Évaluation peropératoire des marges de résection dans le cancer de la cavité buccale: voici la voie

Cette étude a été approuvée par le Comité d’éthique médicale de l’établissement (MEC-2015-150). REMARQUE : Tous les renseignements sur les patients et le personnel contenus dans les chiffres ou les exemples sont fictifs (c.-à-d. XXXXX et YYYYY). 1. Avant la chirurgie Service de chirurgie: Demande d’IOARM lors de la planification de la chirurgie. Service de pathologie : Assurer la logistique/l’équipement (voir tableau des matériaux)et la disponibilité du personnel (pathologiste/résident en pathologie et assistant). 2. Pendant la chirurgie Salle d’opération (OR) S’assurer que tout le personnel concerné connaît le protocole de réinstallation12. Suivez le protocole de réinstallation. Immergez les étiquettes dans la chlorhexidine pendant au moins 30 minutes avant le début de la chirurgie. Placer les étiquettes appariées de chaque côté de la ligne de résection prévue (superficielle et profonde), de sorte qu’une étiquette se trouve sur l’échantillon de résection et que l’autre reste à l’endroit correspondant dans le lit de la plaie (Figure 1A) comme décrit par Van Lanschot et al.12. Couper entre chaque paire de balises. Retirez l’échantillon avec la tumeur (une étiquette de chaque paire reste dans le lit de la plaie, Figure 1B). Remplissez le formulaire de demande de pathologie avec une indication claire de l’emplacement anatomique des étiquettes (p. ex., étiquette 1 = antérieure, étiquette 2 = supérieure). Notez les défauts liés à la procédure chirurgicale de l’échantillon et leur emplacement par rapport aux étiquettes, sur le formulaire de demande de pathologie.REMARQUE: Les défauts liés à la procédure créent de fausses surfaces de résection et peuvent entraîner une attribution incorrecte de marges inadéquates pendant l’IOARM et la pathologie finale. Apportez l’échantillon au service de pathologie. Figure 1: Illustration du protocole de relocalisation. (A) Application des tags par paires. (B) Lit enroulé et spécimen avec une étiquette de chaque paire. Veuillez cliquer ici pour voir une version agrandie de cette figure. IOARM – Salle de grossage (GR), service de pathologie Rincez l’échantillon avec de l’eau et séchez-le doucement avec de la gaze ou du papier.REMARQUE: Enregistrez chaque étape suivante avec des photographies et stockez-les dans le dossier électronique du patient (EPF). Notez les informations générales (date, identifiant du patient, numéro de pathologie, chirurgien, pathologiste, type d’échantillon et étiquettes utilisées) sur le modèle anatomique. Indiquez l’emplacement des étiquettes sur le gabarit anatomique (Figure 2). Placez le spécimen sur le gabarit anatomique. Figure 2: Exemple de modèle anatomique pour IOARM. Veuillez cliquer ici pour voir une version plus grande de cette figure. Encrez la surface de résection selon le protocole standard (p. ex., bleu supérieur et vert inférieur). Inspecter l’échantillon visuellement et par palpation (pathologiste et chirurgien). Indiquez l’emplacement de toute région suspecte (c.-à-d. marge <5 mm) sur le gabarit anatomique et reliez-la aux étiquettes numérotées (section Résultat de IOARM, figure 2). Effectuer une incision perpendiculaire à la surface de résection au niveau de la région suspecte (Figure 3A). Selon la taille de l’échantillon et/ou les régions suspectes, faire une ou plusieurs incisions d’une distance d’environ 5 mm. Dans le cas de plus d’une incision, numérotez les incisions comme IOA1, IOA2, etc. Mesurer les marges (c’est-à-dire la distance entre la surface de résection et la bordure tumorale) sur les coupes tissulaires(Figure 3B)et enregistrer les valeurs exactes en mm sur le gabarit anatomique (section Résultat de IOARM, Figure 3C).REMARQUE: Si la bordure tumorale n’est pas distinguable macroscopiquement (par exemple, la tumeur ne peut pas être distinguée du tissu fibrotique ou salivaire environnant), une analyse microscopique par section congelée est indiquée. Figure 3: Illustration de l’IOARM. (A) Incision perpendiculaire réalisée après identification de la région suspecte par palpation. (B) La marge est mesurée. (C) Le résultat de l’IOARM et la recommandation sont enregistrés. Veuillez cliquer ici pour voir une version agrandie de cette figure. Passez à l’étape 2.2.19 de l’opération. Si une marge adéquate est détectée (c.-à-d. qu’une résection supplémentaire n’est pas nécessaire). Indiquez l’emplacement exact en fonction des balises si une marge inadéquate est détectée et enregistrez-la sur le modèle. Procéder à une résection supplémentaire si elle est réalisable chirurgicalement/techniquement, étape 2.2.13. Annotez la raison sur le modèle, si une résection supplémentaire n’est pas réalisable (section Commentaires supplémentaires, Figure 2). Recommander (pathologiste/chirurgien) la résection supplémentaire en fonction de l’emplacement exact et indiquer l’épaisseur nécessaire pour obtenir une résection adéquate (Figure 3C).REMARQUE: Si la marge inadéquate concerne une marge positive, une épaisseur minimale de 6 mm doit être recommandée pour la résection supplémentaire. Conservez (pathologiste) l’échantillon de résection principal au réfrigérateur jusqu’à ce que la résection supplémentaire soit reçue. Déplacer (chirurgien) la zone de résection supplémentaire par rapport aux étiquettes, dans le lit de la plaie, sur la base de l’enregistrement d’IOARM (Figure 3C). Effectuez la résection supplémentaire. Envoyez la résection supplémentaire au GR. Vérifier (pathologiste) l’exactitude de la résection supplémentaire en ce qui concerne son emplacement (en fonction des étiquettes) et sa taille.REMARQUE: Les étapes ci-dessus sont applicables dans le cas d’une marge étroite. Dans le cas d’une marge positive, un IOARM de la résection supplémentaire est nécessaire (pathologiste). Le chirurgien attend le résultat du deuxième IOARM avant de terminer l’opération. Retirez (chirurgien) les étiquettes restantes du lit de la plaie et terminez l’opération. Copier (pathologiste) toutes les données du gabarit anatomique vers l’EPF. 3. Après IOARM – Salle de grossage (GR), service de pathologie REMARQUE: Pour préserver l’orientation anatomique et la forme de l’échantillon, les étapes suivantes sont effectuées. Réassembler l’échantillon par l’orientation correcte de toutes les sections de tissus (sections transversales et extrémités polaires) en fonction des étiquettes et des photographies enregistrées pendant IOARM.REMARQUE: Les sections transversales sont au milieu de l’échantillon et les extrémités polaires sont les parties extérieures de l’échantillon. Coupez les morceaux de liège légèrement plus grands que les sections de tissu. Placez chaque section de tissu sur un morceau de liège. Tracez une ligne sur le liège autour de la section de tissu avec un marqueur permanent et prenez une photo (Figure 4A). Placez un autre morceau de liège sur toutes les sections de tissu, à l’exception des extrémités polaires(figure 4B). Gardez le liège supérieur et inférieur ensemble, avec la section de tissu entre les deux, en plaçant des broches à travers les deux bouchons à côté du bord de la section de tissu, mais pas à travers la section de tissu (Figure 4B). Figure 4: Illustration de la méthode de préservation de l’orientation anatomique et de la forme des coupes tissulaires. (A) Les coupes tissulaires sont placées sur un morceau de liège avec une ligne tracée sur le liège autour de la section tissulaire avec un marqueur permanent. (B) Les broches sont placées obliquement sur les extrémités polaires et un autre morceau de liège est placé sur la section de tissu. (C) Illustration d’un spécimen frais remonté conservé avec des broches qui perforent les bouchons adjacents. (D) Illustration d’un spécimen fixe remonté conservé avec des goupilles qui perforent les bouchons adjacents. Veuillez cliquer ici pour voir une version agrandie de cette figure. Placez les extrémités polaires sur un morceau de liège séparé (Figure 4A). Gardez les extrémités polaires attachées au liège en plaçant obliquement des épingles sur le tissu et en perçant le liège juste à côté du bord du tissu (Figure 4B).ATTENTION : Ne perforez pas l’échantillon avec les broches. Réassembler l’échantillon entier: mettez toutes les sections de tissu, y compris les extrémités polaires, ensemble dans la bonne orientation anatomique. Gardez toutes les sections de tissu ensemble en perforant les bouchons adjacents(Figure 4C). Positionnez le spécimen avec la bonne orientation sur le gabarit anatomique et prenez une photo. Placer l’échantillon dans une solution de formaldéhyde (formol 4%).REMARQUE: Pour une bonne fixation, des morceaux de papier peuvent être placés sur le dessus de l’échantillon pour le garder immergé dans le formol. Faites une note d’avertissement claire et visible sur le contenant avec l’échantillon (p. ex., aiguilles/épingles de mise en garde) afin d’éviter les accidents. Conservez le récipient avec l’échantillon pour un traitement ultérieur, conformément au protocole de pathologie standard. 4. Grossissement de l’échantillon fixe après IOARM REMARQUE: Après la fixation du formol, l’échantillon doit être prélevé de préférence par le pathologiste / résident / assistant, qui a effectué l’IOARM. ATTENTION : Soyez prudent avec les aiguilles/épingles lorsque vous retirez l’échantillon du contenant. Suivez le protocole de grossissement institutionnel.NOTE: Prendre des mesures supplémentaires pour assurer l’orientation correcte et faciliter la comparaison de l’état de la marge entre IOARM et l’évaluation pathologique finale. Consultez les photos de l’IOARM. Sortez l’échantillon du récipient. Vérifiez si toutes les sections de tissus sont présentes. Positionnez l’échantillon avec la bonne orientation sur le gabarit anatomique et prenez une photo (Figure 4D). Retirez les broches. Séparez les différentes sections de tissu avec le liège correspondant. Prenez des photos de chaque section de tissu avec leurs bouchons correspondants, en vous concentrant sur les lignes qui ont été dessinées autour de la section de tissu pour évaluer le rétrécissement possible du tissu après fixation (Figure 5). Figure 5: Illustration d’une extrémité polaire avec la surface découpée face au liège, maintenue contre le liège par des broches inclinées. (A) Spécimen frais. B) Après fixation. (C) La surface de coupe de l’extrémité polaire est plate après fixation. Veuillez cliquer ici pour voir une version agrandie de cette figure. Détachez systématiquement toutes les coupes tissulaires du liège (par exemple, commencez de l’avant vers le postérieur ou de gauche à droite). Grossir les sections de tissu IOARM aux sections de tissu finales standard (2-3 mm d’épaisseur). Placez toutes les dernières coupes de tissus, dans l’orientation anatomique correcte (par exemple, de l’avant vers le postérieur), sur un papier sur la table de grossissement. Numéroter toutes les dernières coupes de tissu consécutivement avec un marqueur permanent sur le papier (Figure 6). Annoter l’emplacement d’IOARM avec un marqueur permanent (Figure 6). Prenez des photos, y compris toutes les coupes de tissus finales et stockez-les dans le FPE (Figure 6). Sélectionnez les coupes tissulaires finales et les sections IOARM pertinentes à traiter ultérieurement pour l’évaluation pathologique finale. Figure 6: Spécimen grossier avec l’emplacement de l’IOARM marqué. Les numéros correspondants 1 à 5 se réfèrent aux coupes de tissus de gauche à droite. A-E correspond aux coupes tissulaires incluses pour l’évaluation histopathologique. Notez que le morceau de tissu restant qui a été évalué par section congelée (FS) est indiqué pour permettre une comparaison directe avec la section permanente colorée HE. Veuillez cliquer ici pour voir une version agrandie de cette figure. 5. L’évaluation pathologique finale – Impact de l’IOARM sur l’état final de la marge Suivez le protocole normalisé local. Le protocole suivi ici est le protocole national PALGA (Pathologisch-Anatomisch Landelijk Geautomatiseerd Archief, le réseau national et registre d’histo- et de cytopathologie aux Pays-Bas) head-neck pour le rapport final de pathologie structurée standardisée.NOTE: Ce protocole est basé sur les normes à jour de l’American Joint Committee on Cancer (AJCC), de l’Union internationale contre le cancer (UICC) et de l’Organisation mondiale de la santé (OMS). Évaluez toutes les marges en millimètres, y compris la muqueuse, la sous-muqueuse et l’os. Si une marge inadéquate est trouvée, annotez son étendue (p. ex., la marge sous-muqueuse antérieure est de 3,5 mm, s’étendant sur une trajectoire de 6 mm). Évaluer la présence de dysplasie et son grade pour les marges de résection des muqueuses. Indiquez la marge finale en ajoutant les dimensions de la résection supplémentaire (si elle est effectuée) à la marge mesurée sur l’échantillon principal. Notez le numéro de pathologie unique de la résection supplémentaire dans le rapport de pathologie de l’échantillon principal (par exemple, Marges: antérieures 6 mm, postérieures 8 mm, supérieures 6 mm (y compris 3 mm de la résection supplémentaire, H20-2021), inférieures 7 mm, médiales 5,3 mm). Vérifiez les marges trouvées pendant IOARM. Annotez le résultat de cette vérification (p. ex., les marges NB trouvées lors de l’évaluation peropératoire sont en concordance avec les marges basées sur la pathologie finale).REMARQUE: Le temps nécessaire pour IOARM doit être limité afin de ne pas interférer avec le flux de travail chirurgical. À l’institut, l’IOARM prend environ 10 min. Le chirurgien et le pathologiste effectuent l’IOARM ensemble. Pour la méthode de relocalisation (placer les étiquettes pendant la chirurgie), un temps supplémentaire de 5 minutes est nécessaire. Cela variera pour chaque institut en fonction de la logistique.