פרוטוקול זה מדגים כיצד לדמיין דגימות ביולוגיות שנשמרו על ידי קריו באמצעות מיקרוסקופיית תאורה מובנית קריו. אנו מדגימים את המתודולוגיה על ידי הדמיית הציטוסקלטון של תאי U2OS.
מיקרוסקופיית תאורה מובנית תלת מימדית (SIM) מאפשרת הדמיה של מבנים תאיים מתויגים פלואורסצנטי ברזולוציה גבוהה יותר ממיקרוסקופיית פלואורסצנטיות קונבנציונלית. טכניקה זו של רזולוציית-על (SR) מאפשרת הדמיה של תהליכים מולקולריים בתאים שלמים ויש לה פוטנציאל לשמש בשילוב עם מיקרוסקופיה אלקטרונית וטומוגרפיה של קרני רנטגן כדי לתאם מידע מבני ותפקודי. מיקרוסקופ SIM עבור דגימות שהשתמרו קריוגנית (cryoSIM) הוזמן לאחרונה בקו הקרן המתאם להדמיית קריו B24 בסינכרוטרון בבריטניה.
הוא תוכנן במיוחד עבור הדמיה תלת ממדית של דגימות ביולוגיות בטמפרטורות קריוגניות באופן התואם להדמיה עוקבת של אותן דגימות בשיטות מיקרוסקופיה של קרני רנטגן כגון טומוגרפיה של קרני רנטגן רכות. מאמר וידאו זה מספק שיטות ופרוטוקולים מפורטים להדמיה מוצלחת באמצעות cryoSIM. בנוסף להוראות על פעולת המיקרוסקופ cryoSIM, נכללו המלצות לגבי בחירת דגימות, פלואורופורים והגדרות פרמטר. הפרוטוקול מוצג בדגימות תא U2OS שהמיטוכונדריה והטובולין שלהם תויגו באופן פלואורסצנטי.
טכניקות הדמיה SR הפכו נגישות באופן נרחב לביולוגים בעשור האחרון1. הם מאפשרים הדמיה ברזולוציה גבוהה של דגימות מתויגות פלואורסצנטיות מעבר למגבלת עקיפה. עם זאת, זה כבר מאתגר להתאים שיטות מיקרוסקופיה SR לעבוד עם דגימות בטמפרטורות קריוגניות2. זה יהיה יתרון עבור הדמיה מתאם בשילוב עם אלקטרון או טומוגרפיה רנטגן. לאחרונה, SIM הותאם לשימוש עם דגימות קריוגניות והוכח בהצלחה כדי לאפשר מחקרים מתאם של תאים ביולוגיים בשילוב עם טומוגרפיהרנטגן רכה (SXT) 3 בקו הקרן קריו-הדמיה קורלטיבי B24 ב סינכרוטרון מקור אור היהלום (https://www.diamond.ac.uk/Instruments/Biological-Cryo-Imaging/B24.html). SIM יכול להכפיל את הרזולוציה של מיקרוסקופיה רחבת שדה קונבנציונלית על ידי הארת המדגם עם דפוסי אור מפוספסים (שולי Moiré) בשלוש זוויות ובחמשה שלבים. ההפרעה בין דפוסי אור אלה לבין פלואורסצנטיות מדגם ניתן להשתמש כדי לחשוף באופן חישובי מידע נוסף על מבנים תת עקיפה4,5.
ישנם מספר יתרונות של SIM על פני טכניקות SR אחרות עבור יישומים קריוגניים. ראשית, זה יכול לעבוד ללא פלואורופורים מהבהבים שתוכננו במיוחד; פלואורופורים קונבנציונליים ניתן להשתמש, נותן גישה למגוון רחב יותר של סוכני תיוג פלואורסצנטי פוטנציאלי6. בנוסף, הוא דורש רק 15 תמונות לכל פרוסת z (בתלת-ממד; 9 תמונות ל-2D), בעוד ששיטות SR אחרות לוקחות כ-1,000 תמונות לפרוסה, מה שמגדיל את הסיכוי שהדגימה תחומם ולכן מגביר את הסיכון להיווצרות גבישי קרח, מה שעלול לגרום לחפצים. לבסוף, טכניקה זו יכולה לדמיין דגימות ביולוגיות עבות יותר של מעל 10 מיקרומטר, ומאפשרת לתאים שלמים להיקרא במצבם הכמעט ילידי6. CryoSIM נבנה באמצעות רכיבים אופטיים סטנדרטיים ועם תוכנה לגישה פתוחה להדמיה, מה שמקל על תיעוד ושכפול אם תרצה6. CryoSIM יש 100x/ 0.9 מטרה צמצם מספרי (ראה טבלת החומרים); מידע נוסף על הרכיבים האופטיים, פרמטרי העיצוב והביצועים שלו תואר על ידי פיליפס ואח‘. 6 הנה, פרוטוקול זה מדגים כיצד להשתמש במיקרוסקופ cryoSIM כולל כיצד לטעון ולפרוק דגימות בשלב הקריוגני, כיצד לאסוף נתונים על המיקרוסקופ וכיצד לשחזר את תמונות ה- SIM.
3D SIM בטמפרטורות קריוגניות יש יתרונות רבים על פני טכניקות הדמיה SR אחרות עבור הדמיה חומר ביולוגי מנוצל. זה דורש באופן משמעותי פחות תמונות לכל פרוסת z בהשוואה לשיטות SR אחרות, וכתוצאה מכך פחות הקרנה וסיכוי נמוך יותר של היווצרות גבישי קרח עבור דגימות מרוסנות. הוא גם מסוגל לדמיין תאים שלמים וניתן לתאם אותו עם טומוגרפיה של קרני רנטגן כדי להתאים את המבנה לתפקוד. מעניין, רוב פלואורופור זמין מסחרית ותגי פלואורסצנטיות להלבין פחות בתנאים קריוגניים מאשר בטמפרטורת החדר. עם זאת, בהתחשב בתשואה הקוונטית הגבוהה של הפלורופורים הנפוצים ביותר בטמפרטורת החדר (יותר מ -80% במקרים מסוימים), הרווח המוחלט שזוהה בפוטונים אינו נובע משינויים בתפוקה הקוונטית, אלא מירידה בתהליכי ההלבנה המורכבים. מידע נוסף על התשואה של פלואורופור בטמפרטורות קריוגניות ניתן למצוא ב 8.
זה קריטי כי דגימות המגיעות cryoSIM כבר ממופה מראש באמצעות מיקרוסקופ cryofluorescence קונבנציונאלי עם יכולת brightfield לייצר רשת “מפה” הכוללת הדגשת כל AOIs פוטנציאליים להדמיה נוספת (איור 5). זמן הגישה ב cryoSIM מוקצה באמצעות הליך תחרותי הכולל הגשת הצעה, אשר לאחר מכן מוערך עבור היתכנות טכניקה והשפעה ביו-רפואית. הזמן בציוד, אם כן, הוא תמיד “בפרמיה”, ורשתות ממופות מראש מאפשרות את השימוש היעיל ביותר בהקצאה. זה גם חיוני כי המדגם נשמר vitrified, במיוחד במהלך העברת מדגם מבעל המדגם לפלטפורמת ההדמיה, כדי למזער את היווצרות גבישי קרח ונזק מדגם לאחר מכן. המדגם צריך להיות באיכות טובה כדי לייצר את תמונות ה- SIM הטובות ביותר. מדגם מוכן היטב יתאפיין בתכונות הבאות: (א) לא יהיה לה זיהום בגביש קרח, (ב) הרשת המשמשת תהיה רשת איתור, (ג) המוביל יהיה שטוח, (ד) רשת הרשת ומשטח המצע לא יהיו פלואורסצנטיים אוטומטיים, ו- (ה) לא יהיו שברים בקרום התמיכה. תנאים מוקדמים אלה יכולים להיות מושגים על ידי טיפול מדגם זהיר ולהבטיח כי דגימות תמיד להישאר vitrified.
חשוב לבדוק מראש אם פלואורופורים מדגם מוצע ייתן מספיק אות במיקרוסקופ cryoSIM. כלים כגון SPEKCheck9 יכולים לסייע בבחירת שילובי הפלורופור והסינון האופטימליים. אם יש בעיות באיסוף הנתונים הגולמיים או בתהליך השחזור, חפצים יכולים להופיע בתמונות לאחר השחזור. דוגמאות לחפצים שונים תועדו על ידי Demmerle et al.10 ניתן לסקור את הפרמטרים של שחזור התמונה בקובץ יומן הרישום SoftWoRx אם השחזור אינו אופטימלי על ידי פתיחת קובץ סיכום השחזור. צריך להיות מרווח קו עקבי על פני זוויות בערוץ נתון ומשכולת עקבית יחסית. וריאציה של יותר מ-30% וערכים מעל 1 (אם יוחל פיצוי גודל חרוז) צריכה להיחקר מקרוב יותר וסביר להניח שהיא תצביע על שחזורים כושלים. בנוסף, תוכנת SIMcheck2 בפיג’י יכולה לשמש גם לביצוע בדיקות שונות על הנתונים הגולמיים והמשוחזרים כדי לאבחן את הגורם לשגיאות בהגדרות פרמטר ההדמיה או השחזור. בדיקת SIM ומפת הניגודיות של האפנון שלה יכולות גם לסייע בהערכת איכות הנתונים המשוחזרים על ידי פרשנות אילו אזורים בתמונה צפויים להיות מבנים אמיתיים לעומת חפצים.
ניגודיות אפנון נמוכה (המוצגת על ידי צבע כהה, באיור 5E) בתוך האזור הגרעיני פירושה שאזור זה יהיה רגיש יותר לשחזור חפצים, ולכן מרמז על כך שניתן לסווג את דפוסי החשיש המוצגים בגרעין (איור 5D) כחפץ. אזורי איתות פלואורסצנטיות חזקים נוטים יותר לשקף במדויק מבנים מקומיים בנתונים המעובדים. באזורים של אות חלש שבו פלואורופורים מופצים על פני אזורים רחבים יותר, כגון פני השטח הכוללים של נצנצים, סביר להניח כי איתות אמיתי מתקיימים עם חפצי עיבוד, ויש לנקוט בפרשנות של נתונים אלה. לאחר בדיקה של הנתונים המשוחזרים לטווח מלא כדי להבטיח שאין ממצאים מוזרים, וכי הרקע הוא בדרך כלל גאוסי ומרוכז קרוב לאפס, הנתונים נחתכים בדרך כלל באפס, או הערך המודאלי – שיא אות הרקע – צריך להיות קרוב מאוד לאפס. פעולה זו מבטיחה שהטווח הדינאמי של התמונה המוצגת לא ישלוט בממצאי רקע שליליים. כאשר אות חלש יותר צפוי, יש לנקוט משנה זהירות בניתוח התכונות ולהבטיח שהם מבנים אמיתיים ולא חפצים שחזור.
ישנן כמה מגבלות של מערכת ההדמיה. מכיוון שהשלב לדוגמה שטוח, דגימות עם עובי משתנה או רשתות שאינן שטוחות אינן נושאים אידיאליים להדמיה. בנוסף, אם הדמיה קורלטיבית תיעשה באמצעות טומוגרפיה רנטגן רכה, אין לדמיין תאים ליד גבולות הרשת מכיוון שאלה לא יהיו גלויים במיקרוסקופ קרני הרנטגן במהלך רכישת סדרת הטיה. לבסוף, כמות הנפיחות של המדגם לפני הקפאת הצלילה יש השפעה משמעותית על איכות ההדמיה; סופג קטן מדי גורם לדגימות עבות מדי, המעניקות תמונות SIM תת-אופטימליות עם רעשי רקע גבוהים, בעוד שיותר מדי כתמים עלולים לגרום לתאים להיות מעוותים ולכן רגישים יותר לנזקי חום מקרן הלייזר של האירוע. לסיכום, cryoSIM הוא כלי מיקרוסקופיה פלואורסצנטי רב עוצמה להדמיית דגימות ביולוגיות בתלת-ממד בשלב כמעט מקורי ויש לו יישומים רחבים בתחומים רבים.
The authors have nothing to disclose.
פרויקט זה קיבל מימון מפרויקט iNEXT-Discovery של הנציבות האירופית Horizon 2020. אני.M דובי מודה במימון מקרן Wellcome (107457/Z/15/Z). עבודה זו בוצעה בתמיכת מקור אור היהלום, מכשיר B24 (הצעה BI25512). תודתנו לצוות במיקרון ולכל המשתמשים ומשתפי הפעולה המצוינים שלנו שעזרו לנו לבסס את cryoSIM ואת הפוטנציאל המתאם שלו.
Auto grids | FEI | ||
Autogrids | Thermo Fisher Scientific | 1036173 | |
BioTracker 488 Green Microtubule Cytoskeleton Dye | Sigma-Aldrich | SCT142 | |
Cockpit Software | Oxford University | https://github.com/MicronOxford/cockpit | |
cryo compatible polyurethane container | Jena bioscience | CC-FD-800 | |
Cryo TEM grid storage box | Thermo Fisher Scientific | Model#AutoGrid | |
cryo-SIM microscope | Custom made | N/A | Custom made, see following reference for the design: Michael A. Phillips, Maria Harkiolaki, David Miguel Susano Pinto, Richard M. Parton, Ana Palanca, Manuel Garcia-Moreno, Ilias Kounatidis, John W. Sedat, David I. Stuart, Alfredo Castello, Martin J. Booth, Ilan Davis, and Ian M. Dobbie, "CryoSIM: super-resolution 3D structured illumination cryogenic fluorescence microscopy for correlated ultrastructural imaging," Optica 7, 802-812 (2020). Has a Nikon TU Plan Apo 100x/0.9 NA. |
Cryostage system | Linkam Scientific Instruments | CMS196 | |
Fine tip surgical forceps | Ted Pella | 38125 | |
MitoTracker Deep Red FM | Thermo Fisher Scientific | M22426 | |
Python Microscope Software | Oxford University | https://www.python-microscope.org/ | |
Scientific dry paper wipes | Kimberly-Clark 7551 | 2 | |
SIM Reconstruction Software | softWoRx, GE Healthcare | Version 6.5.2 | |
StitchM Software | Diamond Light Source | https://github.com/DiamondLightSource/StitchM | |
TEM grids for samples | Quantifoil Micro Tools | G200F1 |