankelijk van het onderzoek en de hoeveelheid geïnjecteerd bloed14,18. Vertraagde celdood en neuro-inflammatie kunnen op dag 2 en 7 worden gedetecteerd en bieden daarmee variabelen om de gevolgen van EBI en DCI 19,20 te bestuderen.
De studie presenteert een bijgewerkte beschrijving van het pre-chiasmatische model voor één injectie bij de rat, samen met een beschrijving van hoe de ICP-sonde kan worden gebruikt als een poort voor intrathecale toediening van farmaceutische producten.
Het pre-chiasmatische single injection model van SAH bootst verschillende belangrijke elementen van menselijke SAH na, waaronder de piek in ICP, reductie van CBF, voorbijgaande globale ischemie, upregulatie van neuro-inflammatoire markers en CVS 14,15,16,18,19,20. De ICP-sonde werd ook gebruikt als poort voor intrathecale toe…
The authors have nothing to disclose.
Het werk werd ondersteund door de Lundbeck Foundation en de Lundbeck Grant of Excellence (nr. R59-A5404). Financiers hadden geen rol in enig deel van het manuscript.
16 G peripheral vein catheter | BD Venflon | 393229 | Needle shortened, distal 1 cm curved. Wings removed |
Anesthesia bell/ chamber | Unknown | ||
Blood gas analyzer | Radiometer | ABL80 | |
Blood pressure (BP) monitor | Adinstruments | ML117 | Connects to Powerlab |
Curved forceps, 12 cm x 3 | F.S.T | 11001-12 | For anesthesia |
Cylindrical pillow, 28 cm x 4 cm | Homemade | Made from surgical towels | |
Data acquisition hardware | Adinstruments | ML870 Powerlab | |
Data acquistion software | Adinstruments | LabChart 6.0 | |
Drill | KMD | 1189 | |
Drill controller | Silfradent | 300 IN | |
Flexible light | Schott | KL200 | |
Heating pad | Minco | 1135 | |
Hypodermic needle, 20 G | KD Medical | 301300 | Connects to stereotaxic frame |
ICP monitor | Adinstruments | ML117 | Connects to Powerlab |
Isoflurane vaporizer | Ohmeda | TEC3 | |
Laptop | Lenovo | T410 | |
Laser doppler monitor | Adinstruments | ML191 | |
Laser doppler probe | Oxford Optronics | MSF100XP | Connects to laser doppler monitor |
Needle holder, 13 cm | F.S.T | 12001-13 | For anesthesia |
Precision syringe, 0.025 mL | Hamilton | 547407 | |
Stereotaxic frame | Kopf Instruments | M900 | |
Surgical microscope | Carl Zeiss | F170 | |
Suture needle | Allgaier | 1245 | For anesthesia |
Temperaure controller | CWE,INC. | TC-1000 | |
Transducer x 2 | Adinstruments | MLT0699 | Connects to BP and ICP monitor |
Ventilator | Ugo Basile | 7025 | |
Veterinary clipper | Aesculap | GT421 | |
3-pronged Blair retractor, 13.5 cm | Agnthos | 17022–13 | |
Blunt Alm retractor | F.S.T | 17008-07 | |
Curved forceps, 12 cm x 2 | F.S.T | 11001-12 | |
Needle holder, 13 cm | F.S.T | 12001-13 | |
Straight Dumont forceps, 11 cm | F.S.T | 11252-00 | |
Straight Halsted-Mosquito hemostat x 2 | F.S.T | 13008-12 | |
Straight Iris scissor, 9 cm | F.S.T | 14090-09 | |
Straight Vannas scissor, 10.5 cm | F.S.T | 15018-10 | |
Absorpable swabs | Kettenbach | 31603 | |
Black silk thread, 4-0, 5 x 15 cm | Vömel | 14757 | |
Bone wax | Aesculap | 1029754 | |
Carbomer eye gel 2 mg/g | Paranova | ||
Cotton swab | Heinz Herenz | WA-1 | |
Cotton tipped applicator x 4 | Selefa | 120788 | |
Hypodermic needle, 23 G x2 | KD Medical | 900284 | Connects to stopcock. Remove distal end |
Hypodermic needle, 23 G x3 | KD Medical | 900284 | Remove distal end. 2 connects to stopcock, 1 to syringe |
ICP probe: | Homemade | Made of the following: | |
Polythene tubing, 20 mm | Smiths medical | 800/100/200 | Inner diameter (ID): 0.58 mm, Outer diameter (OD): 0.96 mm. |
Silicone tubing, 10 mm | Fisher | 15202710 | ID: 0.76 mm, OD: 2.4 mm. |
Silicone tubing, 2 mm | Fisher | 11716513 | ID: 1.0 mm, OD: 3.0 mm. |
Micro hematocrit tubes | Brand | 7493 11 | |
OP-towel, 45 cm x75 cm | Mölnlycke | 800430 | |
PinPort adapter, 22 G | Instech | PNP3F22 | |
PinPort injector | Instech | PNP3M | |
Polythene tubing, 2 x 20 cm | Smiths medical | 800/100/200 | Connects to syringe. ID: 0.58 mm, OD: 0.96 mm. |
Rubberband | Unknown | ||
Scalpel, 10 blade | Kiato | 23110 | |
Spinalneedle, 25 G x 3.5'' | Braun | 5405905-01 | |
Stopcock system, Discofix x 2 | Braun | 16494C | Connects to transducer |
Suture, 4-0, monofil, non-resorbable x 3 | Ethicon | EH7145H | |
Syringe, 1 mL | BD Plastipak | 1710023 | |
Syringe, luer-lock, 10 mL x 4 | BD Plastipak | 305959 | Connects to transducer |
Tissue adhesive glue | 3M | 1469SB | |
0.5% Chlorhexidine spirit | Faaborg Pharma | 210918 | |
Carprofen 50 mg/mL | ScanVet | 43715 | Diluted 1:10 |
Isoflurane | Baxter | ||
Isotonic saline | Amgros | 16404 | |
Lidocaine-Adrenaline 10 mg/5 µg/mL | Amgros | 16318 |