Summary

Ottimizzazione delle reazioni radiochimiche utilizzando array di goccioline

Published: February 12, 2021
doi:

Summary

Questo metodo descrive l’uso di una nuova metodologia ad alta produttività, basata su reazioni chimiche a goccia, per l’ottimizzazione rapida ed economica dei radiofarmaci usando quantità di nanomole di reagenti.

Abstract

Gli attuali radiosintesizzatori automatizzati sono progettati per produrre grandi lotti clinici di radiofarmaci. Non sono adatti per l’ottimizzazione della reazione o lo sviluppo radiofarmaceutico nuovo poiché ogni punto dati comporta un consumo significativo di reagenti e la contaminazione dell’apparecchio richiede tempo per il decadimento radioattivo prima del successivo utilizzo. Per affrontare queste limitazioni, è stata sviluppata una piattaforma per eseguire in parallelo array di reazioni a base di goccioline in miniatura, ognuna confinata all’interno di una trappola di tensione superficiale su un “chip” di silicio rivestito di politetrafluoroetilene modellato. Questi chip consentono studi rapidi e convenienti dei parametri di reazione, tra cui concentrazioni di reagenti, solvente di reazione, temperatura di reazione e tempo. Questa piattaforma consente il completamento di centinaia di reazioni in pochi giorni con un consumo minimo di reagenti, invece di prendere mesi utilizzando un radiosintesinteizzatore convenzionale.

Introduction

I radiofarmaci a emissione di positroni (PET) sono ampiamente utilizzati come strumenti di ricerca per monitorare specifici processi biochimici in vivo e studiare malattie, e per lo sviluppo di nuovi farmaci e terapie. Inoltre, il PET è uno strumento fondamentale per diagnosticare o mettere in scena la malattia e monitorare la risposta di un paziente alla terapia1,2,3. A causa della breve emivizione dei radioisotopi pet (ad esempio, 110 minuti per i radiofarmaci con etichetta fluoro-18) e del rischio di radiazioni, questi composti sono preparati utilizzando sistemi automatizzati specializzati che operano dietro la schermatura delle radiazioni e devono essere preparati poco prima dell’uso.

Gli attuali sistemi utilizzati per sintetizzare i radiofarmaci sono progettati per produrre grandi lotti che sono divisi in molte dosi individuali per condividere il costo di produzione. Mentre i sistemi attuali sono adatti per la produzione di radiotraccianti ampiamente utilizzati come [18F]FDG (perché più scansioni dei pazienti ed esperimenti di ricerca possono essere programmati in un solo giorno), questi sistemi possono essere dispendiosi per la produzione di nuovi radiotraccianti durante lo sviluppo in fase iniziale, o radiotraccianti meno comunemente usati. I volumi utilizzati dai sistemi convenzionali sono tipicamente nell’intervallo di 1-5 mL e le reazioni richiedono quantità precursori nell’intervallo da 1-10 mg. Inoltre, l’uso di radiosintesizzatori convenzionali è generalmente ingombrante durante gli studi di ottimizzazione poiché l’apparecchio viene contaminato dopo l’uso e l’utente deve attendere il decadimento della radioattività prima di eseguire l’esperimento successivo. Oltre al costo delle apparecchiature, il costo del radioisotopo e dei reagenti può quindi diventare molto consistente per gli studi che richiedono la produzione di più lotti. Ciò può verificarsi, ad esempio, durante l’ottimizzazione dei protocolli di sintesi per i nuovi radiotraccianti per ottenere una resa e un’affidabilità sufficienti per i primi studi di imaging in vivo.

Le tecnologie microfluidiche sono state sempre più utilizzate nella radiochimica per capitalizzare diversi vantaggi rispetto aisistemi convenzionali 4,5,6. Le piattaforme microfluidiche, comprese quelle basate su volumi di reazione 1-10 μL7,8,9, hanno mostrato una significativa riduzione dei volumi di reagenti e del consumo di costosi precursori, nonché brevi tempi di reazione. Queste riduzioni portano a costi inferiori, passaggi di riscaldamento ed evaporazione più rapidi, purificazione a valle più breve e diretta, un processo di chimica generale “più verde”10e una maggiore attività molare dei radiotracciantiprodotti 11. Questi miglioramenti rendono più pratico eseguire studi di ottimizzazione più approfonditi abbassando il costo di reagente di ogni sintesi. Ulteriori vantaggi possono essere ottenuti eseguendo più esperimenti da un singolo lotto di radioisotopo in un solo giorno. Ad esempio, i radiosintesitori di chimica del flusso microfluidico che operano in “modalità di scoperta” possono eseguire in sequenza dozzine di reazioni, ognuna utilizzando solo 10 s di volume di reazione μL12.

Ispirato da questi vantaggi, è stato sviluppato un chip array di goccioline multi-reazione in cui le reazioni microvolume sono limitate a una serie di trappole di tensione superficiale su una superficie di silicio, create utilizzando un rivestimento in teflon fantasia. Questi chip consentono di eseguire più reazioni alla scala da 1-20 μL contemporaneamente, aprendo la possibilità di esplorare 10 di diverse condizioni di reazione al giorno, ognuna con più repliche. In questo documento viene dimostrata l’utilità di questo nuovo approccio ad alta produttività per l’esecuzione di ottimizzazioni radiochimiche rapide e a basso costo. L’uso di trucioli di goccioline multi-reazione consente una comoda esplorazione dell’impatto delle concentrazioni di reagenti e del solvente di reazione, e l’uso di chip multipli potrebbe consentire lo studio della temperatura e del tempo di reazione, il tutto consumando quantità molto basse di precursore.

Protocol

ATTENZIONE: Questo protocollo prevede la manipolazione di materiali radioattivi. Gli esperimenti non devono essere effettuati senza la formazione necessaria e i dispositivi di protezione individuale e l’approvazione dell’ufficio per la sicurezza delle radiazioni presso la vostra organizzazione. Gli esperimenti devono essere eseguiti dietro la schermatura delle radiazioni, preferibilmente in una cella calda ventilata 1. Fabbricazione di chip multireazione NOTA: I lotti…

Representative Results

Per illustrare questo metodo è stato eseguito un esperimento rappresentativo. Utilizzando 16 reazioni, gli studi di ottimizzazione del radiofarmaco [18F]fallypride sono stati eseguiti da una concentrazione precursore variabile (77, 39, 19, 9.6, 4.8, 2.4, 1.2 e 0.6 mM) nell’alcol di tesile:MeCN (1:1, v/v) come solvente di reazione. Le reazioni sono state eseguite a 110 °C per 7 minuti. L’efficienza di raccolta, la composizione del campione (cioè le proporzioni del[18</su…

Discussion

A causa delle limitazioni dei sistemi radiochimica convenzionali che consentono solo una o un piccolo numero di reazioni al giorno e consumano una quantità significativa di reagenti per punto dati, solo una piccola parte dello spazio complessivo dei parametri di reazione può essere esplorata nella pratica, e molte volte i risultati sono riportati senza ripetizioni (n =1). Rispetto ai sistemi convenzionali, questa piattaforma di radiosintesi a goccia multi-reazione rende pratico realizzare studi più completi e rigorosi…

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Ringraziamo l’UCLA Biomedical Cyclotron Facility e il Dr. Roger Slavik e il Dr. Giuseppe Carlucci per aver generosamente fornito[18F]fluoruro per questi studi e l’UCLA NanoLab per il supporto con attrezzature per la fabbricazione di chip.

Materials

2,3-dimethyl-2-butanol (thexyl alcohol) Sigma-Aldrich 594-60-5 98%
Acetone KMG Chemicals Cleanroom LP grade
Ammonium formate (NH4HCO2) Sigma-Aldrich 540-69-2 97%
Anhydrous acetonitrile (MeCN) Sigma-Aldrich 75-05-8 99.80%
Ceramic heater Watlow Utramic CER-1-01-0093 25 mm x 25 mm
Cerenkov imaging chamber Custom built Other instruments can be used for TLC plate readout including: small animal in vivo optical imaging system, 2D radio-TLC scanner, 1D radio-TLC scanner
DI water Sigma-Aldrich 7732-18-5
Disposable transfer pipets, 3 mL Falcon 13-680-50
Dose calibrator Capintec, Inc. CRC-25 PET
Fallypride ABX Advanced Biochemical Compounds 1560.0010.000 Fallypride reference standard, >95%
[18F]fluoride in [18O]H2O UCLA Ahmanson Biomedical Cyclotron Facility Due to short half-life this must be obtained from local radiochemistry lab or commercial radiopharmacy
Glass cover plates (76.2 mm x 50.8 mm x 1 mm thick) C&A Scientific 6101
Headway spin coater Headway Research, Inc. PWM50-PS-R790 Sipinner system PWM50-control box, PS-motor, R790-bowl
High temperature oven Carbolite HTCR 6 28
Hot plate Thermo Scientific Super-Nuova HP133425
Isopropanol (IPA) KMG Chemicals Cleanroom LP grade
Mask aligner Karl Suss MA/BA6
Methanol (MeOH) Sigma-Aldrich 67-56-1 ≥99.9%
Microcentrifuge tube Eppendorf 0030 123.301 500 µL, colorless, polypropylene
Micropipette (0.5-10 µL) Labnet BioPette P3940-10
Micropipette (100-1000 µL) Labnet BioPette P3940-1000
Micropipette (10-100 µL) Labnet BioPette P3940-100
Micropipette tips (0.1-10 µL) USA Scientific Inc Tips 11113810
Micropipette tips (2-200 µL) BrandTech 13-889-143
Micropipette tips (50-1000 µL) BrandTech 13-889-145
Photoresist developer solution MicroChem MEGAPOSIT MF-26A
Positive photoresist MicroChem MEGAPOSIT 220-7.0
Reactive-ion etcher (RIE) Oxford Instruments Plasma Lab 80 Plus
Silicon wafer cutter Euro Tool CSCB-431.00
Silicon wafer; 4" diameter Silicon Valley Microelectronics Inc.  0017227-048 P type, boron doped, thickness 525 ± 25 µm
Teflon AF 2400 Chemours  D14896765 1% solids
Tetrabutylammonium bicarbonate (TBAHCO3) ABX Advanced Biochemical Compounds 808 Aqueous solution stabilized with ethanol, 0.075 M
Themal conducting paste OMEGA OT-201-2
TLC plates Merck KGaA 1.05554.0001 Silica gel 60 F254, 50 mm x 60 mm, aluminum back
Tosyl-fallypride ABX Advanced Biochemical Compounds 1550.004.000 Fallypride precursor, >90%
Trimethylamine (TEA) Sigma-Aldrich 75-50-3 ≥ 99%
Tweezers Cole-Parmer UX-07387-08 Stainless steel, fine tip

References

  1. Matthews, P. M., Rabiner, E. A., Passchier, J., Gunn, R. N. Positron emission tomography molecular imaging for drug development. British Journal of Clinical Pharmacology. 73 (2), 175-186 (2012).
  2. Piel, M., Vernaleken, I., Rösch, F. Positron emission tomography in CNS drug discovery and drug monitoring. Journal of Medicinal Chemistry. 57 (22), 9232-9258 (2014).
  3. Cherry, S. R., Sorenson, J. A., Phelps, M. E. . Physics in Nuclear Medicine. , (2012).
  4. Knapp, K. -. A., Nickels, M. L., Manning, H. C. The current role of microfluidics in radiofluorination chemistry. Molecular Imaging and Biology. 22 (3), 463-475 (2020).
  5. Rensch, C., et al. Microfluidics: A groundbreaking technology for PET tracer production. Molecules. 18 (7), 7930-7956 (2013).
  6. Pascali, G., Watts, P., Salvadori, P. A. Microfluidics in radiopharmaceutical chemistry. Nuclear Medicine and Biology. 40 (6), 776-787 (2013).
  7. Keng, P. Y., van Dam, R. M. Digital microfluidics: A new paradigm for radiochemistry. Molecular Imaging. 14, 579-594 (2015).
  8. Wang, J., Chao, P. H., Janet, S., van Dam, R. M. Performing multi-step chemical reactions in microliter-sized droplets by leveraging a simple passive transport mechanism. Lab on a Chip. 17 (24), 4342-4355 (2017).
  9. Wang, J., Chao, P. H., van Dam, R. M. Ultra-compact, automated microdroplet radiosynthesizer. Lab on a Chip. (19), 2415-2424 (2019).
  10. Rios, A., Wang, J., Chao, P. H., van Dam, R. M. A novel multi-reaction microdroplet platform for rapid radiochemistry optimization. RSC Advances. 9 (35), 20370-20374 (2019).
  11. Sergeev, M., et al. Performing radiosynthesis in microvolumes to maximize molar activity of tracers for positron emission tomography. Communications Chemistry. 1 (1), 10 (2018).
  12. Pascali, G., et al. Optimization of nucleophilic 18F radiofluorinations using a microfluidic reaction approach. Nature Protocols. 9 (9), 2017-2029 (2014).
  13. Lisova, K., et al. Microscale radiosynthesis, preclinical imaging and dosimetry study of [18F]AMBF3-TATE: A potential PET tracer for clinical imaging of somatostatin receptors. Nuclear Medicine and Biology. 61, 36-44 (2018).
  14. Wang, J., et al. High-throughput radio-TLC analysis. Nuclear Medicine and Biology. 82-83, 41-48 (2020).
  15. Dooraghi, A. A., et al. Optimization of microfluidic PET tracer synthesis with Cerenkov imaging. Analyst. 138 (19), 5654-5664 (2013).
  16. Collins, J., et al. Production of diverse PET probes with limited resources: 24 18F-labeled compounds prepared with a single radiosynthesizer. Proceedings of the National Academy of Sciences. 114 (43), 11309-11314 (2017).
  17. Lazari, M., et al. Fully automated production of diverse 18F-labeled PET tracers on the ELIXYS multireactor radiosynthesizer without hardware modification. Journal of Nuclear Medicine Technology. 42 (3), 203-210 (2014).
  18. Lisova, K., et al. Rapid, efficient, and economical synthesis of PET tracers in a droplet microreactor: application to O-(2-[18F]fluoroethyl)-L-tyrosine ([18F]FET). EJNMMI Radiopharmacy and Chemistry. 5 (1), 1 (2019).
  19. Wang, J., Holloway, T., Lisova, K., van Dam, R. M. Green and efficient synthesis of the radiopharmaceutical [18F]FDOPA using a microdroplet reactor. Reaction Chemistry & Engineering. 5 (2), 320-329 (2020).
  20. Lisova, K., Wang, J., Rios, A., van Dam, R. M. Adaptation and optimization of [F-18] Florbetaben ([F-18] FBB) radiosynthesis to a microdroplet reactor. Journal of Labelled Compounds and Radiopharmaceuticals. 62, 353-354 (2019).
  21. Wang, J., Chao, P. H., Slavik, R., van Dam, R. M. Multi-GBq production of the radiotracer [18F]fallypride in a droplet microreactor. RSC Advances. 10 (13), 7828-7838 (2020).

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Rios, A., Holloway, T. S., Wang, J., van Dam, R. M. Optimization of Radiochemical Reactions using Droplet Arrays. J. Vis. Exp. (168), e62056, doi:10.3791/62056 (2021).

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