כאן אנו מציגים שיטה להרחבת ההרג הטבעי של הדם ההיקפי (PBNK), תאי NK מרקמות הכבד, ותאי קולטן אנטיגן כימרי (CAR)-NK שמקורם בתאי דם חד-גרעיניים היקפיים (PBMCs) או דם טבורי (CB). פרוטוקול זה מדגים את התרחבותם של תאי NK ו-CAR-NK באמצעות תאי הזנה של 221-mIL-21 בנוסף לטוהר הממוטב של תאי NK מורחבים.
טיפול בתאי חיסון שעברו שינוי בקולטן אנטיגן כימרי (CAR) הפך לטיפול מתפתח בסרטן ובמחלות זיהומיות. אימונותרפיה מבוססת NK, במיוחד תאי CAR-NK, היא אחד מפיתוחי ה”מדף” המבטיחים ביותר ללא רעילות מסכנת חיים חמורה. עם זאת, צוואר הבקבוק לפיתוח טיפול מוצלח ב-CAR-NK הוא השגת מספר מספיק של תאי CAR-NK לא ממצים, בעלי תוחלת חיים ארוכה, ‘מהמדף’ מצד שלישי. כאן, פיתחנו שיטת הרחבה חדשה של CAR-NK באמצעות קו תאי B שעבר טרנספורמציה של נגיף אפשטיין-בר (EBV) המבטא צורת קרום מהונדסת גנטית של אינטרלוקין-21 (IL-21). בפרוטוקול זה ניתנים נהלים שלב אחר שלב להרחבת תאי NK ו- CAR-NK מדם טבורי ודם היקפי, כמו גם מרקמות איברים מוצקות. עבודה זו תשפר באופן משמעותי את הפיתוח הקליני של אימונותרפיה CAR-NK.
תאי הרג טבעי (NK) הם תת-קבוצה חשובה של לימפוציטים המבטאים CD56 וחסרים ביטוי של סמן תאי T, CD3 1,2. תאי NK קונבנציונליים מסווגים כתאי חיסון מולדים האחראים על חיסוניות של תאים נגועים ויראליים ותאים סרטניים. שלא כמו תאי T, תאי NK מזהים תאים נגועים או ממאירים באמצעות CD16 או קולטנים מפעילים אחרים ואינם דורשים היווצרות של קומפלקס בין פפטידי אנטיגן לבין מולקולות קומפלקס היסטו-תאימות גדולות (MHC) מסוג I 3,4. מחקרים קליניים אחרונים שהשתמשו בתאי קולטן אנטיגן כימרי (CAR)-NK לטיפול בסרטן חיובי ל-CD19 חוזר או עקשן (לימפומה שאינה הודג’קין או לוקמיה לימפוציטית כרונית [CLL]) הראו את יתרונות הבטיחות יוצאי הדופן של תאי CAR-NK5. לדוגמה, עירוי תאי CAR-NK קשור להשתלה מינימלית או זניחה לעומת מחלת מארח (GVHD), רעילות עצבית, קרדיוטוקסיות ותסמונת שחרור ציטוקינים (CRS)6,7,8,9,10. עם זאת, שיטות קונבנציונליות להרחבת תאי NK אנושיים הראו פנוטיפים ממצים עם הרג אחווה חזק ומחסור בטלומרים, מה שמציב אתגר גדול בהשגת מספר מספיק של תאי NK פונקציונליים לאימונותרפיה מאמצת11.
כדי להתגבר על אתגרים אלה, פותחה שיטה להרחבת תאי NK ראשוניים ישירות מתאים חד-גרעיניים של דם היקפי לא מופרד (PBMCs) או דם טבורי (CB) באמצעות קו תאים מוקרן ומהונדס גנטית 721.221 (להלן, 221), קו תאי B-לימפובלסטואיד אנושי עם ביטוי נמוך של מולקולות MHC מסוג I3. מחקרים קודמים הראו את החשיבות של IL-21 בהרחבת תאי NK; לפיכך, IL-21 מהונדס גנטית המבטא גרסה של קו התאים 721.221 (החל מעכשיו, 221-mIL-21) פותח 11,12,13,14,15. התוצאות הראו כי 221-mIL-21 תאי NK ראשוניים מורחבים הורחבו לממוצע של >פי 40,000 עם טוהר תאי NK גבוה מתמשך במשך כ-2-3 שבועות. מידע נוסף לגבי היישום של פרוטוקול זה ניתן למצוא ב Yang et al.16.
פרוטוקול זה נועד להדגים את ההליך שלב אחר שלב של ההרחבה החדשנית של PBNK, CBNK, NK שמקורו ברקמות, ותאי CAR-NK ex vivo.
רוב מוצרי CAR-NK הנוכחיים בניסויים קליניים משתמשים בקווי תאי NK 17, כגון NK-92, קו תאים שבודד מחולה לימפומה שאינו הודג’קין18, NK-92MI, IL-2 עצמאי NK-92 קו תאים19, ו- NKL, מבודד מחולה לימפוציטים גרעיניים גדול20, מכיוון שקווי תאים אלה מתרבים בקלות עבור מוצרי ‘מדף’. עם זאת, קווי תאים אלה, למשל תאי NK-92, הם בעלי יעילות קלינית שולית והתרחבות in vivo, מכיוון שהם דורשים הקרנה לפני העירוי, ובכך מגבילים את התפשטותם ואת ציטוטוקסיותם in vivo21. בהתחשב בסיבות אלה, אסטרטגיות שונות נבחנות כיום להרחבת תאי NK ראשוניים ממספר מקורות, כולל דם היקפי, CB, מח עצם (BM), תאי גזע עובריים אנושיים (HSCs), תאי גזע פלוריפוטנטיים מושרים (iPSCs) ורקמות גידול 21,22,23. לדוגמה, ניתן להרחיב את תאי ה-NK באמצעות אינטרלוקינים הכוללים IL-15, IL-18 ו-IL-21. קווי תאים לימפובלסטואידיים כגון תאי K562 או קווי תאי לימפובלסטואיד שעברו טרנספורמציה של וירוס אפשטיין-בר כגון 721.221 תאים, משמשים גם להרחבת תאי NK16. עם זאת, האסטרטגיות הנ”ל יוצרות לעתים קרובות מספר לא מספיק של תאי NK להעברה מאמצת של אימונותרפיה CAR-NK22,24. כדי לסייע בפתרון הבעיה, המחקר כאן מראה פרוטוקול להרחבת תא ex vivo NK באמצעות קו תאים מותמר EBV מהונדס גנטית, 221-mIL-21 תאים מזינים.
מתודולוגיית ההרחבה באמצעות תאי הזנה 221-mIL-21 המוצגת בפרוטוקול זה ממוטבת להרחבת תאי NK עם קצב התפשטות של לפחות פי 10 עד פי 100 מקווי תאי לוקמיה אחרים, כולל HL-60 ו- OCl-AML3 המבטאים ממברנה IL-21, K562 ו- K652-mIL21 המבטאים ליגנדOX40 22,24,25. ביטוי CAR מוערך גם במשך כשבועיים ex vivo. באופן משמעותי יותר, ניתן ליישם את אסטרטגיית הרחבת תאי ההזנה של 221-mIL-21 כדי להרחיב תאי NK ממקורות שונים, כולל PBMCs, CB ואיברים מוצקים כגון הכבד, ללא שלב העשרת NK ראשוני. למרות שמערכת ההזנה 221-mIL-21 אינה תלויה בתורמים כמו קווי תאי ההזנה שהוזכרו לעיל, היא אינה עצמאית לחלוטין מתורמים. בממוצע, מערכת ההרחבה של 221-mIL-21 יכולה להשיג 90% מטוהר תאי NK עם מספר תאי NK גבוה, עם כ-<5% מזיהום תאי T ביום 14 לאחר ההתרחבות. לכן, כדי למנוע את האפשרויות של זיהום תאי T, יש צורך לבודד תאי NK מדגימות שהתקבלו לפני הרחבת ex vivo או להשתמש במערכת בחירה CD3+ כדי לחסל תאי T לאחר הרחבת ex vivo.
אחת הביקורות בשימוש במערכת הרחבת תאי NK היא שייתכן שתאי ההזנה לא חוסלו לחלוטין לאחר ההרחבה או לפני עירוי, מה שעשוי להיות בעל חששות רגולטוריים משמעותיים; לכן, חיסול מוחלט של תאים מזינים לפני עירוי הוא חיוני. עם זאת, ניסויים קליניים אחרונים של CAR-NK בהם נעשה שימוש בתאי הזנה K562-mIL21-4-1BBL להרחבת תאי ex vivo CBNK24,25 לא הראו סיבוכים מדאיגים. יתר על כן, הנתונים הראשוניים שלנו הראו ירידה הדרגתית של אוכלוסיית 221-mIL-21 המוקרנת ככל שההתרחבות התקדמה (נתונים לא מוצגים). עם זאת, נדרשים מחקרים מקיפים יותר כדי ששיטת הרחבה זו תיושם במסגרת קלינית. באופן קולקטיבי, מערכת ההרחבה 221-mIL-21 מסייעת לפתור את האתגר של הרחבת תאי CAR-NK ראשוניים, ולכן תתרום באופן משמעותי לשימוש נרחב יותר באימונותרפיה מבוססת תאי CAR-NK בעתיד הקרוב.
The authors have nothing to disclose.
ברצוננו להודות לחברי מעבדת ליו (ד”ר הסיאנג-צ’י טסנג, ד”ר שונינג וואנג וד”ר צ’יה-הסיונג צ’ן) על הערותיהם על כתבי היד. ברצוננו להודות לד”ר ג’אנפיטרו דוטי על וקטורי ה-SFG ולד”ר אריק לונג על 721.221 התאים. עבודה זו נתמכה בחלקה מ- HL125018 (D. Liu), AI124769 (D. Liu), AI129594 (D. Liu), AI130197 (D. Liu) ו- Rutgers-Health Advance Funding (תוכנית NIH REACH), U01HL150852 (R. Panettieri, S. Libutti ו- R. Pasqualini), S10OD025182 (D. Liu), ומימון סטארט-אפ של בית הספר לרפואה של אוניברסיטת ראטגרס-ניו ג’רזי עבור מעבדת D. Liu.
100 mm surface treated sterile tissue culture dishes | VWR | 10062-880 | For transfection |
293T cells | ATCC | CRL-3216 | For transfection |
6-well G-REX plate | Wilson Wolf | 80240M | For NK cell expansion |
AF647-conjugated AffiniPure F(ab')2 fragment goat anti-human IgG (H+L) | Jackson ImmunoResearch | 109-606-088 | For flow cytometry |
CAR construct in SFG vector | Generated in Dr. Dongfang Liu's lab | For transfection | |
Collagenase IV | Sigma | C4-22-1G | For TILs isolation |
Cryopreserve media Ingredient: Fetal Bovine Serum (FBS) |
Corning | 35-010-CV | 90% |
Cryopreserve media Ingredient: Dimethyl sulfoxide (DMSO) |
Sigma | D2050 | 10% |
D-10 media Ingredient: DMEM |
VWR | 45000-304 | |
D-10 media Ingredient: Fetal Bovine Serum (FBS) |
Corning | 35-010-CV | 10% |
D-10 media Ingredient: Penicillin Streptomycin |
VWR | 45000-652 | 1% |
FastFlow & Low Binding Millipore Express PES Membrane | Millex | SLHPR33RB | For transduction |
Genejuice transfection reagent | VWR | 80611-356 | For transfection |
gentleMACS C-tubes | Miltenyi Biotec | 130-093-237 | For TILs isolation |
gentleMACS Octo | Miltenyi Biotec | Quote | For TILs isolation |
Hank's Balanced Salt Solution (HBSS – w/o calcium or magnesium) | ThermoFisher | 14170120 | For TILs isolation |
Human IL-15 | Peprotech | 200-15 | For NK cell expansion |
Human IL-2 | Peprotech | 200-02 | For NK cell expansion |
Irradiated 221-mIL21 feeder cells | Generated in Dr. Dongfang Liu's lab | Frozen in cryopreserve media | |
Lymphocyte Separation Media | Corning | 25-072-CV | For TILs isolation |
OPTI-MEM | ThermoFisher | 31895 | For transfection |
PE anti-human CD3 clone HIT3a | Biolegend | 300308 | For flow cytometry |
PE/Cy7 anti-human CD56 (NCAM) clone 5.1H11 | BioLegend | 362509 | For flow cytometry |
Pegpam3 plasmid | Generated in Dr. Dongfang Liu's lab | For transfection | |
Percoll | GE Healthcare | 17089101 | For TILs isolation |
Peripheral blood mononuclear cells (PBMCs) | New York Blood Center | Isolated from plasma of healthy donors, frozen in cryopreserve media | |
Phosphate Buffer Saline (PBS) | Corning | 21-040-CV | For transduction |
pRDF plasmid | Generated in Dr. Dongfang Liu's lab | For transfection | |
R-10 media Ingredients: RPMI 1640 |
VWR | 45000-404 | |
R-10 media Ingredient: L-glutamine |
VWR | 45000-304 | 1% |
R-10 media Ingredient: Penicillin Streptomycin |
VWR | 45000-652 | 1% |
R-10 media Ingredient: Fetal Bovine Serum (FBS) |
Corning | 35-010-CV | 10% |
Retronectin | Generated in Dr. Dongfang Liu's lab | home-made | For transduction |
Trypan Blue | Corning | 25-900-Cl | For cell counting |
Untreated 24-well plate | Fisher Scientific | 13-690-071 | For transduction |