Sobre la base de una matriz peptídica derivada del virus de la hepatitis B (VHB), las respuestas de las células T CD4 específicas del VHB podrían evaluarse en paralelo con la identificación de epítopos de células T CD4 específicas del VHB.
Las células T CD4 juegan un papel importante en la patogénesis de la hepatitis B crónica. Como población celular versátil, las células T CD4 se han clasificado como subconjuntos funcionales distintos en función de las citoquinas que secretaron: por ejemplo, IFN-γ para las células CD4 T helper 1, IL-4 e IL-13 para las células CD4 T helper 2, IL-21 para las células auxiliares foliculares CD4 T y LA IL-17 para las células CD4 T helper 17. El análisis de las células T CD4 específicas del virus de la hepatitis B (VHB) basadas en la secreción de citoquinas después de la estimulación de péptidos derivados del VHB podría proporcionar información no solo sobre la magnitud de la respuesta de las células T CD4 específicas del VHB, sino también sobre los subconjuntos funcionales de las células T CD4 específicas del VHB. Los enfoques novedosos, como la transcriptómica y el análisis metabolómico, podrían proporcionar información funcional más detallada sobre las células T CD4 específicas del VHB. Estos enfoques generalmente requieren el aislamiento de células T CD4 viables específicas del VHB basadas en multómeros del complejo II de histocompatibilidad mayor peptídico, mientras que actualmente la información sobre los epítopos de células T CD4 específicas del VHB es limitada. Sobre la base de una matriz peptídica derivada del VHB, se ha desarrollado un método para evaluar las respuestas de las células T CD4 específicas del VHB e identificar epítopos de células T CD4 específicas del VHB simultáneamente utilizando muestras de células mononucleares de sangre periférica de pacientes con infección crónica por VHB.
Actualmente, hay 3 enfoques principales para analizar las células T específicas del antígeno. El primer enfoque se basa en la interacción entre el receptor de células T y el péptido (epítopo). Las células T específicas del antígeno podrían teñirse directamente con multómeros del complejo de histocompatibilidad peptídico mayor (MHC). La ventaja de este método es que podría obtener células T viables específicas de antígenos, adecuadas para el análisis transcriptómico / metabolómico posterior. Una limitación de este método es que no pudo proporcionar información sobre toda la respuesta de las células T a un antígeno específico, ya que requiere péptidos de epítopo validados, mientras que el número de epítopos identificados para un antígeno específico es limitado por ahora. En comparación con los epítopos de células T CD8 específicos del virus de la hepatitis B (VHB), se han identificado menos epítopos de células T CD4 específicos del VHB1,2, lo que hizo que este método fuera menos aplicable para el análisis de células T CD4 específicas del VHB actualmente.
El segundo enfoque se basa en la regulación al alza de una serie de marcadores inducidos por activación después de la estimulación peptídica del antígeno3. Los marcadores comúnmente utilizados incluyen CD69, CD25, OX40, CD40L, PD-L1, 4-1BB4. Este método se ha utilizado ahora para analizar las respuestas de células T específicas de antígenos en individuos vacunados5,6,pacientes con infección por el virus de la inmunodeficiencia humana7y pacientes con infección por coronavirus 2 del síndrome respiratorio agudo severo8,9. A diferencia del ensayo basado en multómeros péptidos-MHC, este método no está restringido por epítopos validados y podría obtener células viables para el análisis posterior. Una limitación de este método es que no pudo proporcionar información sobre el perfil de citoquinas de las células T específicas del antígeno. Además, la expresión de estos marcadores inducidos por la activación por algunas células no específicas de antígeno activado podría contribuir a las señales de fondo en el análisis, lo que podría ser un problema, especialmente cuando las células T específicas del antígeno objetivo son raras. Actualmente, existe una aplicación limitada de este método en las células T CD4 específicas delVHB 4. Si este método podría utilizarse para analizar las células T CD4 específicas del VHB de una manera confiable necesita más investigación.
El tercer enfoque se basa en la secreción de citoquinas después de la estimulación del péptido antígeno. Al igual que el análisis basado en marcadores inducidos por activación, este método no está restringido por epítopos validados. Este método podría revelar directamente el perfil de citoquinas de las células T específicas del antígeno. La sensibilidad de este método es menor que el método basado en marcadores inducidos por activación, ya que se basa en la secreción de citoquinas de células T específicas de antígenos y el número de citoquinas analizadas suele ser limitado. Actualmente, este método es ampliamente utilizado en el análisis de células T específicas del VHB. Como las células T específicas del VHB secretas de citoquinas difícilmente podrían detectarse mediante la estimulación directa del péptido ex vivo10,11, el perfil de citoquinas de las células T específicas del VHB generalmente se analiza después de 10 días de expansión estimulada por péptidos in vitro12,13,14,15,16. La disposición de grupos de péptidos en forma de matriz se ha utilizado para facilitar la identificación de epítopos específicos de antígenos17,18. Con la combinación de la matriz peptídica y el análisis de secreción de citoquinas, se ha desarrollado un método para evaluar las respuestas de las células T CD4 específicas del VHB e identificar los epítopos de células T CD4 específicas del VHB simultáneamente16. En este protocolo, se describen los detalles de este método. El antígeno central del VHB se elige como ejemplo de demostración en este protocolo.
Los pasos más críticos en este protocolo se enumeran a continuación: 1) suficientes PBMC de alta viabilidad para iniciar la expansión de PBMCs; 2) entorno apropiado para la expansión de pbMC; y 3) eliminación completa de grupos de péptidos residuales en cultivo de PBMC antes de la identificación del epítopo.
Todo el análisis en este protocolo depende de la proliferación robusta de células T CD4. En general, el número de PBMC después de la expansión de 10 días será de 2 a 3 vec…
The authors have nothing to disclose.
Este trabajo fue apoyado por la Fundación Nacional de Ciencias Naturales de China (81930061), la Fundación de Ciencias Naturales de Chongqing (cstc2019jcyj-bshX0039, cstc2019jcyj-zdxmX0004) y Chinese Key
Proyecto Especializado en Enfermedades Infecciosas (2018ZX10723203).
Albumin Bovine V (BSA) | Beyotime | ST023 | |
APC-conjugated Anti-human TNF-α | eBioscience | 17-7349-82 | Keep protected from light |
Benzonase Nuclease | Sigma-Aldrich | E1014 | Limit cell clumping |
B lymphoblastoid cell lines (BLCLs) | FRED HUTCHINSON CANCER RESEARCH CENTER | IHW09126 | HLA-DRB1*0803 homozygote |
B lymphoblastoid cell lines (BLCLs) | FRED HUTCHINSON CANCER RESEARCH CENTER | IHW09121 | HLA-DRB1*1202 homozygote |
Cell Culture Flask (T75) | Corning | 430641 | |
Cell Culture Plate (96-well, flat bottom) | Corning | 3599 | Flat bottom |
Cell Culture Plate (96-well, round bottom) | Corning | 3799 | Round bottom |
Cell Strainer | Corning | CLS431751 | Pore size 70 μm, white, sterile |
Centrifuge Tube (15 mL) | KIRGEN | KG2611 | Sterile |
Centrifuge Tube (50 mL) | Corning | 430829 | Sterile |
Centrifuge, Refrigerated | Eppendorf | 5804R | |
Centrifuge, Refrigerated | Thermo | ST16R | |
Centrifuge, Refrigerated | Thermo | Legend Micro 21R | |
Cytofix/Cytoperm Kit (Transcription Factor Buffer Set) | BD Biosciences | 562574 | Prepare solution before use |
Dimethyl Sulfoxide (DMSO) | Sigma-Aldrich | D2650 | Keep at room temperature to prevent crystallization |
Dulbecco’s Phosphate Buffered Saline | Prepare ddH2O (1000 ml) containing NaCl (8000 mg), KCl (200 mg), KH2PO4 (200 mg), and Na2HPO4.7H2O (2160 mg). Adjust PH to 7.4. Sterilize through autoclave. | ||
Ficoll-Paque Premium | GE Healthcare | 17-5442-03 | |
Filter Tips (0.5-10) | Kirgen | KG5131 | Sterile |
Filter Tips (100-1000) | Kirgen | KG5333 | Sterile |
Filter Tips (1-200) | Kirgen | KG5233 | Sterile |
FITC-conjugated Anti-human CD4 | BioLegend | 300506 | Keep protected from light |
Fixable Viability Dye eFluor780 | eBioscience | 65-0865-14 | Keep protected from light |
GolgiStop Protein Transport Inhibitor (Containing Monensin) | BD Biosciences | 554724 | Protein Transport Inhibitor |
Haemocytometer | Brand | 718620 | |
HBV Core Antigen Derived Peptides | ChinaPeptides | ||
HEPES | Gibco | 15630080 | 100 ml |
Human Serum AB | Gemini Bio-Products | 100-51 | 100 ml |
Ionomycin | Sigma-Aldrich | I0634 | |
KCl | Sangon Biotech | A100395-0500 | |
KH2PO4 | Sangon Biotech | A100781-0500 | |
LSRFortessa Flow Cytometer | BD | ||
L-glutamine | Gibco | 25030081 | 100 ml |
Microcentrifuge Tube (1.5 mL) | Corning | MCT-150-C | Autoclaved sterilization before using |
Microplate Shakers | Scientific Industries | MicroPlate Genie | |
Mitomycin C | Roche | 10107409001 | |
Na2HPO4.7H2O | Sangon Biotech | A100348-0500 | |
NaCl | Sangon Biotech | A100241-0500 | |
PCR Tubes (0.2 mL) | Kirgen | KG2331 | |
PE/Cy7-conjugated Anti-human CD8 | BioLegend | 300914 | Keep protected from light |
PE-conjugated Anti-human IFN-γ | eBioscience | 12-7319-42 | Keep protected from light |
Penicillin Streptomycin | Gibco | 15140122 | 100 ml |
PerCP-Cy5.5-conjugated Anti-human CD3 | eBioscience | 45-0037-42 | Keep protected from light |
Phorbol 12-myristate 13-acetate (PMA) | Sigma-Aldrich | P1585 | |
Recombinant Human IL-2 | PeproTech | 200-02 | |
Recombinant Human IL-7 | PeproTech | 200-07 | |
RPMI Medium 1640 | Gibco | C11875500BT | 500 ml |
Sodium pyruvate,100mM | Gibco | 15360070 | |
Trypan Blue Stain (0.4%) | Gibco | 15250-061 | |
Ultra-LEAF Purified Anti-human HLA-DR | BioLegend | 307648 | |
Wizard Genomic DNA Purification Kit | Promega | A1125 |