Um método para preservar raízes úmidas e rizosferas para imagem elementar

As raízes e suas rizosferas são dinâmicas, heterogêneas e criticamente importantes para entender como as plantas obtêm nutrientes minerais e contaminantes^1,2,3. As raízes são o caminho primário pelo qual nutrientes (por exemplo, fósforo) e contaminantes (por exemplo, arsênico) se movem do solo para as plantas e, assim, entender esse processo tem implicações para quantidade e qualidade dos alimentos, funcionamento do ecossistema e fitromediação. No entanto, as raízes são dinâmicas no espaço e no tempo crescendo em resposta às necessidades de aquisição de nutrientes e muitas vezes variam em função, diâmetro e estrutura (por exemplo, raízes laterais, raízes aventurárias, cabelos radiculares)². A heterogeneidade dos sistemas radiculares pode ser estudada em escalas espaciais, do celular ao nível do ecossistema e em escalas temporais, de hora em hora para decadal. Assim, a natureza dinâmica e heterogênea das raízes e seu solo circundante, ou rizosfera, coloca desafios para capturar a química da rizosfera ao longo do tempo. Apesar desse desafio, é imprescindível estudar raízes em seu ambiente de solo para caracterizar essa relação crítica entre plantas e solo.

A química da rizosfera das plantas úmidas é particularmente desafiadora de investigar por causa de gradientes de oxigênio íngremes que existem do solo a granel para as raízes, que mudam no espaço e no tempo. Como as raízes precisam de oxigênio para respirar, as plantas úmidas adaptaram-se às baixas condições de oxigênio dos solos pantanosos, criando o aerenchyma^4,5. Aerenchyma são tecidos cortical ocos que se estendem de brotos até raízes, permitindo a difusão do ar através da planta para as raízes. No entanto, parte desse ar vaza para a rizosfera em partes menos suberizadas das raízes particularmente perto de junções laterais radiculares, pontas radiculares menos maduras e zonas de alongamento^6,7,8,9. Essa perda de oxigênio radial cria uma zona oxidada na rizofera das plantas úmidas que afeta a rizosfera (bio-geo)química e é distinta do solo a granel reduzido^10,11,12. Para entender o destino e o transporte de nutrientes e contaminantes em rizosferas e raízes úmidas, é fundamental preservar o solo a granel quimicamente reduzido, a rizosfera oxidada e raízes de plantas úmidas para análise. No entanto, como o solo a granel contém constituintes reduzidos do solo que são sensíveis ao oxigênio, os métodos de preservação das raízes e do solo devem preservar estruturas radiculares e minimizar as reações sensíveis ao oxigênio.

Existem métodos para fixar tecidos vegetais e preservar a ultraestrutura para imagem, mas esses métodos não podem ser aplicados para preservar quimicamente raízes que crescem em solo pantanoso. Para investigações onde apenas a distribuição elementar dentro das células vegetais é desejada, as plantas são tipicamente cultivadas hidroponicamente e as raízes podem ser facilmente removidas da solução, fixadas sob substituição de congelamento e congelamento de alta pressão e seccionadas para uma variedade de aplicações de imagem, incluindo espectrometria de massa de íons secundários de alta resolução (nanoSIMS), microscopia eletrônica e análise de fluorescência de raios-X síncrotrons (S-XRF)^{análise 13, 14,15}. Para investigar a placa fe na parte externa das raízes úmidas, esses estudos hidropônicos devem induzir artificialmente a formação de placas fe na solução¹⁶, que não representa com precisão a heterogeneidade da distribuição e composição mineral da formação da placa fe e elementos associados no situ^17,18,19,20. Existem métodos para preservar o solo pantanoso e microrganismos associados com congelamento^21,mas é difícil obter raízes com essa técnica. Os métodos atuais para visualizar raízes crescendo no solo e sua química rizosférica consistem em dois tipos de medição primária: fluxos elementares e concentração elementar total (e especiação). O primeiro é tipicamente medido usando gradientes difusivos em filmes finos (DGT)^22,23,24, em que o solo é colocado em rizoboxes para apoiar o crescimento da planta em um ambiente de laboratório e elementos labile no solo difusos através de um gel em uma camada de ligação. Esta camada de ligação pode então ser imageda para quantificar os elementos labil de interesse. Esta técnica pode ilustrar com sucesso as relações entre raízes e a rizosfera^24,25,26,27, mas artefatos de limitação de raízes podem existir cultivando plantas em rizoboxes, e informações sobre o interior da raiz não são capturadas com DGT. Este último envolve a amostragem das raízes e da rizosfera, preservando a amostra e analisando diretamente a distribuição elementar em uma seção amostral. Para esta amostragem ambiental das raízes das plantas úmidas e sua rizosfera circundante, é necessário um manuseio cuidadoso de amostras para evitar artefatos da preparação da amostra.

Aqui é descrito um protocolo que preserva efetivamente estruturas radiculares e química da rizofera de plantas úmidas por meio do congelamento e congelamento da secagem. O congelamento de flash pode retardar drasticamente as transformações de solutos sensíveis ao oxigênio, mas pode danificar raízes e causar mobilização quando as amostras secam. No entanto, o congelamento de slam onde a amostra é congelada entre blocos de cobre pré-resfriados com nitrogênio líquido minimiza danos radiculares e distorção amostral²⁸. As amostras preservadas são então incorporadas em uma resina epóxi que preserva como especiação^20,29 e pode ser cortada e polida para imagens de raízes dentro de seu solo rizosfera. As amostras deste relatório foram analisadas por imagem de especiação química S-XRF após secção fina. No entanto, outras técnicas de imagem também poderiam ser usadas, incluindo espectrometria de massa de plasma acoplada indutivamente a laser (LA-ICP-MS), emissão de raios-X induzida por partículas (PIXE), espectrometria de massa de íons secundário (SIMS) e imagem de espectroscopia induzida por laser (LIBS).