Summary

בידוד של אוכלוסיות אסטרוציטים אנושיות בוגרות מקורטקס קפוא טרי באמצעות מיון גרעינים המופעלים על ידי פלואורסצנציה

Published: April 16, 2021
doi:

Summary

פיתחנו שיטה המעשירה ומבודדת אוכלוסיות אסטרוציטים אנושיות מרקמה קפואה טרייה לשימוש בניתוחים מולקולריים במורד הזרם.

Abstract

המורכבות של האסטרוציטים האנושיים נותרה לא מוגדרת היטב ברקמה האנושית הראשונית, ודורשת כלים טובים יותר לבידוד ולאפיון המולקולרי שלהם. ניתן להשתמש במיון גרעינים המופעלים על-ידי פלואורסצנציה (FANS) כדי לבודד ולחקור בהצלחה אוכלוסיות גרעינים עצביים אנושיים (NeuN+) מרקמה ארכיונית קפואה, ובכך להימנע מבעיות הקשורות לטיפול ברקמות טריות. עם זאת, חסרים מאמצים לבודד באופן דומה את האסטרוגליה מהאלמנט הלא-עצבי (NeuN-). אסטרטגיית תיוג אימונולוג שפותחה ואומתה לאחרונה משתמשת בשלושה נוגדנים של גורמי שעתוק כדי לבודד בו זמנית אוכלוסיות של גרעינים מועשרים עצביים מועשרים (NeuN+), אסטרוציטים (חלבון קופסה מזווג 6 (PAX6)+NeuN-), וגרעיניטור אוליגודנדרוציטים (OLIG2+NeuN-) מאוכלוסיות גרעינים מועשרים (OLIG2+NeuN-) מרקמת ניאו-קורטקס טמפורלית אנושית לא חולה, טרייה (לא מנוקבת).

טכניקה זו הוכחה כיעילה לאפיון שינויים בתעתיק ספציפי לסוג התא בניאוקורטקס אפילפסיה פתולוגית ראשונית. ניתוחי תעתיק אישרו כי אוכלוסיות ממוינות PAX6+NeuN מועשרות היטב עבור סמני פאן-אסטרוציטים ולוכדות אסטרוציטים הן בתנאי מנוחה והן בתנאים תגובתיים. מאמר זה מתאר את מתודולוגיית FANS לבידוד של אוכלוסיות גרעינים מועשרים באסטרוציטים מקליפת המוח האנושית הקפואה טרייה, כולל דיסוציאציה של רקמות לתרחיף של גרעין יחיד (sn); אימונו-תיוג של גרעינים עם נוגדנים מצומדים פלואורסצנטיים נגד NeuN ו-anti-PAX6; אוהדים מנצלים אסטרטגיות ומדדי בקרת איכות לאופטימיזציה של רגישות וספציפיות במהלך המיון ולאישור העשרת אסטרוציטים; ורכש מומלץ לריצוף תעתיק במורד הזרם ונגישות כרומטין ברזולוציית תפזורת או sn. פרוטוקול זה ישים עבור דגימות קליפת המוח האנושיות שאינן נמקיות, קפואות טריות, עם פתולוגיות שונות ואיסוף רקמות מומלץ לאחר המוות תוך 24 שעות.

Introduction

המורכבות המולקולרית של האסטרוציטים האנושיים נותרה לא מוגדרת היטב ברקמות הראשוניות, ודורשת כלים טובים יותר לבידוד ולאפיון שלהם ברזולוציה גבוהה, הן בבריאות והן במחלות. הפרדת תאי עצב אנושיים וגליה שלמים מהנישה שלהם הוכחה כקשה בשל גישה מוגבלת של דגימות רקמת מוח טריות, האופי המקושר בכבדות של תהליכי גליה ונוירונים, והפעלה תאית בלתי נמנעת במהלך העיבוד, כל אלה מגבילים את האפיון המולקולרי של סוגי תאים אלה ex vivo1 . מיון גרעינים המופעלים על ידי פלואורסצנציה (FANS) התגלה כחלופה למיון תאים חיים, המאפשר דיסוציאציה ואימונו-תיוג של אוכלוסיות גרעינים מרקמה קפואה. בעשור האחרון, FANS הפך לשימוש נרחב לבידוד ואפיון מולקולרי של אוכלוסיות גרעינים עצביים אנושיים (NeuN+) במגוון דגימות מוח ואזורים אנטומיים 1,2,3,4.

עם זאת, שיטות דומות לבידוד תת-אוכלוסיות של גרעיני גליה ספציפיים מקליפת המוח האנושית היו מוגבלות, מה שהוביל לחוסר תחכום יחסי בהבנת מורכבות האסטרוציטים ברקמות נורמליות וחולות כאחד. לשם כך, פרוטוקול שפורסם בעבר הותאם לבידוד אוכלוסיות נוירונים אנושיות באמצעות FANS4, ואומתה שיטה להעשרתם עבור אסטרוציטים (ועבור אבות אוליגודנדרוגליאליים) באמצעות שילוב נוגדנים משולש, לכידת אסטרוציטים הן בתנאי מנוחה והן בתנאים תגובתיים5. כדי להעשיר באופן ספציפי עבור אסטרוציטים בשבר ה-NeuN, נעשה שימוש בנוגדנים כנגד אחד משני גורמי שעתוק הידועים כמבוטאים באופן דיפרנציאלי בין אוכלוסיות אסטרוציטים, PAX6 או גורם שעתוק תיבת SRY 9 (SOX9)6,7. PAX6 מתבטאת מאוד במהלך ההתפתחות המוקדמת של העובר בתוך אבות דמויי גליה רדיאליים באזורי חיידקים ותורמת הן לנוירוגנזה והן לגליוגנזה 8,9,10,11, כמו גם למפרט העצבי ברשתית 12. במבוגר, PAX6 מתבטא יתר על המידה במנוחה של אסטרוציטים אנושיים6 ומראה ביטוי משותף של חלבון עם חלבון חומצי פרפור גלי (GFAP) באסטרוציטים של רקמת אפילפסיה אנושית13.

פרוטוקול זה מתאר בידוד סימולטני של אוכלוסיות גרעינים ניאו-קורטיקליים עצביים ואסטרוציטים מועשרים על ידי FANS. רקמה טרייה (לא קפואה) (כלומר, קפואה-טרייה) לאחר המוות שנאספה מקליפת המוח הבוגרת מנותקת תחילה מכנית וכימית. לאחר תזה ואולטרה-צנטריפוגציה בשיפוע סוכרוז, הרכיבים הציטופלסמיים והחוץ-תאיים מושלכים בעוד הגרעינים נשמרים. לאחר מכן גרעינים מסומנים בנוגדנים גרעיניים מצומדים פלואורסצנטית המתאימים לשושלות המטרה הרצויות וממוינים באמצעות FANS. בעקבות גישה זו, העשרת האסטרוציטים מודגמת באוכלוסיות PAX6+NeuN שנאספו, ומאומתת הן על ידי לוח qPCR ממוקד והן על ידי ריצוף RNA גרעיני במורד הזרם.

Protocol

הערה: התוכנית להגנה על נבדקים אנושיים בבית הספר לרפואה של אייקן בהר סיני (ISMMS) ומועצת הביקורת המוסדית שלה (IRB) מבטיחה את ההתנהלות האתית של מחקר ועמידה בתקנות פדרליות, מדינתיות ומוסדיות. במחקר זה, כל הדגימות שלאחר המוות שבהן נעשה שימוש לא זוהו, התקבלו בהסכמה מתאימה באמצעות הביו-רפוזיטור, והיו …

Representative Results

גרעינים נאספו מרקמת ניאוקורטקס טמפורלית טרייה (לא מנוקבת) עם זמן איסוף לאחר המוות של 12 שעות. לאחר דיסוציאציה של רקמות לתרחיף גרעינים, הדגימות הודגמו עם נוגדנים נגד NeuN, PAX6 ו-OLIG2, ומוינו לפי הגידור המוצג באיור 1 ובאיור 2. גרעינים נאספו מאוכלוסיות ממוינות של NeuN+, P…

Discussion

יש לסיים את התכנון הניסויי על פי הפרוטוקול המתואר לאחר ששקל מספר גורמים ביולוגיים וטכניים. דגימות הרקמות המתחילות מוקפאות טריות, מבלי שתוקנו, ועדיף שיהיה להן מרווח איסוף קצר לאחר המוות כדי למקסם את התאוששות הגרעינים. בהתבסס על ניסיון, PMI של עד 24 שעות מאפשר התאוששות גרעינים נאותה; עם זאת, PMI ?…

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

אנו רוצים להודות לחברים בפתולוגיה ונוירוכירורגיה בבית הספר לרפואה של אייקן בהר סיני על העזרה ברכישת רקמת מוח שלא זוהתה ול-Flow Cytometry CORE של ISMMS על ייעוץ מומחה. המחקר מומן בחלקו על ידי NIH RF1DA048810, R01NS106229, R03NS101581 (ל- N.M.T.) ו- R61DA048207 (ל- S.A.).

Materials

10x PBS pH 7.2 Invitrogen 70013073
ANTI-NEUN ANTIBODY CLONE A60 Millipore MAB377A5MI mouse anti-NeuN conjugated to a fluorescent compound AF555 (excitation, 553 nm; emission, 568 nm)
ANTI-OLIG2 ANTIBODY CLONE 211 Millipore MABN50A4MI mouse anti-OLIG2 conjugated to a fluorescent compound AF488 (excitation, 499 nm; emission, 520 nm)
Bovine Serum Albumin Fisher BP9704-100
Bright-Line Counting Chamber Hausser Scientific 3110V
Calcium Chloride Anhydrous Fisher C614-3
Cell Strainers, 40 µM SP Scienceware 136800040
DAPI (4',6-Diamidino-2-Phenylindole, Dihydrochloride) Invitrogen D1306
DL-Dithiothreitol Sigma 43815-1G
DNA Library Kit Illumina, Nextera FC-121–1030
DNAse I Worthington LS002139
Dounce Tissue Grinder WHEATON 357542
FACS Sorter BD Biosciences BD FACSAria III
Magnesium Acetate Tetrahydrate Fisher M13-500
PAX6 (PAX6/496) – 100 TESTS Novus NBP234705J
RNA Clean & Concentrator Zymo Research R1013
RNaseZap RNase Decontamination Solution Invitrogen AM9780
SMARTer Stranded Total RNA-Seq Kit Pico Input Mammalian Clontech Laboratories 635005 Fragmentation time of 2.5 minutes, as recommended for low RIN RNA values.
Sucrose, crystal certified, ACS, 500 mg Fisher S5500
SW 41 Ti Swinging-Bucket Rotor Beckman Coulter 331362
Tris-HCl, 1M Solution, pH 8.0, Molecular Biology Grade, Ultrapure Thermo Scientific J22638AE
TritonX-100 Fisher BP151-500 non-ionic surfactant in lysis buffer
TRIzol LS Reagent Invitrogen 10296028
TRIzol Reagent Invitrogen 15596026 reagent for isolation of RNA
Trypan Blue Solution, 0.4% Gibco 15250061
Ultracentrifuge Beckman Coulter Optima XE-100 A94516
Ultracentrifuge tubes PP 9/16 X 3-1/2 Beckman Coulter 331372
UltraPure Distilled Water (RNAse-, DNAse-free) Invitrogen 10977023 referred to as distilled water
Ultrapure EDTA Life Technologies 15576-028

References

  1. Mitchell, A., Roussos, P., Peter, C., Tsankova, N., Akbarian, S. The future of neuroepigenetics in the human brain. Progress in Molecular Biology and Translational Science. 128, 199-228 (2014).
  2. Jiang, Y., Matevossian, A., Huang, H. S., Straubhaar, J., Akbarian, S. Isolation of neuronal chromatin from brain tissue. BMC Neuroscience. 9, 42 (2008).
  3. Akbarian, S., et al. The PsychENCODE project. Nature Neuroscience. 18 (12), 1707-1712 (2015).
  4. Matevossian, A., Akbarian, S. Neuronal nuclei isolation from human postmortem brain tissue. Journal of Visualized Experiments: JoVE. (20), e914 (2008).
  5. Tome-Garcia, J., et al. Cell type-specific isolation and transcriptomic profiling informs glial pathology in human temporal lobe epilepsy. BioRxiv. , (2020).
  6. Zhang, Y., et al. Purification and characterization of progenitor and mature human astrocytes reveals transcriptional and functional differences with mouse. Neuron. 89 (1), 37-53 (2016).
  7. Sun, W., et al. SOX9 Is an astrocyte-specific nuclear marker in the adult brain outside the neurogenic regions. Journal of Neuroscience. 37 (17), 4493-4507 (2017).
  8. Manuel, M. N., Mi, D., Mason, J. O., Price, D. J. Regulation of cerebral cortical neurogenesis by the Pax6 transcription factor. Frontiers in Cellular Neuroscience. 9, 70 (2015).
  9. Sakurai, K., Osumi, N. The neurogenesis-controlling factor, Pax6, inhibits proliferation and promotes maturation in murine astrocytes. Journal of Neuroscience. 28 (18), 4604-4612 (2008).
  10. Zhong, S., et al. Decoding the development of the human hippocampus. Nature. 577 (7791), 531-536 (2020).
  11. Pollen, A., et al. Molecular identity of human outer radial glia during cortical development. Cell. 163 (1), 55-67 (2015).
  12. Cvekl, A., Callaerts, P. PAX6: 25th anniversary and more to learn. Experimental Eye Research. 156, 10-21 (2017).
  13. Goc, J., Liu, J. Y., Sisodiya, S. M., Thom, M. A spatiotemporal study of gliosis in relation to depth electrode tracks in drug-resistant epilepsy. European Journal of Neuroscience. 39 (12), 2151-2162 (2014).
  14. Monoranu, C. M., et al. pH measurement as quality control on human post mortem brain tissue: a study of the BrainNet Europe consortium. Neuropathology and Applied Neurobiology. 35 (3), 329-337 (2009).
  15. Ninkovic, J., et al. The transcription factor Pax6 regulates survival of dopaminergic olfactory bulb neurons via crystallin αA. Neuron. 68 (4), 682-694 (2010).

Play Video

Cite This Article
Mussa, Z., Tome-Garcia, J., Jiang, Y., Akbarian, S., Tsankova, N. M. Isolation of Adult Human Astrocyte Populations from Fresh-Frozen Cortex Using Fluorescence-Activated Nuclei Sorting. J. Vis. Exp. (170), e62405, doi:10.3791/62405 (2021).

View Video