Ce protocole montre comment imager des échantillons biologiques cryo-préservés à l’aide de la microscopie à éclairage cryo-structuré. Nous démontrons la méthodologie en imageant le cytosquelette des cellules U2OS.
La microscopie à éclairage structuré (SIM) tridimensionnelle (3D) permet l’imagerie de structures cellulaires marquées par fluorescence à une résolution plus élevée que la microscopie à fluorescence conventionnelle. Cette technique de super-résolution (SR) permet de visualiser les processus moléculaires dans des cellules entières et a le potentiel d’être utilisée conjointement avec la microscopie électronique et la tomographie aux rayons X pour corréler les informations structurelles et fonctionnelles. Un microscope SIM pour échantillons cryogéniquement conservés (cryoSIM) a récemment été mis en service sur la ligne de faisceau corrélative de cryo-imagerie B24 du synchrotron britannique.
Il a été conçu spécifiquement pour l’imagerie 3D d’échantillons biologiques à des températures cryogéniques d’une manière compatible avec l’imagerie ultérieure des mêmes échantillons par des méthodes de microscopie à rayons X telles que la tomographie aux rayons X cryo-mous. Cet article vidéo fournit des méthodes et des protocoles détaillés pour une imagerie réussie à l’aide du cryoSIM. En plus des instructions sur le fonctionnement du microscope cryoSIM, des recommandations ont été incluses concernant le choix des échantillons, des fluorophores et des paramètres. Le protocole est démontré dans des échantillons de cellules U2OS dont les mitochondries et la tubuline ont été marquées par fluorescence.
Les techniques d’imagerie SR sont devenues largement accessibles aux biologistes au cours de la dernière décennie1. Ils permettent l’imagerie à haute résolution d’échantillons marqués par fluorescence au-delà de la limite de diffraction. Cependant, il a été difficile d’adapter les méthodes de microscopie SR pour travailler avec des échantillons à des températures cryogéniques2. Cela serait avantageux pour l’imagerie corrélative en combinaison avec la tomographie par électrons ou rayons X. Récemment, sim a été adapté pour une utilisation avec des échantillons cryogéniques et a été démontré avec succès pour permettre des études corrélatives de cellules biologiques en conjonction avec la tomographie par rayons X mous (SXT)3 à la ligne de faisceau de cryo-imagerie corrélative B24 au synchrotron de source lumineuse Diamond (https://www.diamond.ac.uk/Instruments/Biological-Cryo-Imaging/B24.html). SIM peut doubler la résolution de la microscopie à grand champ conventionnelle en éclairant l’échantillon avec des motifs de lumière rayés (franges Moiré) à trois angles et en cinq phases. L’interférence entre ces motifs lumineux et la fluorescence de l’échantillon peut être utilisée pour découvrir informatiquement des informations supplémentaires sur les structures de sous-diffraction4,5.
Il existe plusieurs avantages de la carte SIM par rapport aux autres techniques SR pour les applications cryogéniques. Tout d’abord, il peut fonctionner sans fluorophores clignotants spécialement conçus; les fluorophores conventionnels peuvent être utilisés, donnant accès à une gamme plus large d’agents de marquage fluorescents potentiels6. De plus, il ne nécessite que 15 images par tranche z (en 3D; 9 images pour la 2D), alors que d’autres méthodes SR prennent environ 1000 images par tranche, ce qui augmente les chances que l’échantillon soit chauffé et augmente donc le risque de formation de cristaux de glace, ce qui peut causer des artefacts. Enfin, cette technique permet d’imager des échantillons biologiques plus épais de plus de 10 μm, permettant d’imager des cellules entières dans leur état quasi natif6. Le cryoSIM a été construit à l’aide de composants optiques standard et avec un logiciel en libre accès pour l’imagerie, ce qui facilite la documentation et la duplication si vous le souhaitez6. Le cryoSIM a un objectif à ouverture numérique 100x/0,9 (voir le Tableau des matériaux); Phillips et al.6 Ici, ce protocole montre comment utiliser le microscope cryoSIM, y compris comment charger et décharger des échantillons sur la scène cryogénique, comment collecter des données au microscope et comment reconstruire les images SIM.
La carte SIM 3D à des températures cryogéniques présente de nombreux avantages par rapport aux autres techniques d’imagerie SR pour l’imagerie de matériel biologique vitrifié. Il nécessite beaucoup moins d’images par tranche z par rapport aux autres méthodes SR, ce qui entraîne moins d’irradiation et moins de risque de formation de cristaux de glace pour les échantillons vitrifiés. Il est également capable d’imager des cellules entières et peut être corrélé avec la tomographie aux rayons X pour faire correspondre la structure à la fonction. Fait intéressant, la plupart des fluorophores et des étiquettes de fluorescence disponibles dans le commerce blanchissent moins dans des conditions cryogéniques qu’à température ambiante. Cependant, étant donné le rendement quantique élevé des fluorophores les plus courants à température ambiante (plus de 80% dans certains cas), le gain absolu détecté en photons n’est pas dû à des changements dans le rendement quantique, mais à une réduction des processus complexes de blanchiment. Plus d’informations sur le rendement des fluorophores à des températures cryogéniques peuvent être trouvées dans 8.
Il est essentiel que les échantillons arrivant au cryoSIM aient été prémélectionnés à l’aide d’un microscope à cryofluorescence conventionnel doté d’une capacité de champ lumineux pour produire une « carte » en grille qui comprend la mise en évidence de toutes les AOI potentielles pour une imagerie ultérieure(Figure 5). Le temps d’accès au cryoSIM est attribué via un processus concurrentiel qui implique la soumission d’une proposition, qui est ensuite évaluée pour la faisabilité de la technique et l’impact biomédical. Le temps passé à l’équipement est donc toujours « payant », et les grilles préappées permettent l’utilisation la plus efficace d’une allocation. Il est également essentiel que l’échantillon reste vitrifié, en particulier lors du transfert de l’échantillon du porte-échantillon à la plate-forme d’imagerie, afin de minimiser la formation de cristaux de glace et les dommages ultérieurs à l’échantillon. L’échantillon doit être de bonne qualité pour produire les meilleures images SIM. Un échantillon bien préparé sera caractérisé par les caractéristiques suivantes: (a) il n’aura pas de contamination par des cristaux de glace, (b) la grille utilisée sera une grille de recherche, (c) le support sera plat, (d) le maillage de la grille et la surface du substrat ne seront pas auto-fluorescents, et (e) il n’y aura pas de ruptures dans la membrane de support. Ces conditions préalables peuvent être obtenues en manipulant soigneusement les échantillons et en veillant à ce que les échantillons restent toujours vitrifiés.
Il est important de vérifier à l’avance si les fluorophores d’échantillon proposés donneront suffisamment de signal dans le microscope cryoSIM. Des outils tels que SPEKCheck9 peuvent aider à choisir les combinaisons optimales de fluorophores et de filtres. S’il y a des problèmes avec la collecte de données brutes ou le processus de reconstruction, des artefacts peuvent apparaître dans les images après la reconstruction. Des exemples de divers artefacts ont été documentés par Demmerle et al.10 Les paramètres de reconstruction d’image peuvent être examinés dans le fichier journal SoftWoRx si la reconstruction n’est pas optimale en ouvrant le fichier récapitulatif de reconstruction. Il doit y avoir un interligne cohérent entre les angles d’un canal donné et une amplitude relativement constante. Une variation de plus de 30 % et des valeurs significativement supérieures à 1 (si une compensation de la taille des billes est appliquée) devraient être étudiées de plus près et sont susceptibles d’indiquer l’échec des reconstructions. En outre, le logiciel SIMcheck2 aux Fidji peut également être utilisé pour effectuer diverses vérifications sur les données brutes et reconstruites afin de diagnostiquer la cause des erreurs dans les paramètres d’imagerie ou de reconstruction. SIM-check et sa carte de contraste de modulation peuvent également aider à évaluer la qualité des données reconstruites en interprétant quelles zones d’une image sont susceptibles d’être des structures réelles par rapport à des artefacts.
Un faible contraste de modulation (représenté par la couleur sombre, dans la figure 5E)dans la zone nucléaire signifie que cette région sera plus sensible aux artefacts de reconstruction, ce qui implique que les modèles de hachage montrés dans le noyau pourraient être classés(figure 5D)comme un artefact. Les zones de signal de fluorescence forte sont plus susceptibles de refléter avec précision les structures natives dans les données traitées. Dans les zones de signal faible où les fluorophores sont répartis sur des zones plus larges, telles que la surface totale d’une vésicule, il est probable que le signal réel coexiste avec les artefacts de traitement, et il convient de faire attention à l’interprétation de ces données. Après inspection des données reconstruites sur toute la gamme pour s’assurer qu’il n’y a pas d’artefacts étranges et que l’arrière-plan est généralement gaussien et centré près de zéro, les données sont généralement coupées à zéro, ou la valeur modale – le pic du signal de fond – devrait être très proche de zéro. Cela garantit que la plage dynamique de l’image affichée n’est pas dominée par des artefacts d’arrière-plan négatifs. Lorsqu’un signal plus faible est attendu, des précautions supplémentaires doivent être prises pour analyser les caractéristiques et s’assurer qu’il s’agit de structures réelles plutôt que d’artefacts de reconstruction.
Il existe certaines limites du système d’imagerie. Étant donné que l’étage de l’échantillon est plat, les échantillons d’épaisseur variable ou les grilles qui ne sont pas plates ne sont pas des sujets idéaux pour l’imagerie. De plus, si l’imagerie corrélative est effectuée à l’aide de la tomographie par rayons X mous, les cellules situées près des limites de la grille ne doivent pas être imagées car elles ne seront pas visibles au microscope à rayons X lors de l’acquisition de la série d’inclinaison. Enfin, la quantité de buvardage de l’échantillon avant la congélation en plongée a un impact significatif sur la qualité de l’imagerie; trop peu de buvardage entraîne des échantillons trop épais, ce qui donne des images SIM sous-optimales avec un bruit de fond élevé, tandis qu’un trop grand nombre de buvard peut rendre les cellules déformées et donc plus sensibles aux dommages causés par la chaleur du faisceau laser incident. En résumé, cryoSIM est un puissant outil de microscopie à fluorescence pour l’imagerie d’échantillons biologiques en 3D à un stade quasi natif et a de nombreuses applications dans de nombreux domaines.
The authors have nothing to disclose.
Ce projet a reçu un financement du projet Horizon 2020 iNEXT-Discovery de la Commission européenne. I.M. Dobbie reconnaît le financement du Wellcome Trust (107457/Z/15/Z). Ce travail a été réalisé avec le soutien de la source lumineuse Diamond, instrument B24 (proposition BI25512). Nous remercions le personnel de Micron et tous nos excellents utilisateurs et collaborateurs de nous avoir aidés à établir le cryoSIM et son potentiel corrélatif.
Auto grids | FEI | ||
Autogrids | Thermo Fisher Scientific | 1036173 | |
BioTracker 488 Green Microtubule Cytoskeleton Dye | Sigma-Aldrich | SCT142 | |
Cockpit Software | Oxford University | https://github.com/MicronOxford/cockpit | |
cryo compatible polyurethane container | Jena bioscience | CC-FD-800 | |
Cryo TEM grid storage box | Thermo Fisher Scientific | Model#AutoGrid | |
cryo-SIM microscope | Custom made | N/A | Custom made, see following reference for the design: Michael A. Phillips, Maria Harkiolaki, David Miguel Susano Pinto, Richard M. Parton, Ana Palanca, Manuel Garcia-Moreno, Ilias Kounatidis, John W. Sedat, David I. Stuart, Alfredo Castello, Martin J. Booth, Ilan Davis, and Ian M. Dobbie, "CryoSIM: super-resolution 3D structured illumination cryogenic fluorescence microscopy for correlated ultrastructural imaging," Optica 7, 802-812 (2020). Has a Nikon TU Plan Apo 100x/0.9 NA. |
Cryostage system | Linkam Scientific Instruments | CMS196 | |
Fine tip surgical forceps | Ted Pella | 38125 | |
MitoTracker Deep Red FM | Thermo Fisher Scientific | M22426 | |
Python Microscope Software | Oxford University | https://www.python-microscope.org/ | |
Scientific dry paper wipes | Kimberly-Clark 7551 | 2 | |
SIM Reconstruction Software | softWoRx, GE Healthcare | Version 6.5.2 | |
StitchM Software | Diamond Light Source | https://github.com/DiamondLightSource/StitchM | |
TEM grids for samples | Quantifoil Micro Tools | G200F1 |