Utilisation de la culture d’organes de type Trowell pour étudier la régulation des cellules souches dentaires
Summary
La méthode de culture d’organes de type Trowell a été utilisée pour démêler les réseaux de signalisation complexes qui régissent le développement des dents et, plus récemment, pour étudier la régulation impliquée dans les cellules souches de l’incisive de souris en croissance continue. Les modèles animaux fluorescents-rapporteurs et les méthodes d’imagerie en direct facilitent les analyses approfondies des cellules souches dentaires et de leur microenvironnement de niche spécifique.
Abstract
Le développement, la fonction et la régénération des organes dépendent des cellules souches, qui résident dans des espaces anatomiques discrets appelés niches de cellules souches. L’incisive de souris à croissance continue fournit un excellent modèle pour étudier les cellules souches spécifiques aux tissus. Les cellules souches spécifiques du tissu épithélial de l’incisive sont situées à l’extrémité proximale de la dent dans une niche appelée boucle cervicale. Ils fournissent un afflux continu de cellules pour contrebalancer l’abrasion constante de la pointe auto-affûtante de la dent. Un protocole détaillé pour l’isolement et la culture de l’extrémité proximale de l’incisive de souris qui abrite les cellules souches et leur niche est présenté ici. Il s’agit d’un protocole modifié de culture d’organes de type Trowell qui permet la culture in vitro de morceaux de tissus (explants), ainsi que les tranches de tissu épaisses à l’interface liquide/air sur un filtre soutenu par une grille métallique. Le protocole de culture d’organes décrit ici permet des manipulations tissulaires impossibles in vivo et, lorsqu’il est combiné à l’utilisation d’un ou de plusieurs rapporteurs fluorescents, il fournit une plate-forme pour l’identification et le suivi de populations cellulaires discrètes dans les tissus vivants au fil du temps, y compris les cellules souches. Diverses molécules régulatrices et composés pharmacologiques peuvent être testés dans ce système pour leur effet sur les cellules souches et leurs niches. Cela fournit en fin de compte un outil précieux pour étudier la régulation et le maintien des cellules souches.
Introduction
Les incisives de souris se développent continuellement en raison de la préservation à vie des cellules souches (SC) qui soutiennent la production incessante de composants dentaires. Il s’agit notamment des SC épithéliales, qui génèrent des améloblastes producteurs d’émail, et des cellules souches mésenchymateuses (CSM), qui génèrent des odontoblastes producteurs de dentine, entre autres cellules1. Les SC épithéliaux dans les incisives en croissance continue ont été initialement identifiés comme des cellules retenant le marquage2,3 et il a depuis été démontré qu’ils expriment un certain nombre de gènes souches bien connus, y compris Sox24. Ces cellules partagent des caractéristiques communes avec les SC épithéliaux dans d’autres organes et résident dans la niche SC appelée la boucle cervicale située sur le côté labial de l’incisive. La niche est une entité dynamique composée de cellules et de matrice extracellulaire qui contrôlent l’activité SC5. Des études de traçage de lignée ont démontré que les SC épithéliales Sox2+ peuvent régénérer tout le compartiment épithélial de la dent et qu’ils sont cruciaux pour la formation des dents successives 6,7. Les CSM ayant un potentiel réparateur ou régénérateur de la dentine sont en grande partie recrutées à l’extérieur de l’organe par les vaisseaux sanguins et les nerfs 8,9,10,11, fournissant ainsi un modèle approprié pour étudier le recrutement, la migration et le logement de la population des CSM.
Il n’est pas toujours possible d’étudier les SC in vivo, car de nombreuses manipulations génétiques et/ou pharmacologiques peuvent affecter l’homéostasie des organes et/ou avoir des conséquences mortelles. Par conséquent, la culture d’organes fournit un excellent outil pour étudier la régulation des SC et de leurs niches in vitro. Le système de culture d’organes qui utilise une grille métallique a été initialement développé par Trowell12 pour étudier le développement des organes et a été modifié par Saxen13 pour étudier les signaux inductifs dans le développement des reins. Depuis lors, cette méthode in vitro de culture de tout ou partie de l’organe a été appliquée avec succès dans différents domaines. Dans le domaine du développement dentaire, cette méthode a été largement utilisée pour étudier les interactions épithéliales-mésenchymateuses qui régissent le développement des dents14 et la formation des dents successives15. Les travaux du laboratoire de Thesleff ont démontré l’utilité de ce système pour l’analyse temporelle de la croissance et de la morphogenèse des dents, pour l’analyse de l’effet de diverses molécules et facteurs de croissance sur la croissance des dents, et pour l’imagerie en direct du développement des dentsen accéléré 16,17. Plus récemment, cette méthode a été utilisée pour étudier la régulation des SC incisives et de leur créneau18,19, qui est décrit en détail ici.
Protocol
Representative Results
Discussion
La culture d’organes in vitro a été largement utilisée pour étudier le potentiel inductif et les interactions épithélio-mésenchymateuses qui régissent la croissance et la morphogenèse des organes. Le laboratoire de Thesleff a montré comment adapter la modification Saxén de la culture d’organes de type Trowell et l’utiliser pour étudier le développement des dents14. Les conditions reproductibles et les progrès dans les rapporteurs fluorescents en ont fait une méthode u…
Disclosures
The authors have nothing to disclose.
Acknowledgements
Cette étude a été soutenue par la Fondation Jane et Aatos Erkko.
Materials
| 1-mL plastic syringes | |||
| Disposable 20/26 gauge hypodermic needles | Terumo | ||
| DMEM | Gibco | 61965-026 | |
| Dulbecco's Phosphate-Buffered Saline | Gibco | 14287 | |
| Extra Fine Bonn Scissors | F.S.T. | 14084-08 | |
| F-12 | Gibco | 31765-027 | |
| FBS South American (CE) | LifeTechn. | 10270106 | divide in aliquotes, store at -20°C |
| Glass bead sterilizer, Steri 250 Seconds-Sterilizer | Simon Keller Ltd | 4AJ-6285884 | |
| GlutaMAX-1 (200 mM L-alanyl-L-glutamine dipeptide) | Gibco | 35050-038 | |
| Isopore Polycarb.Filters, 0,1 um 25-mm diameter | MerckMillipore | VCTP02500 | Store in 70% ethanol at room temperature. |
| L-Ascobic Acid | Sigma | A4544-25g | diluted 100 mg/ml in MilliQ, filter strerilized and divided in 20μl aliquotes, store at dark, -20°C |
| Low melting agarose | TopVision | R0801 | |
| Metal grids | Commercially available, or self-made from stainless-steel mesh (corrosion resistant, size of mesh 0.7 mm). Cut approximately 30 mm diameter disk and bend the edges to give 3 mm height. Use nails to make holes. | ||
| Micro forceps | Medicon | 07.60.03 | |
| Paraformaldehyde | Sigma-Aldrich | ||
| Penicillin-Streptomycin (10,000U/ml) sol. | Gibco | 15140-148 | |
| Petri dishes, Soda-Lime glass | DWK Life Sciences | 9170442 | |
| Petridish 35 mm, with vent | Duran | 237554008 | |
| Petridish 90 mm, no vent classic | Thermo Fisher | 101RT/C | |
| Small scissors |
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