Bu protokol, kriyo yapısına sahip aydınlatma mikroskopisi kullanılarak biyolojik kriyo ile korunmuş örneklerin nasıl görüntülenerek görüntülenlerin ortaya koyduğunu göstermektedir. U2OS hücrelerinin sitoskeletonlarını görüntüleyerek metodolojiyi gösteriyoruz.
Üç boyutlu (3D) yapılandırılmış aydınlatma mikroskopisi (SIM), floresan etiketli hücresel yapıların geleneksel floresan mikroskopiden daha yüksek çözünürlükte görüntülenmesini sağlar. Bu süper çözünürlüklü (SR) teknik, tüm hücrelerdeki moleküler süreçlerin görselleştirilmesini sağlar ve yapısal ve fonksiyonel bilgileri ilişkilendirmek için elektron mikroskopisi ve X-ışını tomografisi ile birlikte kullanılma potansiyeline sahiptir. Kriyogenik olarak korunmuş örnekler (cryoSIM) için bir SIM mikroskobu yakın zamanda İngiltere senkrotronunda B24 korelatif kriyo görüntüleme kiriş hattında devreye alınmıştır.
Kriyojenik sıcaklıklarda biyolojik örneklerin kriyo-yumuşak X-ışını tomografisi gibi X-ışını mikroskopi yöntemleri ile aynı örneklerin sonraki görüntülemesine uyumlu bir şekilde 3D görüntülenmesi için özel olarak tasarlanmıştır. Bu video makalesi, cryoSIM kullanarak başarılı görüntüleme için ayrıntılı yöntemler ve protokoller sağlar. CryoSIM mikroskopunun çalışmasına ilişkin talimatlara ek olarak, numunelerin, floroforların ve parametre ayarlarının seçimi ile ilgili öneriler de eklenmiştir. Protokol, mitokondri ve tubulin floresan olarak etiketlenmiş U2OS hücre örneklerinde gösterilmiştir.
SR görüntüleme teknikleri son on yılda biyologlar tarafından yaygın olarak erişilebilir hale gelmiştir1. Floresan etiketli örneklerin kırınım sınırının ötesinde yüksek çözünürlüklü görüntülenmesine izin verirler. Bununla birlikte, SR mikroskopi yöntemlerini kriyojenik sıcaklıklarda örneklerle çalışacak şekilde uyarlamak zor olmuştur2. Bu, elektron veya X-ışını tomografisi ile birlikte korelatif görüntüleme için avantajlı olacaktır. Son zamanlarda, SIM kriyojenik örneklerle kullanılmak üzere uyarlanmıştır ve Diamond Light Source Synchrotron’daki (https://www.diamond.ac.uk/Instruments/Biological-Cryo-Imaging/B24.html) korelatif kriyo görüntüleme kiriş çizgisi B24’te yumuşak X-ışını tomografisi (SXT)3 ile birlikte biyolojik hücrelerin korelatif çalışmalarını sağladığı başarıyla gösterilmiştir. SIM, numuneyi çizgili ışık desenleriyle (Moiré saçakları) üç açıda ve beş aşamada aydınlatarak geleneksel geniş alan mikroskopisinin çözünürlüğünü iki katına çıkarır. Bu ışık desenleri ve örnek floresan arasındaki parazit, alt kırınım yapıları4,5hakkında ek bilgileri hesaplamalı olarak ortaya çıkarmak için kullanılabilir.
Sim’in kriyojenik uygulamalar için diğer SR tekniklerine göre çeşitli avantajları vardır. İlk olarak, özel olarak tasarlanmış yanıp sönen floroforlar olmadan çalışabilir; geleneksel floresanlar kullanılabilir, daha geniş bir potansiyel floresan etiketleme ajanlarına erişim sağlar6. Buna ek olarak, z dilimi başına sadece 15 görüntü gerektirir (3D olarak; 2D için 9 görüntü), diğer SR yöntemleri ise dilim başına yaklaşık 1000 görüntü alır, örneğin ısıtılma şansını artırır ve bu nedenle eserlere neden olabilecek buz kristali oluşum riskini artırır. Son olarak, bu teknik 10 μm’nin üzerindeki daha kalın biyolojik örnekleri görüntüleyebilir ve tüm hücrelerin neredeyse yerel durumlarında görüntülenebilir6. CryoSIM, standart optik bileşenler kullanılarak ve görüntüleme için açık erişim yazılımı ile üretilmiştir, bu da istenirse belgelemeyi ve çoğaltmayı kolaylaştırır6. CryoSIM’in 100x/0.9 sayısal diyafram hedefi vardır (Bkz. Malzeme Tablosu); Optik bileşenleri, tasarım parametreleri ve performansı hakkında daha fazla bilgi Phillips ve ark.6 tarafından açıklanmıştır.
Kriyojenik sıcaklıklarda 3D SIM, vitrifiye biyolojik materyal görüntüleme için diğer SR görüntüleme tekniklerine göre birçok avantaja sahiptir. Diğer SR yöntemlerine kıyasla z dilimi başına önemli ölçüde daha az görüntü gerektirir, bu da daha az ışınlama ve vitrifiye numuneler için daha düşük buz kristali oluşumu şansı ile sonuçlanır. Ayrıca tüm hücreleri görüntüleyebilir ve yapıyı işlevle eşleştirmek için X-ışını tomografisi ile ilişkilendirilebilir. İlginçtir ki, piyasada bulunan çoğu florofor ve floresan etiketi, kriyojenik koşullar altında oda sıcaklığına göre daha az ağartıcıdır. Bununla birlikte, oda sıcaklığında en yaygın floroforların yüksek kuantum verimi göz önüne alındığında (bazı durumlarda% 80’den fazla), fotonlarda tespit edilen mutlak kazanç kuantum verimlerindeki değişikliklerden değil, karmaşık ağartma işlemlerindeki azalmadan kaynaklanmaktadır. Kriyojenik sıcaklıklarda floroforların verimi hakkında daha fazla bilgi 8.
CryoSIM’e ulaşan örneklerin, daha fazla görüntüleme için tüm potansiyel AOI’lerin vurgulanması içeren bir ızgara “haritası” üretmek için brightfield yeteneğine sahip geleneksel bir kriyolüoresans mikroskobu kullanılarak önceden haritalanmış olması önemlidir (Şekil 5). CryoSIM’deki erişim süresi, daha sonra teknik fizibilite ve biyomedikal etki için değerlendirilen bir teklifin sunulmasını içeren rekabetçi bir süreçle tahsis edilir. Bu nedenle, ekipmandaki zaman her zaman “premium” dır ve önceden eşlenmiş ızgaralar bir tahsisatın en verimli şekilde kullanılmasına izin verir. Buz kristallerinin oluşumunu ve daha sonraki numune hasarını en aza indirmek için numunenin özellikle numune tutucudan görüntüleme platformuna numune transferi sırasında vitrifiye edilmesi de esastır. Örnek, en iyi SIM görüntülerini üretmek için iyi kalitede olmalıdır. İyi hazırlanmış bir örnek aşağıdaki özelliklerle karakterize edilecektir: (a) buz kristali kirlenmesi olmayacak, (b) kullanılan ızgara bir bulucu ızgara olacak, (c) taşıyıcı düz olacak, (d) ızgara örgüsü ve substrat yüzeyi otomatik floresan olmayacak ve (e) destek zarında kırılma olmayacaktır. Bu önkoşullar, dikkatli numune kullanımı ve numunelerin her zaman vitrifiye kalmasını sağlayarak elde edilebilir.
Önerilen örnek floroforların kriyoSIM mikroskopunda yeterli sinyal verip vermeyeceğini önceden kontrol etmek önemlidir. SPEKCheck9 gibi araçlar, en uygun florofor ve filtre kombinasyonlarını seçmeye yardımcı olabilir. Ham veri toplama veya yeniden yapılandırma işlemiyle ilgili sorunlar varsa, yeniden yapılandırmadan sonra görüntülerde eserler görünebilir. Çeşitli eserlere örnekler Demmerle ve ark.10 Yeniden yapılandırma özet dosyasını açarak yeniden yapılandırma en uygun değilse, görüntü yeniden yapılandırma parametreleri SoftWoRx günlük dosyasında gözden geçirilebilir. Belirli bir kanaldaki açılar arasında tutarlı çizgi aralığı ve nispeten tutarlı genlik olmalıdır. %30’dan fazla değişim ve 1’in üzerindeki değerler (boncuk boyutu telafisi uygulanırsa) daha yakından araştırılmalı ve başarısız rekonstrüksiyonları göstermesi muhtemeldir. Buna ek olarak, Fiji’deki SIMcheck2 yazılımı, görüntüleme veya rekonstrüksiyon parametresi ayarlarındaki hataların nedenini teşhis etmek için ham ve yeniden yapılandırılmış veriler üzerinde çeşitli kontroller yapmak için de kullanılabilir. SIM kontrolü ve modülasyon kontrast haritası, bir görüntünün hangi alanlarının eserlere karşı gerçek yapılar olabileceğini yorumlayarak yeniden yapılandırılmış verilerin kalitesinin değerlendirilmesine de yardımcı olabilir.
Nükleer alan içindeki düşük modülasyon kontrastı (koyu renkle, Şekil 5E’degösterilmiştir), bu bölgenin yeniden yapılanma eserlerine daha duyarlı olacağı anlamına gelir, bu nedenle çekirdekte gösterilen karma desenlerin bir eser olarak sınıflandırılabileceğini ima eder (Şekil 5D). Güçlü floresan sinyal alanlarının işlenen verilerdeki yerel yapıları doğru bir şekilde yansıtma olasılığı daha yüksektir. Floroforların bir vezikülün toplam yüzeyi gibi daha geniş alanlara dağıtıldığı zayıf sinyal alanlarında, gerçek sinyalin işleme eserleriyle bir arada olması muhtemeldir ve bu verilerin yorumlanmasında dikkatli olunmalıdır. Garip eserler olmadığından ve arka planın genellikle Gauss’lu olduğundan ve sıfıra yakın ortalandığından emin olmak için tam aralıkta yeniden yapılandırılmış verilerin incelenmesinden sonra, veriler genellikle sıfıra kırpılır veya kalıcı değer-arka plan sinyalinin zirvesi-sıfıra çok yakın olmalıdır. Bu, görüntülenen görüntünün dinamik aralığının negatif arka plan yapıtları tarafından baskın olmamasını sağlar. Daha zayıf bir sinyal beklendiğinde, özelliklerin analiz edilmesi ve yeniden inşa eserleri yerine gerçek yapılar olmalarının sağlanmasında ekstra özen verilmelidir.
Görüntüleme sisteminin bazı sınırlamaları vardır. Örnek aşama düz olduğundan, değişken kalınlıklı numuneler veya düz olmayan ızgaralar görüntüleme için ideal denekler değildir. Ayrıca, korelatif görüntüleme yumuşak X-ışını tomografisi kullanılarak yapılacaksa, eğim serisi alımı sırasında X-ışını mikroskopunda görünmeyeceği için ızgara sınırlarına yakın hücreler görüntülenmemelidir. Son olarak, dalma dondurmadan önce numunenin şişirme miktarı görüntüleme kalitesi üzerinde önemli bir etkiye sahiptir; çok az şişkinlik, çok kalın olan örneklerle sonuçlanır, yüksek arka plan gürültüsü ile düşük SIM görüntüler verirken, çok fazla şişkinlik hücrelerin yanlış şekil görmesine ve bu nedenle olay lazer ışınından kaynaklanan ısı hasarına daha duyarlı olmasına neden olabilir. Özetle, cryoSIM biyolojik örneklerin 3D olarak neredeyse yerli bir aşamada görüntülenmesi için güçlü bir floresan mikroskopi aracıdır ve birçok alanda geniş kapsamlı uygulamalara sahiptir.
The authors have nothing to disclose.
Bu proje Avrupa Komisyonu Horizon 2020 iNEXT-Discovery projesinden finansman almıştır. I.M. Dobbie, Wellcome Trust’tan (107457/Z/15/Z) fon sağladığımı kabul ediyor. Bu çalışma Elmas Işık Kaynağı, enstrüman B24 (bi25512 önerisi) desteği ile gerçekleştirildi. Micron personeline ve tüm mükemmel kullanıcılarımıza ve işbirlikçilerimize cryoSIM’i ve korelatif potansiyelini oluşturmamıza yardımcı olduğu için teşekkür ederiz.
Auto grids | FEI | ||
Autogrids | Thermo Fisher Scientific | 1036173 | |
BioTracker 488 Green Microtubule Cytoskeleton Dye | Sigma-Aldrich | SCT142 | |
Cockpit Software | Oxford University | https://github.com/MicronOxford/cockpit | |
cryo compatible polyurethane container | Jena bioscience | CC-FD-800 | |
Cryo TEM grid storage box | Thermo Fisher Scientific | Model#AutoGrid | |
cryo-SIM microscope | Custom made | N/A | Custom made, see following reference for the design: Michael A. Phillips, Maria Harkiolaki, David Miguel Susano Pinto, Richard M. Parton, Ana Palanca, Manuel Garcia-Moreno, Ilias Kounatidis, John W. Sedat, David I. Stuart, Alfredo Castello, Martin J. Booth, Ilan Davis, and Ian M. Dobbie, "CryoSIM: super-resolution 3D structured illumination cryogenic fluorescence microscopy for correlated ultrastructural imaging," Optica 7, 802-812 (2020). Has a Nikon TU Plan Apo 100x/0.9 NA. |
Cryostage system | Linkam Scientific Instruments | CMS196 | |
Fine tip surgical forceps | Ted Pella | 38125 | |
MitoTracker Deep Red FM | Thermo Fisher Scientific | M22426 | |
Python Microscope Software | Oxford University | https://www.python-microscope.org/ | |
Scientific dry paper wipes | Kimberly-Clark 7551 | 2 | |
SIM Reconstruction Software | softWoRx, GE Healthcare | Version 6.5.2 | |
StitchM Software | Diamond Light Source | https://github.com/DiamondLightSource/StitchM | |
TEM grids for samples | Quantifoil Micro Tools | G200F1 |