Мы представляем протокол выделения и культивации первичных эмбриональных небных мезенхимальных клеток мыши для покадровой визуализации двумерного (2D) роста и ран-восстановительных анализов. Мы также предоставляем методологию анализа данных покадровой визуализации для определения образования клеточного потока и направленной подвижности.
Развитие неба – это динамичный процесс, который включает в себя вертикальный рост двусторонних небных полок рядом с языком с последующим возвышением и сращинием над языком. Дефекты в этом процессе приводят к расщелине неба, распространенному врожденному дефекту. Недавние исследования показали, что поднятие небной полки включает в себя процесс реконструкции, который преобразует ориентацию полки из вертикальной в горизонтальную. Роль мезенхимальных клеток небной полки в этом динамическом ремоделирование было трудно изучить. Количественный анализ на основе покадровой визуализации недавно был использован, чтобы показать, что первичные эмбриональные небные мезенхимальные клетки мыши (MEPM) могут самоорганизовываться в коллективное движение. Количественный анализ может выявить различия в мутантных клетках MEPM из мышиной модели с дефектами высоты неба. В этой статье описываются методы выделения и культивирования клеток MEPM из эмбрионов E13.5, специально для покадровой визуализации, и определения различных клеточных атрибутов коллективного движения, включая меры по формированию потока, выравниванию формы и сохранению направления. В нем утверждается, что клетки MEPM могут служить прокси-моделью для изучения роли мезенхимы небной полки во время динамического процесса подъема. Эти количественные методы позволят исследователям в черепно-лицевой области оценивать и сравнивать коллективные атрибуты движения в контрольных и мутантных клетках, что расширит понимание ремоделирования мезенхимальных мешков во время подъема небного шельфа. Кроме того, клетки MEPM обеспечивают редкую модель мезенхимальных клеток для исследования коллективного движения клеток в целом.
Развитие неба было широко изучено, поскольку дефекты небного генеза приводят к расщелине неба – распространенному врожденном дефекту, который возникает в единичных случаях или как часть сотен синдромов1,2. Развитие эмбрионального неба является динамическим процессом, который включает в себя движение и слияние эмбриональной ткани. Этот процесс можно разделить на четыре основных этапа: 1) индукция небных полок, 2) вертикальный рост небных полок рядом с языком, 3) возвышение небных полок над языком и 4) слияние небных полок на средней линии1,3,4. За последние несколько десятилетий у многих мышиных мутантов были выявлены проявления расщелины неба5,6,7,8. Характеристика этих моделей показала дефекты на этапах индукции, пролиферации и слияния небной полки; однако дефекты высоты небных шельфов были редкими. Таким образом, понимание динамики возвышения небного шельфа является интригующей областью исследований.
Тщательный анализ некоторых мышиных мутантов с дефектами высоты небной полки привел к текущей модели, показывающей, что сама передняя область небной полки, по-видимому, переворачивается вверх, в то время как вертикальное к горизонтальному движению или «ремоделирование» небных полок происходит в средней и задней областях неба1,3,4, 9,10,11. Эпителий медиальной кромки небной полки, вероятно, инициирует передачу сигналов, необходимую для этого ремоделирования, которое затем приводится в действие мезенхимой небной полки. В последнее время многие исследователи выявили задержку подъема небной полки в мышиных моделях, которые показали преходящие пероральные спайки с участием небных полок12,13. Мезенхимальное ремоделирование предполагает реорганизацию клеток для создания выпуклости в горизонтальном направлении, одновременно втягивая небную полку в вертикальном направлении9,10,14. Среди нескольких механизмов, предложенных для воздействия на высоту небной полки и лежащее в основе мезенхимальное ремоделирование, – пролиферация клеток15,16,17,хемотаксические градиенты18и компоненты внеклеточного матрикса19,20. Возник важный вопрос: наблюдается ли задержка подъема небной полки у мышей с дефицитом Specc1l такжечастично из-за дефекта ремоделирования небной полки, и может ли этот дефект ремоделирования проявляться во внутреннем дефекте поведения первичных клеток MEPM21?
Первичные клетки MEPM использовались в черепно-лицевой области для многих исследований, включающих экспрессию генов22,23,24,25,26,27,28,29,и несколько, включающих пролиферацию30,31 и миграцию25,31,32 , но не для коллективного анализа поведения клеток. Покадровую визуализацию клеток MEPM проводили в 2D-культуре и раневосточных анализах, чтобы показать, что клетки MEPM демонстрируют направленное движение и формируют зависящие от плотности клеточные потоки-атрибуты коллективного движения21. Кроме того, мутантные клетки Specc1l образовывали более узкие клеточные потоки и демонстрировали сильно изменчивые траектории миграции клеток. Считается, что это отсутствие скоординированной подвижности способствует задержке подъема неба у мутантных эмбрионов Specc1l 13,21. Таким образом, эти относительно простые анализы с использованием первичных клеток MEPM могут служить прокси для изучения ремоделирования мезенхимальных веществ во время подъема небного шельфа. В этой статье описывается изоляция и культура первичных клеток MEPM, а также покадровая визуализация и анализ для 2D и ран-восстановительных анализов.
Возвышение небного шельфа представляет собой вертикальное и горизонтальное событиереконструкции 1,3,4,9,11. Постулируется, что этот процесс ремоделирования требует, чтобы клетки мезенхимального лож…
The authors have nothing to disclose.
Этот проект был частично поддержан грантами Национальных институтов здравоохранения DE026172 (I.S.) и GM102801 (A.C.). I.S. также частично поддерживался грантом Центра передовых биомедицинских исследований (COBRE) (Национальный институт общих медицинских наук P20 GM104936), грантом Kansas IDeA Network for Biomedical Research Excellence (Национальный институт общих медицинских наук P20 GM103418) и грантом Канзасского исследовательского центра интеллектуальных нарушений и нарушений развития (KIDDRC) (U54 Eunice Kennedy Shriver National Institute of Child Health and Human Development, HD090216).
Beaker, 250 mL (x2) | Fisher Scientific | FB-100-250 | |
CO2 | Matheson Gas | UN1013 | |
Conical tubes, 15 mL (x1) | Midwest Scientific | C15B | |
Debian operating system | computational analysis of time-lapse images | ||
Dulbecco's Modified Eagles Medium/High Glucose with 4 mM L-Glutamine and Sodium Pyruvate | Cytiva Life Sciences | SH30243.01 | |
EtOH, 100% | Decon Laboratories | 2701 | |
EVOS FL Auto | ThermoFisher Scientific | AMAFD1000 | |
EVOS Onstage Incubator | ThermoFisher Scientific | AMC1000 | |
EVOS Onstage Vessel Holder, Multi-Well Plates | ThermoFisher Scientific | AMEPVH028 | |
Fetal Bovine Serum | Corning | 35-010-CV | |
Fine point #5 Stainless Steel Forceps (x2) | Fine Science Tools | 11295-10 | Dissection |
Instrument sterilizer bead bath | Fine Science Tools | 18000-45 | |
Microcetrifuge tubes, 1.5mL | Avant | 2925 | |
Micro-Dissecting Stainless Steel Scissors, Straight | Roboz | RS-5910 | Dissection |
NucBlue (Hoechst) Live Ready Probes | ThermoFisher Scientific | R37605 | |
Penicillin Streptomycin Solution, 100x | Corning | 30-002-CI | |
Silicone Insert, 2-well | Ibidi | 80209 | |
Small Perforated Stainless Steel Spoon | Fine Science Tools | MC17C | Dissection |
Spring Scissors, 4 mm | Fine Science Tools | 15018-10 | |
Sterile 10 cm dishe(s) | Corning | 430293 | |
Sterile 12-well plate(s) | PR1MA | 667512 | |
Sterile 6-well plate(s) | Thermo Fisher Scientific | 140675 | |
Sterile PBS | Corning | 21-031-CV | |
Sterile plastic bulb transfer pipette | ThermoFisher Scientific | 202-1S | |
Trypsin, 0.25% | ThermoFisher Scientific | 25200056 |