Summary

הערכת תכולת ביומסה ליגנין צמחית באמצעות חומצה תיוגליקולית (TGA)

Published: July 24, 2021
doi:

Summary

כאן, אנו מציגים שיטת TGA שונה להערכת תוכן ליגנין בביומסה צמחית עשבוני. שיטה זו מעריכה את תוכן ה-lignin על ידי יצירת קשרים תיותרים ספציפיים עם ליגנין ומציגה יתרון על פני שיטת קלסון, שכן היא דורשת מדגם קטן יחסית להערכת תוכן ליגנין.

Abstract

ליגנין הוא פולימר טבעי שהוא הפולימר השני בשכיחותו על פני כדור הארץ לאחר תאית. ליגנין מופקד בעיקר בקירות תאים משניים צמחיים והוא הטרופולימר ארומטי המורכב בעיקר משלושה מונוליגנולים בעלי חשיבות תעשייתית משמעותית. ליגנין ממלא תפקיד חשוב בצמיחה והתפתחות של צמחים, מגן מפני לחצים ביוטיים ואביוטיים, ובאיכות מספוא לבעלי חיים, עץ ומוצרי ליגנין תעשייתיים. הערכה מדויקת של תוכן ליגנין חיונית הן להבנה בסיסית של הביוסינתזה של ליגנין והן ליישומים תעשייתיים של ביומסה. שיטת החומצה התיוגליקולית (TGA) היא שיטה אמינה ביותר להערכת תכולת הליגנין הכוללת בביומסה הצמחית. שיטה זו מעריכה את התוכן ליגנין על ידי יצירת thioethers עם קבוצות אלכוהול בנזיל של ליגנין, אשר מסיסים בתנאים אלקליין בלתי מסיס בתנאים חומציים. תוכן ליגנין הכולל מוערך באמצעות עקומה סטנדרטית שנוצרה מלינין במבוק מסחרי.

Introduction

ליגנין הוא אחד המרכיבים החיוניים לשאת עומס של קירות תא הצמח ואת הפולימר השני הנפוץ ביותר על פני כדור הארץ1. מבחינה כימית, ליגנין הוא הטרופולימר מקושר המורכב מתרכובות פנוליות מורכבות משקל מולקולרי גבוה היוצרות מקור מתחדש טבעי של פולימרים ארומטיים וסינתזה של ביו-חומרים2,3. פולימר טבעי זה ממלא תפקידים משמעותיים בצמיחת הצמח, פיתוח, הישרדות, תמיכה מכנית, קשיחות דופן התא, הובלת מים, הובלת מינרלים, עמידות ללינה, פיתוח רקמות ואיברים, תצהיר אנרגיה והגנה מפני לחצים ביוטיים ואביוטיים4,5,6,7. ליגנין מורכב בעיקר משלושה מונוליגנולים שונים: מחט, סינפיל ואלכוהול p-coumaryl הנגזרים ממסלול פניל פרופנואיד8,9. כמות ליגנין ואת הרכב של מונומרים להשתנות בהתאם למין הצמח, סוג הרקמה / איבר, ושלבים שונים של התפתחות הצמח10. ליגנין מסווג באופן נרחב לעץ רך, עץ קשה, ודשא ליגנין מבוסס על הרכב המקור מונוליניול. עץ רך מורכב בעיקר מ-95% אלכוהול מחטני עם 4% p-coumaryl ו-1% אלכוהול סינפיל. בעץ יש אלכוהול מחט וסינפיל בפרופורציות שוות, ואילו ליגנין דשא מורכב מממדים שונים של מחט, סינפיל ואלכוהול p-coumaryl11,12. ההרכב של מונומרים הוא קריטי כפי שהוא קובע את כוח ליגנין, פירוק, השפלה של דופן התא, כמו גם קביעת מבנה מולקולרי, הסתעפות, הצלבה עם פוליסכרידים אחרים13,14.

מחקר ליגנין הוא צובר חשיבות ליקוט, תעשיות טקסטיל, תעשיות נייר, עבור bioethanol, דלק ביולוגי, ביו מוצרים בשל עלות נמוכה שלה שפע גבוה15,16. שיטות כימיות שונות (למשל, אצטיל ברומיד, חומרי ניקוי חומצה, קלסון, חמצון פרמנגנט) יחד עם שיטות אינסטרומנטליות (למשל, ליד אינפרא אדום (NIR) ספקטרוסקופיה, תהודה מגנטית גרעינית (NMR) ספקטרוסקופיה, ו ספקטרופוטומיה אולטרה סגולה (UV) שימשו לכימות ליגנין9,17. שיטות הניתוח של ליגנין מסווגות בדרך כלל בהתבסס על קרינה אלקטרומגנטית, כבידה, ומסיסות. העיקרון מאחורי הערכת ליגנין על ידי קרינה אלקטרומגנטית התבסס על המאפיין הכימי של ליגנין שבאמצעותו הוא סופג אור באורכי גל ספציפיים. תוצאות אלו הוערכו בהתבסס על העיקרון כי ליגנין יש ספיגת UV חזקה יותר מאשר פחמימות. בשנת 1962, בולקר וסומרוויל השתמשו כדורי אשלגן כלורי כדי להעריך את תכולת ליגנין בעץ18. עם זאת, שיטה זו יש חסרונות בהערכת תוכן ליגנין מדגימות עשבוניות בשל נוכחותם של תרכובות פנוליות שאינן ליגנין והיעדר מקדם הכחדה מתאים. בשנת 1970, פרגוס וגרינג מצאו כי גואיאצ’יל ומתחם סירינגיל ספיגת מקסימום היו ב 280 ננומטר ו 270 ננומטר, אשר תיקן את נושא מקדם ההכחדה של שיטת בולקר וסומרוויל19. מאוחר יותר, ספקטרוסקופיית אינפרא אדום, טכניקה רגישה מאוד לאפיון פנולים, שימש גם להערכת ליגנין עם כמות קטנה של דגימות ביומסה צמחית. דוגמה אחת לטכנולוגיה כזו הייתה ספקטרופוטומיית שינוי פורייה מפוזרת. שיטה זו, לעומת זאת, חסר תקן מתאים דומה לשיטת UV20. מאוחר יותר, התוכן ליגנין הוערך על ידי NIRS (ליד ספקטרוסקופיה אינפרא אדום) ו NMR (ספקטרוסקופיה תהודה מגנטית גרעינית). אמנם, ישנם חסרונות בשיטות אלה, הם לא משנים את המבנה הכימי של ליגנין, שמירה עלטוהר שלה 20.

שיטת קלאסון הכבידתית היא שיטה אנליטית ישירה ואמינה ביותר להערכת ליגנין של גבעולים עציים. הבסיס להערכת ליגנין כבידתי הוא הידרוליזה / solubilization של תרכובות שאינן ליגנין ואוסף של ליגנין מסיסים עבור gravimetry21. בשיטה זו, הפחמימות מוסרות על ידי הידרוליזה של ביומסה עם מרוכז H2SO4 כדי לחלץ שאריות ליגנין20,22. תכולת הינין המוערכת בשיטה זו ידועה בשם ליגנין בלתי מסיס חומצי או ליגנין קלסון. היישום של שיטת קלסון תלוי במיני הצמחים, בסוג הרקמה ובסוג דופן התא. נוכחות של כמויות משתנות של רכיבים שאינם ליגנין כגון טאנינים, פוליסכרידים וחלבונים, גורמת להבדלים פרופורציונליים בהערכת תכולת ליגנין מסיס/מסיס בחומצה. לפיכך, שיטת קלסון מומלץ רק להערכת ליגנין של ביומסה תוכן ליגנין גבוהה כגון גבעולים וודי17,23. שיטות מסיסות כגון אצטיל ברומיד (AcBr), ליגנין מסיס בחומצה, וחומצה תיוגליקולית (TGA) הן השיטות הנפוצות ביותר להערכת תכולת הליגנין ממקורות ביומסה צמחיים שונים. קים ואח ‘ הקימו שתי שיטות להפקת ליגנין על ידי solubilization. השיטה הראשונה מחלצת ליגנין כשאריות בלתי מסיסות על ידי תאית solubilizing ו hemicellulose, בעוד השיטה השנייה מפרידה ליגנין בשבר מסיס, משאיר תאית hemicellulose כמו שאריותמסיסים 24.

שיטות דומות המשמשות להערכת ליגנין המבוססות על המסיסות הן חומצה תיוגליקולית (TGA) ושיטות אצטיל ברומיד (AcBr)25. שתי שיטות TGA ואצטיל ברומיד להעריך את התוכן ליגנין על ידי מדידת הספיגה של ליגנין solubilized ב 280 ננומטר; עם זאת, שיטת AcBr משפילה xylans במהלך תהליך של ליגנין solubilization ומראה עלייה כוזבת בתוכן ליגנין26. שיטת thioglycolate (TGA) היא השיטה האמינה יותר, שכן היא תלויה מליטה ספציפית עם קבוצות thioether של קבוצות אלכוהול בנזיל של ליגנין עם TGA. ליגנין TGA מאוגד הוא זירז בתנאים חומציים באמצעות HCl, ואת התוכן ליגנין מוערך באמצעות ספיגה שלה ב 280 ננומטר27. לשיטת TGA יתרונות נוספים של פחות שינויים מבניים, צורה מסיסת של הערכת ליגנין, פחות הפרעות מרכיבים שאינם ליגנין, והערכת ליגנין מדויקת עקב מליטה ספציפית עם TGA.

שיטת TGA זו משתנה בהתבסס על סוג של מדגם ביומסה צמח המשמש להערכת תוכן ליגנין. כאן, שינינו והתאמנו את שיטת TGA המהירה של קשיות אורז27 לרקמות כותנה כדי להעריך את תכולת הליגינין. בקצרה, דגימות הצמח אבקת מיובשים היו נתונים מאגר solubilization חלבון מיצוי מתנול כדי להסיר חלבונים ואת החלק מסיס אלכוהול. שאריות אלכוהול מסיסות טופלו עם TGA ו lignin מזורז בתנאים חומציים. עקומת תקן ליגנין נוצרה באמצעות ליגנין במבוק מסחרי וקו רגרסיה (y = mx +c) הושג. הערך “x” משתמש בערכי ספיגה ממוצעים של ליגנין ב- 280 ננומטר, בעוד שערכי “m” ו- “c” הוזנו מקו הרגרסיה כדי לחשב ריכוז ליגנין לא ידוע בדגימות ביומסה של צמח כותנה. שיטה זו מחולקת לחמישה שלבים: 1) הכנת דגימות צמחים; 2) לשטוף את הדגימות עם מים ומתנול; 3) טיפול של גלולה עם TGA וחומצה כדי לזרז ליגנין; 4) משקעים של ליגנין; ו -5) הכנת העקומה הסטנדרטית והערכת תוכן ליגנין של המדגם. שני השלבים הראשונים מתמקדים בעיקר בהכנת חומר צמחי ואחריו מים, PSB (חיץ סולוביליזציה של חלבונים) ועקירות מתנול כדי להשיג את החומר מסיס באלכוהול. לאחר מכן, הוא טופל עם TGA (חומצה תיוגליקולית) ו HCl כדי ליצור קומפלקס עם ליגנין בשלב השלישי. בסוף, HCl שימש לזרז ליגנין, אשר מומס נתרן הידרוקסיד כדי למדוד את ספיגתו ב 280 ננומטר28.

Protocol

1. הכנת דגימות צמחים אספו מהחממה צמחי כותנה בני חודשיים (איור 1A). הופכים את עציצי הצמח בעדינות כדי להפריד בין אדמה לשורשים עם שורשים לרוחב שלמים על ידי שחרור האדמה סביב הצמח(איור 1B). שטפו את הצמחים שנאספו ביסודיות במגשים מלאים במים כדי להסיר א?…

Representative Results

שני קווים ניסיוניים שונים כותנה הושוו להבדלים בתכולת הינין שלהם ברקמות שונות. תכולת הליגינין שחולצה מכל מדגם נמדדה ב-280 ננומטר ורשמה את ערכי הספיגה המתאימים לה. ערכי הספיגה הממוצעים של כל משכפל ביולוגי הושוו לקו הרגרסיה של עקומת תקן ליגנין(טבלה 2, איור 3C). קו הרגרסי…

Discussion

ליגנין ממלא תפקיד משמעותי בצמיחה ופיתוח של צמחים ולאחרונה נחקר בהרחבה עבור יישומי דלק ביולוגי, ביו-אלרגיה וביו-פרוצרציה. ליגנין עשיר בתרכובות ארומטיות המאוחסנות בכל קירות התא המשני של צמח כלי הדם. יש לו מספר יישומים תעשייתיים כגון מוצרי לוח עץ, פיזור ביו, flocculants, קצף פוליאוריתן בשרפים של ל?…

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

אנו מודים למחלקה למדעי הקרקע והכותנה בע”מ על תמיכתם החלקית במחקר זה.

Materials

BioSpectrophotometer kinetic Eppendorf kinetic 6136000010 For measuring absorbance at 280 nm
Centrifuge Eppendorf 5424 For centrifuging  samples
Commercial bamboo lignin Aldrich 1002171289 Used in the preparation of the standard curve
Distilled water Fischer Scientific 16690382 Used in the protocol
Falcon tubes VWR 734-0448 Containers for solutions
Freezer mill Spex Sample Prep 68-701-15 For fine grinding of plant tissue samples
Heat block/ Thermal mixer Eppendorf 13527550 For temperature controlled steps during lignin extraction
Hotplate stirrer Walter WP1007-HS Used for preparation of solutions
Hydrochloric acid (HCL) Sigma 221677 Used in the protocol
Incubator Fisherbrand 150152633 For thorough drying of plant tissue samples
Measuring scale Mettler toledo 30243386 For measuring plant tissue weight, standards and microfuge tubes
Methanol (100 %) Fischer Scientific 67-56-1 Used in the protocol
Microfuge tubes (2 mL) Microcentrifuge Z628034-500EA Containers for extraction of lignin
Plant biomass gerinder Hanchen Amazon Used for crushing dried samples
pH meter Fisher Scientific AE150 Measuring pH for solutions prepared for lignin extraction
Temperature controlled incubator/oven Fisher Scientific 15-015-2633 Used in the protocol
Thioglycolic acid (TGA) Sigma Aldrich 68-11-1 Used in the protocol
Vacuum dryer Eppendorf 22820001 Used for drying samples
Vortex mixer Eppendorf 3340001 For proper mixing of samples

References

  1. Freudenberg, K., Neish, A. C. . Constitutionand Biosynthesis of Lignin. , 129 (1968).
  2. Chio, C., Sain, M., Qin, W. Lignin utilization: A review of lignin depolymerization from various aspects. Renewable and Sustainable Energy Reviews. 107, 232-249 (2019).
  3. Sun, Z., Fridrich, B., de Santi, A., Elangovan, S., Barta, K. Bright Side of Lignin Depolymerization: Toward New Platform Chemicals. Chemical Reviews. 118, 614-678 (2018).
  4. Xu, F., Sun, R. C. . Cereal Straw as a Resource for Sustainable Biomaterials and Biofuels. , 9-47 (2010).
  5. Liu, Q., Luo, L., Zheng, L. Lignins: Biosynthesis and Biological Functions in Plants. International Journal of Molecular Sciences. 19, 335 (2018).
  6. Ithal, N., et al. Developmental transcript profiling of cyst nematode feeding cells in soybean roots. Molecular Plant-Microbe Interactions. 20, 510-525 (2007).
  7. Moura, J. C. M. S., et al. Abiotic and Biotic Stresses and Changes in the Lignin Content and Composition in Plants. Journal of Integrative Plant Biology. 52, 360-376 (2010).
  8. Vanholme, R., Morreel, K., Ralph, J., Boerjan, W. Lignin engineering. Current Opinion In Plant Biology. 11, 278-285 (2008).
  9. Lupoi, J. S., Singh, S., Parthasarathi, R., Simmons, B. A., Henry, R. J. Recent innovations in analytical methods for the qualitative and quantitative assessment of lignin. Renewable and Sustainable Energy Reviews. 49, 871-906 (2015).
  10. Mendu, V., et al. Identification and thermochemical analysis of high-lignin feedstocks for biofuel and biochemical production. Biotechnology for Biofuels. 4, 43 (2011).
  11. Shrotri, A., Kobayashi, H., Fukuoka, A., Song, C. . Advances in Catalysis. 60, 59-123 (2017).
  12. Brunow, G. . Biorefineries-Industrial Processes and Products: Status Quo and Future Directions. 2, 151-163 (2008).
  13. Constant, S., et al. New insights into the structure and composition of technical lignins: a comparative characterisation study. Green Chemistry. , (2016).
  14. Shimada, N., Tsuyama, T., Kamei, I. Rapid Determination of Thioglycolic Acid Lignin for Various Biomass Samples. Mokuzai Gakkaishi. 65, 25-32 (2019).
  15. Li, X., Weng, J. K., Chapple, C. Improvement of biomass through lignin modification. The Plant Journal: For Cell and Molecular Biology. 54, 569-581 (2008).
  16. Ponnusamy, V. K., et al. A review on lignin structure, pretreatments, fermentation reactions and biorefinery potential. Bioresource Technology. 271, 462-472 (2019).
  17. Hatfield, R., Fukushima, R. S. Can Lignin Be Accurately Measured. Crop Science. 45, 832-839 (2005).
  18. Bolker, H., Somerville, N. Ultraviolet spectroscopicstudies of lignin in solid state. I. Isolated lignin preparations. Tappi Journal. 72, 826-829 (1962).
  19. Fergus, B. J., Goring, D. A. I. The distribution of lignin in birchwood as determined by ultraviolet microscopy. Holzforschung. 24, 118-124 (1970).
  20. Schultz, T. P., Templeton, M. C., McGinnis, G. D. Rapid determination of lignocellulose by diffuse reflectance Fourier transform infrared spectrometry. Analytical Chemistry. 57, 2867-2869 (1985).
  21. Dence, C. W., Lin, S. Y., Dence, C. W. The Determination of Lignin. Methods in Lignin Chemistry. , (1992).
  22. Adler, E. Lignin chemistry-past, present and future. Wood Science and Technology. 11, 169-218 (1977).
  23. Brinkmann, K., Blaschke, L., Polle, A. Comparison of different methods for lignin determination as a basis for calibration of near-infrared reflectance spectroscopy and implications of lignoproteins. Journal of Chemical Ecology. 28, 2483-2501 (2002).
  24. Pandey, M. P., Kim, C. S. Lignin Depolymerization and Conversion: A Review of Thermochemical Methods. Chemical Engineering & Technology. 34, 29-41 (2011).
  25. Moreira-Vilar, F. C., et al. The acetyl bromide method is faster, simpler and presents best recovery of lignin in different herbaceous tissues than Klason and thioglycolic acid methods. PLoS One. 9, 110000 (2014).
  26. Hatfield, R. D., Grabber, J., Ralph, J., Brei, K. Using the Acetyl Bromide Assay To Determine Lignin Concentrations in Herbaceous Plants: Some Cautionary Notes. Journal of Agricultural and Food Chemistry. 47, 628-632 (1999).
  27. Suzuki, S., et al. High-throughput determination of thioglycolic acid lignin from rice. Plant Biotechnology. 26, 337-340 (2009).
  28. Nakatsubo, F., Tanahashi, M., Higuchi, T. Acidolysis of Bamboo Lignin II : Isolation and Identification of Acidolysis Products. Wood research. 53, 9-18 (1972).
  29. Aro, T., Fatehi, P. Production and Application of Lignosulfonates and Sulfonated Lignin. ChemSusChem. 10, 1861-1877 (2017).
  30. Frei, M. Lignin: Characterization of a Multifaceted Crop Component. The Scientific World Journal. 2013, 436517 (2013).
  31. Lora, J. H., Glasser, W. G. Recent Industrial Applications of Lignin: A Sustainable Alternative to Nonrenewable Materials. Journal of Polymers and the Environment. 10, 39-48 (2002).
  32. Wang, R., Zhou, B., Wang, Z. Study on the Preparation and Application of Lignin-Derived Polycarboxylic Acids. Journal of Chemistry. 2019, 5493745 (2019).
  33. Welker, C. M., et al. Engineering Plant Biomass Lignin Content and Composition for Biofuels and Bioproducts. Energies. 8, 7654-7676 (2015).
  34. Mendu, V., et al. Global bioenergy potential from high-lignin agricultural residue. Proceedings of the National Academy of Sciences. 109, 4014-4019 (2012).
  35. Brinkmann, K., Blaschke, L., Polle, A. Comparison of Different Methods for Lignin Determination as a Basis for Calibration of Near-Infrared Reflectance Spectroscopy and Implications of Lignoproteins. Journal of Chemical Ecology. 28, 2483-2501 (2002).
  36. Moreira-Vilar, F. C., et al. The Acetyl Bromide Method Is Faster, Simpler and Presents Best Recovery of Lignin in Different Herbaceous Tissues than Klason and Thioglycolic Acid Methods. PLoS One. 9, 110000 (2014).
  37. Iwaasa, A. D., Beauchemin, K. A., Acharya, S. N., Buchanan-Smith, J. G. Effect of stage of maturity and growth cycle on shearing force and cell wall chemical constituents of alfalfa stems. Canadian Journal of Animal Science. 76, 321-328 (1996).
  38. Arai-Sanoh, Y., et al. Genotypic Variations in Non-Structural Carbohydrate and Cell-Wall Components of the Stem in Rice, Sorghum, and Sugar Vane. Bioscience, Biotechnology, and Biochemistry. , 1105072478 (2011).

Play Video

Cite This Article
Dampanaboina, L., Yuan, N., Mendu, V. Estimation of Plant Biomass Lignin Content using Thioglycolic Acid (TGA). J. Vis. Exp. (173), e62055, doi:10.3791/62055 (2021).

View Video