Summary

Utilisation de l’embryon de poulet comme outil puissant dans l’évaluation des cardiotoxicités développementales

Published: March 21, 2021
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Summary

Les embryons de poulet, en tant que modèle de développement classique, sont utilisés dans notre laboratoire pour évaluer les cardiotoxicités développementales après une exposition à divers contaminants environnementaux. Les méthodes d’exposition et les méthodes d’évaluation morphologique/fonctionnelle établies sont décrites dans ce manuscrit.

Abstract

Les embryons de poulet sont un modèle classique dans les études sur le développement. Au cours du développement des embryons de poulet, la fenêtre temporelle du développement cardiaque est bien définie et il est relativement facile d’obtenir une exposition précise et opportune via de multiples méthodes. De plus, le processus de développement cardiaque chez les embryons de poulet est similaire à celui des mammifères, ce qui donne également un cœur à quatre chambres, ce qui en fait un modèle alternatif précieux dans l’évaluation des cardiotoxicités développementales. Dans notre laboratoire, le modèle d’embryon de poulet est couramment utilisé dans l’évaluation des cardiotoxicités du développement après exposition à divers polluants environnementaux, y compris les substances perfluoroalkyles et polyfluoroalkyles (PFAS), les particules (PM), les gaz d’échappement diesel (DE) et les nanomatériaux. Le temps d’exposition peut être librement choisi en fonction des besoins, depuis le début du développement (jour embryonnaire 0, ED0) jusqu’à la veille de l’éclosion. Les principales méthodes d’exposition comprennent l’injection de cellules d’air, la micro-injection directe et l’inhalation de cellules d’air (développées à l’origine dans notre laboratoire), et les critères d’évaluation actuellement disponibles comprennent la fonction cardiaque (électrocardiographie), la morphologie (évaluations histologiques) et les évaluations biologiques moléculaires (immunohistochimie, qRT-PCR, transfert de Western, etc.). Bien sûr, le modèle d’embryon de poulet a ses propres limites, telles que la disponibilité limitée des anticorps. Néanmoins, avec plus de laboratoires commençant à utiliser ce modèle, il peut être utilisé pour apporter des contributions significatives à l’étude des cardiotoxicités développementales.

Introduction

L’embryon de poulet est un modèle de développement classique, qui est utilisé depuis plus de deux cents ans1. Le modèle d’embryon de poulet présente divers avantages par rapport aux modèles traditionnels. Tout d’abord, dès plus de 70 ans, le développement normal de l’embryon de poulet avait été illustré très clairement dans le guide destadification Hamburger-Hamilton 2, dans lequel un total de 46 étapes au cours du développement de l’embryon de poulet ont été définies avec des caractéristiques temporelles et morphologiques précises, facilitant la détection d’un développement anormal. En outre, le modèle d’embryon de poulet présente d’autres caractéristiques telles qu’un coût relativement faible et redondant en quantité, des contrôles exposition-dose relativement précis, un système indépendant et fermé dans la coquille et une manipulation facile de l’embryon en développement, ce qui garantit son potentiel d’utilisation comme un puissant modèle d’évaluation toxicologique.

En cardiotoxicité, l’embryon de poulet présente un cœur à quatre chambres, semblable aux cœurs de mammifères mais avec des parois plus épaisses, ce qui permet des évaluations morphologiques plus faciles. De plus, l’embryon de poulet permet une exposition par inhalation développementale, ce qui n’est pas possible dans les modèles de mammifères: au stade ultérieur de développement, l’embryon de poulet passera de la respiration interne à la respiration externe (obtenir de l’oxygène par les poumons); ce dernier nécessite que l’embryon pénètre dans la membrane cellulaire de l’air avec le bec et commence à respirer de l’air3, faisantde la cellule d’air une mini-chambre d’inhalation. En utilisant ce phénomène, les effets toxicologiques des contaminants gazeux sur le cœur (et d’autres organes) peuvent être évalués sans avoir besoin d’instruments de chambre d’inhalation dédiés.

Dans ce manuscrit, plusieurs méthodes d’évaluation de l’exposition et des paramètres sont décrites, qui servent toutes à faire de l’embryon de poulet un outil puissant dans l’évaluation de la cardiotoxicité du développement après une exposition à des contaminants environnementaux.

Protocol

Toutes les procédures décrites ont été approuvées par le Comité institutionnel de soins et d’utilisation des animaux (IACUC) de l’Université de Qingdao. Dans notre laboratoire, les œufs ont été incubés dans deux incubateurs. Les œufs étaient maintenus debout dans l’incubateur et placés au hasard sur les étagères. Les conditions d’incubation des œufs étaient les suivantes : la température d’incubation commençait à 37,9 °C et diminuait progressivement jusqu’à 37,1 °C au fur et à mesure …

Representative Results

Résultats de l’expositionInjection de cellules d’airL’injection de cellules d’air peut exposer efficacement les embryons de poulet en développement à divers agents, qui peuvent ensuite être détectés dans les échantillons prélevés (sérum, tissu, etc.) d’embryons / poulets nouveau-nés. Voici un exemple, dans lequel de l’acide perfluorooctanoïque (APFO) a été injecté dans des cellules d’air, et les concentrations sériques d’APFO ont ensuite été déterminées par chromatographie liqu…

Discussion

L’embryon de poulet est un modèle classique dans les études développementales depuis 200 ans1. Nos méthodes présentées dans ce manuscrit ont été utilisées dans l’évaluation de plusieurs contaminants environnementaux, y compris l’acide perfluorooctanoïque, les particules et les gaz d’échappement diesel avec succès5,7,8,9,1…

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Ce travail a été soutenu par la Fondation nationale des sciences naturelles de Chine (subvention n° 91643203, 91543208, 81502835).

Materials

4% phosphate buffered formaldehydefixative Biosharp, Hefei, China REF: BL539A
75% ethanol Guoyao,Shanghai,China CAS:64-17-5
Biosignaling monitor BL-420E+ Taimeng, Chengdu, China BL-420E+
Candling lamp Zhenwei, Dezhou, China WZ-001
Disposable syringe Zhiyu, Jiangsu, China
Egg incubator Keyu,Dezhou, China KFX
Electrical balance OHAUS, Shanghai, China AR 224CN
Electro-thermal incubator Shenxian, Shanghai, China DHP-9022
Ethanol absolute Guoyao,Shanghai,China CAS:64-17-5
Fertile chicken egg Jianuo, Jining, China
Hematoxylin and Eosin Staining Kit Beyotime, Bejing, China C0105
Histology paraffin Aladdin, Shanghai, China P100928-500g Melt point 52~54°C
Histology paraffin Aladdin, Shanghai, China P100936-500g Melt point 62~64°C
IV catheter KDL, Zhejiang, China The catheters have to be soft, plastic ones.
Lentivirus Genechem, Shanghai, China The lentivirus were individually designed/synthesized by Genechem.
Masson's trichrome staining kit Solarbio, Beijing, China G1340
Metal probe Jinuotai, Beijing, China
Microinjector (5 uL) Anting,Shanghai, China
Microscope CAIKON, Shanghai, China XSP-500
Microtome Leica, Germany HistoCore BIOCUT
Microtome blade Leica,Germany Leica 819
Pentobarbitual sodium Yitai Technology Co. Ltd.,  Wuhan, China CAS: 57-33-0
Pipetter(10ul) Sartorius, Germany
Povidone iodide Longyuquan, Taian, China
Scissor Anqisheng,Suzhou, China
Sterile saline Kelun,Chengdu, China
Sunflower oil Mighty Jiage, Jiangsu, China Any commerical sunflower oil for human consumption should work
Tape M&G, Shanghai, China
Tedlar PVF Bag (5L) Delin, Dalian, China
Vortex mixer SCILOGEX, Rocky Hill, CT, US MX-F
Xylene Guoyao,Shanghai,China CAS:1330-20-7

References

  1. Kain, K. H., et al. The chick embryo as an expanding experimental model for cancer and cardiovascular research. Developmental Dynamics. 243 (2), 216-228 (2014).
  2. Menna, T. M., Mortola, J. P. Effects of posture on the respiratory mechanics of the chick embryo. Journal of Experimental Zoology. 293 (5), 450-455 (2002).
  3. Hamburger, V., Hamilton, H. L. A series of normal stages in the development of the chick embryo. Journal of Morphology. 88 (1), 49-92 (1951).
  4. Yamamoto, F. Y., Neto, F. F., Freitas, P. F., Oliveira Ribeiro, C. A., Ortolani-Machado, C. F. Cadmium effects on early development of chick embryos. Environmental Toxicology and Pharmacology. 34 (2), 548-555 (2012).
  5. Lv, N., et al. The roles of bone morphogenetic protein 2 in perfluorooctanoic acid induced developmental cardiotoxicity and l-carnitine mediated protection. Toxicology and Applied Pharmacology. 352, 68-76 (2018).
  6. Kmecick, M., Vieira da Costa, M. C., Oliveria Ribeiro, C. A., Ortolani-Machado, C. F. Morphological evidence of neurotoxic effects in chicken embryos after exposure to perfluorooctanoic acid (PFOA) and inorganic cadmium. Toxicology. 4227, 152286 (2019).
  7. Jiang, Q., Lust, R. M., Strynar, M. J., Dagnino, S., DeWitt, J. C. Perflurooctanoic acid induces developmental cardiotoxicity in chicken embryos and hatchlings. Toxicology. 293 (1-3), 97-106 (2012).
  8. Jiang, Q., et al. In ovo very early-in-life exposure to diesel exhaust induced cardiopulmonary toxicity in a hatchling chick model. Environmental Pollution. 264, 114718 (2020).
  9. Jiang, Q., Lust, R. M., DeWitt, J. C. Perfluorooctanoic acid induced-developmental cardiotoxicity: are peroxisome proliferator activated receptor alpha (PPARalpha) and bone morphorgenic protein 2 (BMP2) pathways involved. Journal of Toxicology and Environmental Health, Part A. 76 (11), 635-650 (2013).
  10. Jiang, Q., et al. Changes in the levels of l-carnitine, acetyl-l-carnitine and propionyl-l-carnitine are involved in perfluorooctanoic acid induced developmental cardiotoxicity in chicken embryo. Environmental Toxicology and Pharmacology. 48, 116-124 (2016).
  11. Zhao, M., et al. The role of PPAR alpha in perfluorooctanoic acid induced developmental cardiotoxicity and l-carnitine mediated protection-Results of in ovo gene silencing. Environmental Toxicology and Pharmacology. 56, 136-144 (2017).
  12. Jiang, Q., et al. Particulate Matter 2.5 Induced Developmental Cardiotoxicity in Chicken Embryo and Hatchling. Front Pharmacol. 11, 841 (2020).
  13. Molina, E. D., et al. Effects of air cell injection of perfluorooctane sulfonate before incubation on development of the white leghorn chicken (Gallus domesticus) embryo. Environmental Toxicology and Chemistry. 25 (1), 227-232 (2006).
  14. Crump, D., Chiu, S., Williams, K. L. Bis-(3-allyl-4-hydroxyphenyl) sulfone decreases embryonic viability and alters hepatic mRNA expression at two distinct developmental stages in chicken embryos exposed via egg injection. Environmental Toxicology and Chemistry. 37 (2), 530-537 (2018).
  15. Franci, C. D., et al. Potency of polycyclic aromatic hydrocarbons in chicken and Japanese quail embryos. Environmental Toxicology and Chemistry. 37 (6), 1556-1564 (2018).
  16. Rand, M. D., et al. Developmental exposure to methylmercury and resultant muscle mercury accumulation and adult motor deficits in mice. Neurotoxicology. 81, 1-10 (2020).
  17. Tanaka, T., Suzuki, T., Inomata, A., Moriyasu, T. Combined effects of maternal exposure to fungicides on behavioral development in F1 -generation mice: 2. Fixed-dose study of thiabendazole. Birth Defects Research. , (2020).
  18. Kofman, O., Lan, A., Raykin, E., Zega, K., Brodski, C. Developmental and social deficits and enhanced sensitivity to prenatal chlorpyrifos in PON1-/- mouse pups and adults. PLoS One. 15 (9), 0239738 (2020).
  19. Kischel, A., Audouard, C., Fawal, M. A., Davy, A. Ephrin-B2 paces neuronal production in the developing neocortex. BMC Developmental Biology. 20 (1), 12 (2020).
  20. Okolo, F., Zhang, G., Rhodes, J., Gittes, G. K., Potoka, D. A. Intra-Amniotic Sildenafil Treatment Promotes Lung Growth and Attenuates Vascular Remodeling in an Experimental Model of Congenital Diaphragmatic Hernia. Fetal Diagnosis and Therapy. , 1-13 (2020).
  21. Vyslouzil, J., et al. Subchronic continuous inhalation exposure to zinc oxide nanoparticles induces pulmonary cell response in mice. Journal of Trace Elements in Medicine and Biology. 61, 126511 (2020).
  22. Wahle, T., et al. Evaluation of neurological effects of cerium dioxide nanoparticles doped with different amounts of zirconium following inhalation exposure in mouse models of Alzheimer’s and vascular disease. Neurochemistry International. 138, 104755 (2020).
  23. Tanabe, K. Three-Dimensional Echocardiography- Role in Clinical Practice and Future Directions. Circ J. 84 (7), 1047-1054 (2020).

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Cite This Article
Jiang, Q., Xu, X., DeWitt, J. C., Zheng, Y. Using Chicken Embryo as a Powerful Tool in Assessment of Developmental Cardiotoxicities. J. Vis. Exp. (169), e62189, doi:10.3791/62189 (2021).

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