Summary

歯科幹細胞の制御を研究するためのトロウェル型臓器培養の使用

Published: July 08, 2021
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Summary

トロウェル型臓器培養法は、歯の発達を支配する複雑なシグナル伝達ネットワークを解明するために使用され、最近では、継続的に成長するマウス切歯の幹細胞に関与する調節を研究するために使用されています。蛍光レポーター動物モデルとライブイメージング法は、歯科幹細胞とその特定のニッチ微小環境の詳細な分析を容易にします。

Abstract

臓器の発生、機能、および再生は、幹細胞ニッチと呼ばれる個別の解剖学的空間内に存在する幹細胞に依存しています。継続的に成長するマウス切歯は、組織特異的幹細胞を研究するための優れたモデルを提供します。切歯の上皮組織特異的幹細胞は、頸部ループと呼ばれるニッチの歯の近位端に位置しています。それらは、歯の自己研ぎ先端の絶え間ない摩耗を相殺するために細胞の連続的な流入を提供する。ここに提示されるのは、幹細胞とそのニッチを収容するマウス切歯の近位端の単離と培養のための詳細なプロトコルです。これは、組織片(外植片)の in vitro 培養を可能にする修正トロウェルタイプの臓器培養プロトコルであり、金属グリッドで支えられたフィルター上の液体/空気界面の厚い組織スライスを可能にします。ここで説明する臓器培養プロトコルは 、in vivoでは 不可能な組織操作を可能にし、蛍光レポーターの使用と組み合わせると、幹細胞を含む生きた組織中の離散的な細胞集団の経時的な識別と追跡のためのプラットフォームを提供します。このシステムでは、幹細胞とそのニッチに対する効果について、さまざまな調節分子や薬理学的化合物を試験することができます。これは最終的に幹細胞の調節と維持を研究するための貴重なツールを提供します。

Introduction

マウスの切歯は、歯の成分の絶え間ない生産をサポートする幹細胞(SC)の生涯保存により、継続的に成長します。これらには、エナメル質産生アメロブラストを生成する上皮SCや、象牙質産生歯芽細胞を生成する間葉系幹細胞(MSC)などが含まれます1。継続的に成長する切歯の上皮SCは、最初はラベル保持細胞として同定され2,3、その後Sox24を含む多くのよく知られたステムネス遺伝子を発現することが示されています。これらの細胞は他の臓器の上皮SCと共通の特徴を共有し、切歯の唇側に位置する頸部ループと呼ばれるSCニッチ内に存在する。ニッチは、SC活性5を制御する細胞と細胞外マトリックスで構成される動的実体です。系統追跡研究は、Sox2+上皮SCが歯の上皮コンパートメント全体を再生することができ、それらが連続した歯の形成に重要であることを示しています6,7。象牙質修復または再生の可能性を有するMSCは、主に血管および神経を介して臓器外から募集されるため8、91011、したがって、MSC集団の募集移動および住居を研究するための適切なモデルを提供します。

遺伝的および/または薬理学的操作の多くは臓器の恒常性に影響を与えたり、致命的な結果をもたらす可能性があるため、in vivoでSCを研究することは常に実行可能であるとは限りません。したがって、臓器培養は、in vitroでSCとそのニッチの調節を研究するための優れたツールを提供します。金属グリッドを利用する臓器培養システムは、当初、臓器発達を研究するためにTrowell12によって開発され、腎臓発達における誘導シグナルを研究するためにSaxen13によってさらに変更されました。それ以来、臓器の全部または一部を培養するこのin vitro法は、さまざまな分野でうまく適用されてきました。歯の発達の分野では、この方法は、歯の発達14と連続的な歯の形成15を支配する上皮間葉系相互作用の研究に広く使用されています。Thesleff研究室の研究は、歯の成長と形態形成の時間的分析、歯の成長に対するさまざまな分子と成長因子の影響の分析、および歯の発達のタイムラプスライブイメージングのためのこのシステムの有用性を実証しました16,17。最近では、この方法は、切歯SCおよびそれらのニッチ18,19の調節を研究するために利用されており、これはここで詳細に説明されている。

Protocol

この議定書には動物の使用が含まれ、すべての手順は、動物の使用と世話に関する倫理委員会とヘルシンキ大学の動物施設によって承認されました。 1. 臓器培養皿の調製 すべての手順は層流フードで実行します。作業面を70%エタノールで洗浄し、オートクレーブ滅菌したガラス器具と溶液を使用します。はさみやその他の金属機器をガラスビーズ滅菌器で滅菌し…

Representative Results

上皮SCは、切歯の近位端に位置する頸部ループと呼ばれるニッチに存在します(図3A)。頸部ループは、緩く配置された上皮細胞のコアである星状網を包む内側と外側のエナメル質上皮で構成される形態学的に異なる構造です(図3B、C)。各切歯には2つの頸部ループがありますが(図3A)、唇頸部ループにのみSCが含まれ?…

Discussion

in vitro 臓器培養は、臓器の成長と形態形成を支配する誘導電位と上皮間葉系相互作用を研究するために広く使用されています。Theslef研究室は、トロウェル型臓器培養のサクセン修飾を適応させ、それを使用して歯の発達を研究する方法を実証しました14。再現性のある条件と蛍光レポーターの進歩により、これは歯の形態形成とその中の明確な細胞集団をモニタリン?…

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

この研究は、Jane and Aatos Erkko Foundationの支援を受けた。

Materials

1-mL plastic syringes
Disposable 20/26 gauge hypodermic needles Terumo
DMEM Gibco 61965-026
Dulbecco's Phosphate-Buffered Saline Gibco 14287
Extra Fine Bonn Scissors F.S.T. 14084-08
F-12 Gibco 31765-027
FBS South American (CE) LifeTechn. 10270106 divide in aliquotes, store at -20°C
Glass bead sterilizer, Steri 250 Seconds-Sterilizer Simon Keller Ltd 4AJ-6285884
GlutaMAX-1 (200 mM L-alanyl-L-glutamine dipeptide) Gibco 35050-038
Isopore Polycarb.Filters, 0,1 um 25-mm diameter MerckMillipore VCTP02500 Store in 70% ethanol at room temperature.
L-Ascobic Acid Sigma A4544-25g diluted 100 mg/ml in MilliQ, filter strerilized and divided in 20μl aliquotes, store at dark, -20°C
Low melting agarose TopVision R0801
Metal grids Commercially available, or self-made from stainless-steel mesh (corrosion resistant, size of mesh 0.7 mm). Cut approximately 30 mm diameter disk and bend the edges to give 3 mm height. Use nails to make holes.
Micro forceps Medicon 07.60.03
Paraformaldehyde Sigma-Aldrich
Penicillin-Streptomycin (10,000U/ml) sol. Gibco 15140-148
Petri dishes, Soda-Lime glass DWK Life Sciences 9170442
Petridish 35 mm, with vent Duran 237554008
Petridish 90 mm, no vent classic Thermo Fisher 101RT/C
Small scissors

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Cite This Article
Juuri, E., Balic, A. Use of Trowell-Type Organ Culture to Study Regulation of Dental Stem Cells. J. Vis. Exp. (173), e62462, doi:10.3791/62462 (2021).

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