Summary

Análise da tradução no cérebro do rato em desenvolvimento usando perfil polino

Published: May 22, 2021
doi:

Summary

O desenvolvimento do cérebro mamífero requer o controle adequado da expressão genética no nível da tradução. Aqui, descrevemos um sistema de perfil polisso com uma plataforma de gradiente e fracionamento de sacarose fácil de montar para avaliar o status translacional de mRNAs no cérebro em desenvolvimento.

Abstract

O desenvolvimento adequado do cérebro mamífero depende de um bom equilíbrio de proliferação de células-tronco neurais e diferenciação em diferentes tipos de células neurais. Esse equilíbrio é fortemente controlado pela expressão genética que é ajustada em vários níveis, incluindo transcrição, pós-transcrição e tradução. Nesse sentido, um conjunto crescente de evidências destaca um papel crítico da regulação translacional na coordenação das decisões de destino das células-tronco neurais. O fracionamento polissário é uma ferramenta poderosa para a avaliação do status translacional mRNA em níveis genéticos globais e individuais. Aqui, apresentamos um pipeline de perfil de polimento interno para avaliar a eficiência translacional nas células do córtex cerebral do camundongo em desenvolvimento. Descrevemos os protocolos de preparação de gradiente de sacarose, lise tecidual, ultracentrifugação e análise baseada em fracionamento do status translacional mRNA.

Introduction

Durante o desenvolvimento do cérebro mamífero, as células-tronco neurais proliferam e se diferenciam para gerar neurônios e glia1,2 . A perturbação desse processo pode levar a alterações na estrutura e função cerebral, como visto em muitos distúrbios neurodesenvolvimentos3,4. O comportamento adequado das células-tronco neurais requer a expressão orquestrada de genes específicos5. Embora o controle epigenético e transcricional desses genes tenha sido intensamente estudado, achados recentes sugerem que a regulação genética em outros níveis também contribui para a coordenação da proliferação e diferenciação de células-tronco neurais6,7,8,9,10. Assim, abordar os programas de controle translacional avançará muito nossa compreensão dos mecanismos subjacentes à decisão do destino das células-tronco neurais e ao desenvolvimento cerebral.

Três técnicas principais com diferentes pontos fortes foram amplamente aplicadas para avaliar o status translacional do mRNA, incluindo perfil ribossomo, tradução de purificação de afinidade ribossosome (TRAP) e perfil de polimento. O perfil ribossomo usa sequenciamento de RNA para determinar fragmentos de mRNA protegidos por ribossomo, permitindo a análise global do número e localização da tradução de ribossomos em cada transcrição para inferir indiretamente a taxa de tradução, comparando-a à transcrição11. TRAP aproveita as proteínas ribossômicas marcadas por epitope para capturar mRNAs12com limite ribossomo . Dado que as proteínas ribossômicas marcadas podem ser expressas em tipos de células específicas usando abordagens genéticas, o TRAP permite a análise da tradução de forma específica do tipo celular. Em comparação, o perfil polissário, que usa fracionamento de gradiente de densidade de sacarose para separar porção livre e mal traduzida (monossomos mais leves) daqueles que estão sendo ativamente traduzidos por ribossomos (polissomos mais pesados), fornece uma medição direta da densidade ribossomo no mRNA13. Uma vantagem que essa técnica oferece é sua versatilidade para estudar a tradução de mRNA específico de interesse, bem como análise de translatome em todo o genoma14.

Neste artigo, descrevemos um protocolo detalhado de perfil polisso para analisar o córtex cerebral do camundongo em desenvolvimento. Usamos um sistema montado em casa para preparar gradientes de densidade de sacarose e coletar frações para aplicações a jusante. O protocolo aqui apresentado pode ser adaptado facilmente para analisar outros tipos de tecidos e organismos.

Protocol

Todo o uso de animais foi supervisionado pelo Comitê de Cuidados com Animais da Universidade de Calgary. Os camundongos CD1 usados para o experimento foram comprados de fornecedor comercial. 1. Preparação de soluções NOTA Para evitar a degradação do RNA, pulverizar bancada e todos os equipamentos com solução de descontaminação RNase. Dicas sem RNase são usadas para o experimento. Todas as soluções são preparadas em água sem RNase. Prepare a…

Representative Results

Como demonstração, o lysato cortical contendo 75 μg de RNA (agrupado de 8 embriões) foi separado pelo gradiente de sacarose em 12 frações. Picos de absorvância UV a 254 nm identificaram frações contendo a subunidade 40S, subunidade 60S, monossóis 80S e polisomáticos(Figura 4A). Análise de frações por mancha ocidental para a grande subunidade ribossômica, Rpl10 mostrou sua presença na subunidade 60S (fração 3), monossóica (fração 4) e polisomas (frações 5-12)<strong cla…

Discussion

O perfil polimento é uma técnica comumente usada e poderosa para avaliar o status translacional nos níveis de gene único e genoma14 . Neste relatório, apresentamos um protocolo de perfil polisome utilizando uma plataforma montada em casa e seu aplicativo para analisar o córtex do mouse em desenvolvimento. Esta plataforma econômica é fácil de montar e gerar gradientes robustos e reprodutíveis de sacarose e perfil polisso com alta sensibilidade.

Vale ressaltar q…

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Este trabalho foi financiado por um NSERC Discovery Grant (RGPIN/04246-2018 para G.Y.). G.Y. é uma cadeira de pesquisa do Canadá. A S.K. foi financiada pela Mitacs Globalink Graduate Fellowship e pela ACHRI Graduate Student Scholarship.

Materials

1.5 mL RNA free microtubes Axygen MCT-150-C
10 cm dish Greiner-Bio 664160
1M MgCl2 Invitrogen AM9530G
21-23G needle BD 305193
2M KCl Invitrogen AM8640G
30 mL syringe BD 302832
Blunt end needle VWR 20068-781
Breadboard Thorlabs MB2530/M
Bromophenol blue Sigma 115-39-9
CD1 mouse Charles River Laboratory
Curved tip forceps Sigma #Z168785
Cycloheximide Sigma 66-81-9
Data acquisition software TracerDAQ Measurement Computing
Digital converter Measurement Computing USB-1208LS
Direct-zol RNA miniprep kit Zymo R2070
Dithiothreitol (DTT) Bio-basic 12-03-3483
DMSO Bioshop 67-68-5
Dumont No.5 forceps Sigma #F6521
Fraction collector Bio-Rad Model 2110
HBSS Wisent 311-513-CL
Linear stage actuator Rattmmotor CBX1605-100A
Luciferase control RNA Promega L4561
Maxima first strand cDNA synthesis kit Themo Fisher M1681
Miniature V-clamp Thorlabs VH1/M
Mini-series breadboard Thorlabs MSB7515/M
Mini-series optical post Thorlabs MS2R/M
Mini-series pedestal post holder base Thorlabs MBA1
NaCl Bio-basic 7647-14-5
Neurobasal media Gibco 21103-049
Ø12.7 mm aluminum post Thorlabs TRA150/M
Parafilm Bemis PM992
PerfeCTa SYBR green fastmix Quanta Bio CA101414-274
Phosphate buffered saline (PBS) Wisent 311-010-CL
Puromycin Bioshop 58-58-2
Right-angle clamp Thorlabs RA90/M
Right-angle Ø1/2" to Ø6 mm post clamp Thorlabs RA90TR/M
Rnase AWAY Molecular BioProducts 7002
RNase free tips Frogga Bio FT10, FT200, FT1000
RNase free water Wisent 809-115-CL
RNasin Promega N2111
Slim right-angle bracket Thorlabs AB90B/M
Small V-clamp Thorlabs VC1/M
Sodium deoxycholate Sigma 302-95-4
Stepper motor driver SongHe TB6600
Sucrose Bioshop 57501
SW 41 Ti rotor Beckman Coulter 331362
Syringe pump Harvard Apparatus 70-4500
Syringe pump Harvard Apparatus 70-4500
Triton-X-100 Bio-basic 9002-93-1
Trizol Thermofisher Scientific 15596018
Tube piercer Brandel BR-184
Ultracentrifuge Beckman Coulter L8-70M
Ultracentrifuge tubes Beckman Coulter 331372
UltraPure 1M Tris-HCl pH 7.5 Invitrogen 15567-027
UNO project super starter kit Elegoo EL-KIT-003
UV monitor Bio-Rad EM-1 Econo
Vertical bracket Thorlabs VB01A/M

References

  1. Götz, M., Huttner, W. B. The cell biology of neurogenesis. Nature Reviews Molecular Cell Biology. 6, 777-788 (2005).
  2. Guillemot, F. Spatial and temporal specification of neural fates by transcription factor codes. Development. 134, 3771-3780 (2007).
  3. Fiddes, I. T., et al. Human-Specific NOTCH2NL Genes Affect Notch Signaling and Cortical Neurogenesis. Cell. 173, 1356-1369 (2018).
  4. Lennox, A. L., et al. Pathogenic DDX3X mutations impair RNA metabolism and neurogenesis during fetal cortical development. Neuron. 106, 404-420 (2020).
  5. Martynoga, B., Drechsel, D., Guillemot, F. Molecular control of neurogenesis: A view from the mammalian cerebral cortex. Cold Spring Harbor Perspective Biology. 4 (10), 008359 (2012).
  6. Amadei, G., et al. A Smaug2-based translational repression complex determines the balance between precursor maintenance versus differentiation during mammalian neurogenesis. Journal of Neurosci. 35, 15666-15681 (2015).
  7. Yang, G., Smibert, C. A., Kaplan, D. R., Miller, F. D. An eIF4E1/4E-T complex determines the genesis of neurons from precursors by translationally repressing a proneurogenic transcription program. Neuron. 84, 723-739 (2014).
  8. Yang, G., et al. A Glo1-Methylglyoxal pathway that is perturbed in maternal diabetes regulates embryonic and adult neural stem cell pools in murine offspring. Cell Reports. 17, 1022-1036 (2016).
  9. Kraushar, M. L., et al. Temporally defined neocortical translation and polysome assembly are determined by the RNA-binding protein Hu antigen R. Proceedings of the National Academy of Science U. S. A. 111, 3815-3824 (2014).
  10. Rodrigues, D. C., et al. Methylglyoxal couples metabolic and translational control of Notch signalling in mammalian neural stem cells. Nature Communications. 11, 2018 (2020).
  11. Iwasaki, S., Ingolia, N. T. The growing toolbox for protein synthesis studies. Trends in Biochemical Sciences. 42, 612-624 (2017).
  12. Chekulaeva, M., Landthaler, M. Eyes on translation. Molecular Cell. 63, 918-925 (2016).
  13. Faye, M. D., Graber, T. E., Holcik, M. Assessment of Selective mRNA Translation in Mammalian Cells by Polysome Profiling. Journal of Visualized Experiments. (92), e52295 (2014).
  14. Chassé, H., Boulben, S., Costache, V., Cormier, P., Morales, J. Analysis of translation using polysome profiling. Nucleic Acids Research. 45, 15 (2017).
  15. Schneider-Poetsch, T., et al. Inhibition of eukaryotic translation elongation by cycloheximide and lactimidomycin. Nature Chemical Biology. 6, 209-217 (2010).
  16. Kraushar, M. L., et al. Thalamic WNT3 secretion spatiotemporally regulates the neocortical ribosome signature and mRNA translation to specify neocortical cell subtypes. Journal of Neuroscience: Official Journal of Society of Neuroscience. 35, 10911-10926 (2015).
  17. Gandin, V., et al. Polysome fractionation and analysis of mammalian translatomes on a genome-wide scale. Journal of Visualized Experiments. (7), e51455 (2014).

Play Video

Cite This Article
Kedia, S., Erickson, S. L., Yang, G. Analysis of Translation in the Developing Mouse Brain using Polysome Profiling. J. Vis. Exp. (171), e62088, doi:10.3791/62088 (2021).

View Video