JoVE Journal > Biochemistry
Summary
Abstract
Introduction
Protocol
Results
Discussion
Disclosures
Acknowledgements
Materials
References
Nederlands

Automatically Generated
Please note that all translations are automatically generated. Click here for the English version.
Biochemistry

Kristallisatie en structurele bepaling van een enzym: substraatcomplex door seriële kristallografie in een veelzijdige microfluïdische chip

Published: March 20, 2021
doi:
10.3791/61972
, , , , , , , , , ,
1Université de Strasbourg, Architecture et Réactivité de l’ARN, UPR 9002, CNRS,Institut de Biologie Moléculaire et Cellulaire, 2Biochemistry and Molecular Biology, Institute for Biochemistry,Leipzig University, 3Paul Scherrer Institute, Swiss Light Source, 4European XFEL GmbH

Summary

Een veelzijdig microfluïdisch apparaat wordt beschreven dat de kristallisatie van een enzym mogelijk maakt met behulp van de contradiffusiemethode, de introductie van een substraat in de kristallen door weken en de 3D-structuurbepaling van het enzym: substraatcomplex door een seriële analyse van kristallen in de chip bij kamertemperatuur.

Abstract

De voorbereiding van goed diffracting kristallen en hun behandeling vóór hun röntgenanalyse zijn twee kritieke stappen van biokristallografische studies. We beschrijven een veelzijdige microfluïdische chip die de productie van kristallen mogelijk maakt door de efficiënte methode van tegendiffusie. De convectievrije omgeving van de microfluïdische kanalen is ideaal voor kristalgroei en nuttig om een substraat te verspreiden naar de actieve plaats van het kristallijne enzym. Hier pasten we deze benadering toe op het CCA-toevoegende enzym van de psychrofiele bacterie Planococcus halocryophilus in het gepresenteerde voorbeeld. Na kristallisatie en substraatdiffusie/weken werd de kristalstructuur van het enzym:substraatcomplex bij kamertemperatuur bepaald door seriële kristallografie en de analyse van meerdere kristallen direct in de chip. De hele procedure behoudt de echte diffractie-eigenschappen van de monsters omdat deze geen kristalverwerking vereist.

Introduction

Kristallografie is een methode om de 3D-architectuur van biologische macromoleculen te ontcijferen. Dit laatste is belangrijk om te begrijpen hoe een enzym zijn substraten selecteert en verwerkt. De bepaling van een kristalstructuur vereist de kristallisatie van het doelmacromolecule en de conditionering van de kristallen voor hun analyse door röntgendiffractie1. Zowel kristalvoorbereiding als -behandeling zijn cruciale maar delicate stappen die de kristalkwaliteit en diffractie-eigenschappen kunnen beïnvloeden, en dus de resolutie (d.w.z. de nauwkeurigheid) van de resulterende 3D-structuur. Om de voorbereiding van hoogwaardige kristallen te vergemakkelijken en onnodige handling te elimineren om hun diffractie-eigenschappen te behouden, hebben we een gebruiksvriendelijk en veelzijdig microfluïdisch apparaat ontworpen genaamd ChipX2,3,4.

In dit artikel laten we zien hoe we de eiwitoplossing in ChipX-kanalen kunnen laden met behulp van conventioneel laboratoriummateriaal om kristallen te bereiden door tegendiffusie. Deze kristallisatiemethode biedt een efficiënte screening van de oververzadiging en van mogelijke nucleatieomstandigheden langs de microfluïdische kanalen die de enzymoplossing bevatten als gevolg van de concentratiegradiënt die wordt gegenereerd door de diffusie van het kristalliserende middel5,6.

De chipopstelling is eenvoudig, het gebruikt alleen standaard laboratoriumpijpen en vereist geen dure apparatuur. Wanneer kristallen in ChipX zijn gegroeid, kunnen liganden van het enzym worden geïntroduceerd door diffusie. Diffractiegegevens worden vervolgens bij kamertemperatuur verzameld op een reeks kristallen in de kanalen van de chip met behulp van een synchrotron-röntgenbron. De hier beschreven structurele studie leidde tot de bepaling van structuren van een tRNA-rijpingsenzym in zijn apo-vorm en in complex met een analoog van zijn CTP-substraat geïntroduceerd door weken. Dit eiwit genaamd CCA-toevoegend enzym polymeriseert de CCA trinucleotide staart aan het 3′ einde van tRNA’s. De vergelijking van de twee 3D-beelden verkregen door seriële kristallografie onthult de lokale conformationele veranderingen in verband met de binding van de ligand in omstandigheden die fysiologischer zijn dan die gebruikt in cryo-kristallografie. Het protocol dat in deze video wordt beschreven, is algemeen van toepassing op elk biomolecule, of het nu een eiwit, een nucleïnezuur of een complex met meerdere componenten is.

Protocol

1. Kristallisatietests instellen in ChipX OPMERKING: Het ChipX microfluïdische apparaat kan worden verkregen van de auteurs. Een beschrijving van de chip is gegeven in figuur 1. Oplossingen die het kristallant (of kristalliserende middel) bevatten dat wordt gebruikt om kristallisatie te activeren, kunnen van commerciële oorsprong zijn of door de experimenteerder worden bereid. Het biomoleculemonster ladenOPMERKING: Het monstervolume dat daadwerkelijk nodig is om een individuele tegendiffusietest uit te voeren in het rechte gedeelte van elk kanaal van ChipX is 300 nL. Voor het gemak raden we echter aan om 5 μL te laden om de acht kanalen volledig te vullen, rekening houdend met de variabele lengte van hun gebogen sectie en dode volumes in te voeren. Pipet 5 μL enzymoplossingen met standaard 10 μL pipet en tip. Breng de punt verticaal in de monsterinlaat en injecteer de oplossing totdat de acht kanalen tot aan het andere uiteinde zijn gevuld (ingang van het kristallant reservoir). Injecteer 1 μL paraffineolie in de monsterinlaat om de kanalen van elkaar los te koppelen. Recupereer de extra oplossing in het kristallant reservoir aan de uiteinden van elk kanaal met behulp van een standaard 10 μL pipet. Sluit de monsterinlaat af met een stuk tape van 1 cm x 1 cm. Het laden van de kristallisatieoplossingen Pipet 5 μL kristallisatieoplossing met standaard 10 μL pipet en tip. Het reservoirvolume is 10 μL, maar het laden van slechts de helft ervan voorkomt overloop bij het afdichten met tape en vergemakkelijkt verdere toevoeging van ligand voor wekende experimenten. Als de initiële kristallisatieomstandigheden werden verkregen door dampdiffusie, verhoogt u de kristallantconcentratie met een factor 1,5 – 2. Oplossingen kunnen in elk reservoir anders zijn (in het gepresenteerde geval werd overal 1 M diammoniumwaterstoffosfaat, 100 mM natriumacetaat, pH 4,5 gebruikt). Oriënteer de pipetpunt naar de ingang van het kanaal in het trechtervormige deel van het reservoir om de vorming van een luchtbel bij oplossingsafzetting te voorkomen. Het zou het contact tussen de twee oplossingen en kristallante diffusie in het kanaal voorkomen. Injecteer de kristallante oplossing in het reservoir. Sluit de reservoirs af met een stuk tape van 2,5 cm x 1 cm. Incubeer de chip bij 20 °C (temperatuur kan worden aangepast afhankelijk van het doel, meestal tussen 4 en 37 °C 4). 2. Eiwitetikettering met carboxyrhodamine voor fluorescentiedetectie OPMERKING: Deze stap is optioneel. Het moet vóór het laden van monsters worden uitgevoerd om de detectie van kristallen in de chip met fluorescentie te vergemakkelijken. De gedetailleerde methode van tracering fluorescerende etikettering werd beschreven door Pusey en collega’s7. Alle stappen worden uitgevoerd bij kamertemperatuur. Los 5 mg carboxyrhodamineesterpoeder op in 1 ml watervrij dimethyl-formamide, splits de oplossing in 0,6 μL aliquots die bij -20 °C moeten worden bewaard. Bereid een 1 M Na-borate pH 8,75 voorraadoplossing voor. Verdun het bestand om de reactiebuffer voor te bereiden op 0,05 M Na-boraat pH 8,75. Spoel een ontkalkingskolom (7 kDa MWCO, 0,5 ml) af met 800 μL reactiebuffer. Centrifugeer de kolom gedurende 1 minuut bij 1400 x g, verwijder het filtraat. Herhaal deze handeling tweemaal (stap 2.4-2.5) om de kolom te wassen. Deponeer 80 μL eiwit in de opslagbuffer op de kolom (het eiwit kan worden verdund tot 1 mg/ml om het volume indien nodig te verhogen). Centrifugeer de kolom gedurende 1 min bij 1400 x g. Deze stap is bedoeld om het eiwit over te brengen van de opslagbuffer naar de reactiebuffer. Herstel de doorstroming (met het eiwit in de reactiebuffer) en meng deze met 0,6 μL carboxyrhodamineoplossing. Incubeer 5 min bij kamertemperatuur. Spoel ondertussen de kolom 3 x af met de opslagbuffer, centrifugeer de kolom gedurende 1 minuut op 1400 x g en gooi het filtraat weg. Deponeer de reactieoplossing op de kolom. Centrifugeer de kolom gedurende 1 min bij 1400 x g en recupereer de doorstroom (d.w.z. oplossing van gelabeld eiwit in de opslagbuffer). Vul de bouillon-eiwitoplossing aan met 0,1-1 % (w/w) gelabeld eiwit. Stel de ChipX-kristallisatietests in zoals beschreven in sectie 1. Controleer op de aanwezigheid van eiwitkristallen in de tests door de fluorescerende sonde te opwindend te maken met een lichtbron met een golflengte van 520 nm. 3. Kristalobservatie OPMERKING: Het ChipX-apparaat mag zonder speciale zorg worden behandeld, zelfs met kristallen erin, behalve als de temperatuur moet worden geregeld. Gebruik een stereomicroscoop om de uitkomst van kristallisatietests in ChipX te controleren. De voetafdruk heeft de standaardafmetingen van microscoopdia’s en is compatibel met elk systeem en schuifhouder. Controleer het gehalte aan microfluïdische kanalen vanaf het reservoir waar de kristallantconcentratie het hoogst is tot de monsterinlaat waar de kristallantconcentratie het laagst is. Het ChipX-materiaal is transparant voor zichtbaar licht, compatibel met het gebruik van polarisatoren, evenals met UV-verlichting voor de identificatie van eiwitkristal door intrinsieke tryptofaanfluorescentie8. Neem kristalposities op met behulp van de labels die langs de kanalen zijn in reliëf gemaakt of markeer kristallocaties met een permanente markering door kleurpunten ernaast op het spaanoppervlak te tekenen. 4. Kristal weken met liganden OPMERKING: Deze procedure is optioneel. Het wordt gebruikt om liganden, enzymsubstraten of zware atomen in de kristallen te introduceren en moet ten minste 24-48 uur vóór röntgenanalyse worden uitgevoerd om de samengestelde diffusie langs de kanalen en in de kristallen mogelijk te maken. Verwijder voorzichtig de afdichtingstape uit de reservoirs. Voeg tot 5 μL ligandoplossing toe in een of meer reservoirs met behulp van een 10 μL micropipet (in het voorbeeld 3 μL van 10 mM cytidine-5′-[(α,β)-methyleno] trifosfaatoplossing (CMPcPP) werd toegevoegd om een uiteindelijke concentratie van 3,75 mM te bereiken). CMPcPP is een niet-hydrolizable analoog van CTP, een natuurlijk substraat van het enzym. Sluit de reservoirs af met een stuk tape van 2,5 cm x 1 cm. Incubeer de chip gedurende 24-48 uur onder gecontroleerde temperatuur om liganddiffusie langs de kanalen van de chip mogelijk te maken. 5. Kristalanalyse door seriële kristallografie OPMERKING: Dit deel van het protocol moet worden aangepast aan de beamline-instelling en de diffractie-eigenschappen van de kristallen. Alleen algemene indicaties worden gegeven voor de kristallografische analyse op basis van experimenten uitgevoerd bij X06DA beamline (SLS, Villigen, Zwitserland). ChipX montage op de beamline goniometerOPMERKING: Het bestand voor 3D-printen van de ChipX-houder is voorzien in ref4. Schakel de cryostraal van de straallijn uit. De analyse wordt hier uitgevoerd bij kamertemperatuur. Monteer de ChipX op een speciale houder met het kanaal met de te analyseren kristallen in het midden van de houder. DeChipX-houder 4 heeft geen schroef of extra onderdeel nodig, omdat deze is ontworpen om een perfecte pasvorm voor ChipX te bieden. Bevestig de houder aan de goniometer. Gegevensverzameling Oriënteer de dikste laag (bovenste laag, figuur 1) van ChipX (in deze oriëntatie zijn labels langs de kanalen direct leesbaar met behulp van de centreercamera van de bundellijn), naar de directe straal en het dunste vlak achter het kristal om de demping van het diffracted signaal zoals beschreven in ref3te minimaliseren. Om botsing van ChipX met het omringende materiaal (beamstop, collimator) te voorkomen, beperkt u goniometerbewegingen in het bereik ±30° (0° overeenkomend met de kanalen loodrecht op de röntgenstraal). Zoek de positie van kristallen met behulp van de labels die langs de kanalen zijn geslepen. Selecteer een kristalpositie. Centreer het kristal op standaard lage dosis raster/rasterscreening of 1-klikprocedure (de video toont een voorbeeld van rasterscreening). Verzamel diffractiegegevens binnen het bereik -30° / +30°. Start de procedure opnieuw in stap 5.2.4-5.2.6 op een ander kristal in hetzelfde kanaal na vertaling van de chip. Pas handmatig een ander ChipX-kanaal in het midden van de houder opnieuw uit en voer de gegevensverzameling uit op kristallen die in dit kanaal aanwezig zijn. Gebruik standaard kristallografische pakketten en procedures om de gegevens te verwerken en samen te voegen en vervolgens om de structuur op te lossen en te verfijnen.

Representative Results

De hier beschreven microfluïdische chip is ontworpen om eenvoudige installatie van kristallisatietests en kristalanalyse bij kamertemperatuur mogelijk te maken. De hierboven beschreven procedure en in de video werd toegepast in het kader van de structurele karakterisering van het CCA-toevoegende enzym van de koud aangepaste bacterie Planococcus halocryophilus. Dit enzym behoort tot een essentiële polymerasefamilie die de sequentiële toevoeging van de 3′ CCA-reeks op tRNA ‘s katalyseert met behulp van CTP en ATP9,10. De chip werd voor het eerst gebruikt om kristallen van het enzym voor te bereiden voor structurele analyse volgens de methode van tegendiffusie. Hiertoe werd de enzymoplossing in de acht microfluïdische kanalen (kristallisatiekamers) geladen door een enkele injectie in de monsterinlaat van de chip (zie figuur 1). Het enzym werd gebruikt bij 5,5 mg/ml in de opslagbuffer met 20 mM Tris/HCl pH 7,5, 200 mM NaCl en 5 mM MgCl2. Deze stap werd handmatig uitgevoerd met een standaard 10 μL micropipet. Kristallisatieoplossingen (100 mM natriumacetaat pH 4,5,1 M diammoniumwaterstoffosfaat) werden vervolgens afgezet in de reservoirs aan de andere uiteinden van de kanalen. De laadprocedure is eenvoudig en duurt niet langer dan vijf minuten (figuur 2). Het kristallant verspreidt zich vervolgens in de kanalen, creëert een concentratiegradiënt die kristalkernatie en groei activeert. Deze gradiënt evolueert dynamisch en verkent een continuüm van oververzadigingstoestanden5,6 tot het bereiken van een evenwicht van kristallantconcentratie tussen de kanalen en het reservoir. Kristallisatietests worden meestal gecontroleerd onder de micoscoop gedurende een periode van 2 – 4 weken om de groei van kristallen te volgen. Bipyramidale kristallen van CCA-toevoegend enzym verschenen door de kanalen na een paar dagen incubatie bij 20 °C (Figuur 3). De optionele fluorescerende etikettering7 van het eiwit vergemakkelijkt de identificatie van eiwitkristallen en hun discriminatie van zoutkristallen aanzienlijk (figuur 4). We maakten gebruik van de diffusieve omgeving in chipkanalen om een substraat te leveren aan het enzym dat de kristallen opbouwt. In dit geval werd CMPcPP, een CTP-analoog, toegevoegd aan de reservoiroplossingen bij een uiteindelijke concentratie van 3,75 mM (figuur 5). Deze toevoeging werd twee dagen voor de kristallografische analyse uitgevoerd om CMPcPP in staat te stellen de katalytische plaats van het enzym te bereiken en te bezetten, zoals later bevestigd door de kristalstructuur (zie hieronder). Wij vervaardigden een spaanhouder(figuur 6)in polymelkzuur met behulp van een 3D-printer. De houder maakt spaanmontage op goniometers mogelijk met behulp van standaard magnetische koppen. Daarom kan de chip eenvoudig in de röntgenstraal worden geplaatst en vertaald om de kristallen in diffractiepositie te brengen. De strategie voor het verzamelen van gegevens moet worden aangepast aan de kenmerken van de straallijn en de kristaleigenschappen. In het geval van het CCA-toevoegende enzym werden gegevens verzameld bij X06DA- en X10SA-bundellijnen, Swiss Light Source (SLS), met een röntgengolflengte van respectievelijk 1,0 Å- en Pilatus 2M-F- en 6M-pixeldetectoren. 30-60° rotatie werd verzameld op elk kristal bij kamertemperatuur met beelden van 0,1° of 0,2° en 0,1 s belichting (zie tabel 1). Gedeeltelijke datasets werden individueel verwerkt en gesneden toen de resolutie van diffractiepatronen begon te rotten als gevolg van stralingsschade (gedetecteerd door de afname van de signaal-ruisverhouding en CC1/2, en een toename van R-meas in de hoge resolutieschaal). Volledige datasets werden gereconstitueerd door gegevens van 5 kristallen samen te voegen (tabel 1). Kristalstructuren werden afgeleid door moleculaire vervanging met behulp van standaard kristallografische verpakkingen en procedures voor gegevensverwerking11 en verfijning12. De vergelijking van de structuren van het enzym en van het complex ervan met CMPcPP onthult de lokale conformatieaanpassing die gepaard gaat met substraatbinding op de actieve plaats van het CCA-toevoegende enzym (figuur 7). Figuur 1: ChipX ontwerp. De chip bestaat uit een toplaag van COC (dikte: 1 mm) waarin acht microfluïdische kanalen en reservoirs zijn ingeprent. De gehele chip is afgedicht met een laag COC (dikte: 0,1 mm). Alle kanalen zijn aangesloten op één inlaat aan de linkerkant voor gelijktijdige monsterinjectie en op individuele reservoirs aan de rechterkant waarin kristallisatieoplossingen worden afgezet. De kanalen, die de werkelijke kristallisatiekamers van de chip vormen, zijn 4 cm lang en hebben een doorsnede van 80 μm x 80 μm. Labels (A1, A2, A3, enz.) die langs de kanalen zijn geviseerd, vergemakkelijken de kristalpositionering onder de microscoop en het opstellen van een monsterlijst voor het verzamelen van gegevens. ChipX heeft de grootte van een standaard microscoopschuif (7,5 cm x 2,5 cm). Klik hier om een grotere versie van deze figuur te bekijken. Figuur 2: Kristallisatietests instellen in ChipX. 1) Afzetting 5-6 μL enzymoplossingen met behulp van standaard 10 μL pipet en tip. 2) Breng de punt verticaal in de monsterinlaat en injecteer de oplossing in de acht kanalen. 3) Pipet 1 μL paraffineolie. 4) Breng de punt verticaal in de monsterinlaat en injecteer de olie om de kanalen van elkaar los te koppelen. 5) Sluit de inlaat af met een stuk tape. 6) Pipet 5 μL kristallisatieoplossing met standaard 10 μL pipet en tip. Oplossingen kunnen in elk reservoir anders zijn (bijv. van een screeningkit). 7) Oriënteer de pipetpunt naar de ingang van het kanaal in het trechtervormige deel van het reservoir (om de vorming van een luchtbel bij oplossingsdepositie te voorkomen) en injecteer de kristallante oplossing in het reservoir. 8) Sluit de reservoirs af met een stuk tape en incubeer de chip op gecontroleerde temperatuur. Klik hier om een grotere versie van deze figuur te bekijken. Figuur 3: Kristallen van CCA-toevoegend enzym geteeld door tegendiffusie in de microfluïdische kanalen van ChipX. Schaalbalk is 0,1 mm. Klik hier om een grotere versie van deze figuur te bekijken. Afbeelding 4: Kristalweekprocedure. 1) Verwijder de tape voorzichtig uit de reservoirs. 2) Deponeer tot 5 μL ligandoplossing met behulp van een micropipet van 10 μL. 3) Voeg de ligand toe aan een of meerdere reservoirs. 4) Sluit de reservoirs opnieuw af met een stuk tape en incubeer de chip onder gecontroleerde temperatuur gedurende 24-48 uur vóór het verzamelen van gegevens. Klik hier om een grotere versie van deze figuur te bekijken. Figuur 5: Tracering fluorescerende etikettering discrimineert eiwit (links) uit zout (rechts) kristallen. De CCA-toevoegende enzymoplossing bevatte 0,4 % (w/w) eiwit geëtiketteerd met carboxyrhodamine. Aan de rechterkant worden kristallen verlicht met een 520 nm golflengte lichtbron en het beeld wordt genomen met een laagdoorlaatfilter bij 550 nm (LP550); (inset) structuur van carboxyrhodamine-succinimidylester. Klik hier om een grotere versie van deze figuur te bekijken. Figuur 6: (Links) Tekening van de ChipX houder en (Rechts) ChipX gemonteerd op de goniometer van beamline X06DA bij SLS (Villigen, Zwitserland) voor seriële kristal analyse. Klik hier om een grotere versie van deze figuur te bekijken. Figuur 7: Vergelijking van CCA-toevoegende enzym actieve site in de apo-vorm (in roze) en in het complex met een CTP analoog (in groen). Hoewel de algehele exterieur van het enzym niet wordt beïnvloed, gaat de binding van de CMPcPP-ligand gepaard met een lichte reorganisatie van zijketens op de actieve locatie. De 2Fo-Fc elektronendichtheidskaart (in blauw) is gevormd op 1,2 sigma. Het verschil elektronendichtheidskaart gevormd bij 4 sigma (in groen) bevestigt de aanwezigheid van de ligand op de actieve site. Klik hier om een grotere versie van deze figuur te bekijken. Gekristalliseerd monster CCA-toevoegend enzym CCA-toevoegend enzym + CMPcPP Kristalanalyse Röntgenstraallijn SLS – X06DA SLS – X10SA Golflengte (Å) 1.000 1.000 Temperatuur (K) 293 293 Detector Pilatus 2m-f Pilatus 6M Afstand kristaldetector (mm) 300 400 Verzamelde kristallen 6 14 Geselecteerde kristallen 5 5 Rotatiebereik per afbeelding (°) 0.1 0.2 Belichtingstijd per afbeelding(en) 0.1 0.1 Nee. van geselecteerde afbeeldingen 1000 540 Totaal rotatiebereik (°) 100 108 Ruimtegroep P43212 P43212 a, c (Å) 71.5, 293.8 71.4, 293.6 Gemiddelde mozaïekiteit (°) 0.04 0.04 Resolutiebereik (Å) 46 – 2.54 (2.6 – 2.54) 48 – 2.3 (2.4 – 2.3) Totaal nr. van reflecties 176105 (9374) 232642 (32937) Nee. van unieke reflecties 23922 (1598) 34862 (4066) Volledigheid (%) 90.6 (84.6) 99.5 (100.0) Redundantie 7.5 (6.0) 6.7 (8.1) 8.1 (1.3) 6.9 (0.7) Rmeas (%) § 18.6 (126.0) 18.0 (231.2) CC1/2 (%) £ 98.7 (55.0) 98.7 (46.9) Algemene B-factor van Wilson plot (Å2) 57.4 60.6 Kristallografische verfijning Nee. van reflecties, werkset / testset 23583 / 1180 34840 / 3405 Finale Rcryst (%) / Rvrij (%) 18.8 / 21.4 20.0 / 22.9 Nee. van niet-H-atomen: algemeen / eiwit / ligand / oplosmiddel 2998 / 2989 / 0 / 9 3057 / 2989 / 29 / 10 R.m.s. afwijkingen voor bindingen (Å) / hoeken (°) 0.009 / 1.23 0.010 / 1.22 Gemiddelde B-factoren (Å2):algemeen / eiwit / ligand / oplosmiddel 60.1 / 60.1 / 0 / 52.7 62.5 / 62.6 / 60.1 / 55.5 Ramachandran plot: meest favoriete (%) / toegestaan (%) 98.1 / 1.9 97.2 /  2.8 PDB-id 6IBP 6Q52 Tabel 1: Statistieken voor het verzamelen en verfijnen van gegevens § Redundantieonafhankelijke Rmeas = Σhkl(N/N-1)1/2Σi | Ii(hkl)- <I(hkl)>| / ΣhklΣi I(hkl), waarbij N de gegevens veelheid 17is . £ Gegevens met een laag in de buitenschaal ( 50%) zoals voorgesteld door Karplus & Diederichs 18.

Discussion

De huidige protocollen in de biokristallografie omvatten de bereiding van kristallen met behulp van methoden zoals dampdiffusie of batch13,14, en hun overdracht in een microloop voor cryokoeling15,16 voordat de diffractieanalyse in een stikstofstraal bij cryogene omstandigheden wordt uitgevoerd. Directe kristal cryo-koeling is daarentegen niet mogelijk in ChipX3 en kristallen kunnen niet worden geëxtraheerd uit hun microfluïdische kanaal, wat kan worden gezien als beperkingen van deze opstelling. Het protocol dat in het artikel wordt beschreven, biedt echter een volledig geïntegreerde pijpleiding voor de bepaling van kristalstructuren bij kamertemperatuur (d.w.z. in meer fysiologische omstandigheden). Hoewel het verzamelen van gegevens bij kamertemperatuur een toename van stralingsschadeveroorzaakt 19, wordt dit effect gecompenseerd door een snelle tijd voor het verkrijgen van gegevens (er wordt maximaal 60° rotatie op elk kristal verzameld) en door het samenvoegen van verschillende gedeeltelijke datasets. Zowel het ChipX-ontwerp als het materiaal zijn geoptimaliseerd om achtergrondverstrooiing en diffractiesignaaldemping3te verminderen , en gegevensverzameling kan worden uitgevoerd op kristallen met afmetingen die gelijk zijn aan de helft van de grootte van de kanalen (40 μm)4.

Samenvattend zijn de belangrijkste voordelen van het protocol de volgende. De kristallen worden geproduceerd in een convectievrije omgeving (microfluïdische kanalen), wat zeer gunstig is voor de groei van hoogwaardige kristallen. De in ChipX geïmplementeerde contradiffusiemethode is zeer efficiënt in het screenen van het oververzadigingslandschap; de diffusie van kristallanten in het spaankanaal creëert een concentratie – en oververzadigingsgolf die helpt bij het bepalen van de juiste nucleatie – en groeiomstandigheden5. Kristallen worden nooit direct behandeld, maar worden ter plaatse geanalyseerd in de chip, die hun echte diffractie-eigenschappen behoudt (d.w.z. de kristalmozaïekiteit niet verandert door fysieke interactie of cryocooling)20. De diffractieanalyse wordt uitgevoerd op een reeks kristallen verdeeld over de chipkanalen met lage dosisblootstelling om stralingsschade te minimaliseren, en een volledige dataset wordt geassembleerd door gedeeltelijke gegevens uit de serie samen te voegen. De standaardvoetafdruk en het eenvoudige ontwerp van ChipX zullen in de toekomst een volledige automatisering van in situ gegevensverzameling mogelijk maken met behulp van synchrotron- of XFEL-faciliteiten. Alle stappen van het protocol worden uitgevoerd in ChipX. Vanuit het oogpunt van de experimenteerer is chipopstelling eenvoudig en eenvoudig uit te voeren met standaard pipetten en heeft u geen extra apparatuur nodig. De boomachtige kanaalverbinding bij de monsterinlaat minimaliseert dode volumes in het systeem, wat belangrijk is bij het werken met monsters die moeilijk te zuiveren zijn of die slechts in beperkte hoeveelheid beschikbaar zijn.

Kortom, de lab-on-a-chip-aanpak die in ChipX wordt geïmplementeerd, vereenvoudigt en minimaliseert het kristallisatieproces efficiënt door tegendiffusie en kristalstructuurbepaling, waardoor het mogelijk is om in één apparaat van het monster naar de 3D-structuur te gaan. Het is breed toepasbaar en biedt een gebruiksvriendelijke, kosteneffectieve oplossing voor routinematige seriële biokristallografieonderzoeken bij kamertemperatuur.

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

De auteurs erkennen de Zwitserse lichtbron (Villigen, Zwitserland) voor de toewijzing van beamtime aan het project op de beamlines X10SA (PXII) en X06DA (PXIII), Alexandra Bluhm voor haar bijdrage aan de verfijning van de structuur, Clarissa Worsdale voor de opname van de voice-over en François Schnell (Université de Strasbourg) voor zijn hulp bij videobewerking en SFX. Dit werk werd ondersteund door het Franse Centre National de la Recherche Scientifique (CNRS), de Universiteit van Straatsburg, het LabEx-consortium “NetRNA” (ANR-10-LABX-0036_NETRNA), een phd-financiering aan R.dW van het Excellence-initiatief (IdEx) van de Universiteit van Straatsburg in het kader van het Franse nationale programma “Investissements d’Avenir”, een phd-financiering aan K.R. van de Frans-Duitse universiteit (UFA-DFH, subsidienr. CT-30-19), de Deutsche Forschungsgemeinschaft (subsidienr. ma 634/10-1). De auteurs profiteerden van het procope Hubert Curien samenwerkingsprogramma (Frans ministerie van Buitenlandse Zaken en Deutscher Akademischer Austauschdienst).

Materials

Axioscope A1 stereomicroscope Zeiss Crystal observation  (step 3)
Carboxyrhodamine succinimidyl ester Invitrogen C-6157 Protein labeling (step 2)
CMPcPP Jena Bioscience NU-438 Crystal soaking (step 4)
Crystal clear sealing tape Hampton research HR3-511 ChipX sealing  (step 1)
Parafin oil Hampton research HR3-411 ChipX loading  (step 1)
Ultimaker 2 extended+ Ultimaker 3D printer – Representative results
UV light source Xtal Concepts Gmbh XtalLight100c Crystal observation  (step 3)
Zeba spin desalting column 7K MWCO ThermoFisher Scientific 89882 Protein labeling  (step 2)
DOWNLOAD MATERIALS LIST

References

  1. Giegé, R., Sauter, C. Biocrystallography: past, present, future. HFSP Journal. 4 (3-4), 109-121 (2010).
  2. Dhouib, K., et al. Microfluidic chips for the crystallization of biomacromolecules by counter-diffusion and on-chip crystal X-ray analysis. Lab on a Chip. 9 (10), 1412-1421 (2009).
  3. Pinker, F., et al. ChipX: A Novel Microfluidic Chip for Counter-Diffusion Crystallization of Biomolecules and in Situ Crystal Analysis at Room Temperature. Crystal Growth & Design. 13 (8), 3333-3340 (2013).
  4. de Wijn, R., et al. A simple and versatile microfluidic device for efficient biomacromolecule crystallization and structural analysis by serial crystallography. IUCrJ. 6 (3), 454-464 (2019).
  5. García-Ruiz, J. M. A supersaturation wave of protein crystallization. Journal of Crystal Growth. 232 (1-4), 149-155 (2001).
  6. Otálora, F., Gavira, J. A., Ng, J. D., García-Ruiz, J. M. Counterdiffusion methods applied to protein crystallization. Progress in Biophysics and Molecular Biology. 101 (1-3), 26-37 (2009).
  7. Pusey, M., Barcena, J., Morris, M., Singhal, A., Yuan, Q., Ng, J. Trace fluorescent labeling for protein crystallization. Acta Crystallographica Section F Structural Biology Communications. 71 (7), 806-814 (2015).
  8. Meyer, A., Betzel, C., Pusey, M. Latest methods of fluorescence-based protein crystal identification. Acta Crystallographica Section F Structural Biology Communications. 71 (2), 121-131 (2015).
  9. Betat, H., Rammelt, C., Mörl, M. tRNA nucleotidyltransferases: ancient catalysts with an unusual mechanism of polymerization. Cellular and Molecular Life Sciences. 67 (9), 1447-1463 (2010).
  10. Ernst, F. G. M., Erber, L., Sammler, J., Jühling, F., Betat, H., Mörl, M. Cold adaptation of tRNA nucleotidyltransferases: A tradeoff in activity, stability and fidelity. RNA Biology. 15 (1), 144-155 (2018).
  11. Kabsch, W. XDS. Acta Crystallographica. Section D, Biological Crystallography. 66 (2), 125-132 (2010).
  12. Adams, P. D., et al. PHENIX: a comprehensive Python-based system for macromolecular structure solution. Acta Crystallographica. Section D, Biological Crystallography. 66 (2), 213-221 (2010).
  13. Dessau, M. A., Modis, Y. Protein Crystallization for X-ray Crystallography. Journal of Visualized Experiments. (47), e2285 (2011).
  14. Sauter, C., Lorber, B., McPherson, A., Giegé, R., Arnold, E., Himmel, D. M., Rossmann, M. G. Crystallization – General Methods. International Tables of Crystallography, Vol. F, Crystallography of Biological Macromolecules. , 99-120 (2012).
  15. Garman, E. “Cool” crystals: macromolecular cryocrystallography and radiation damage. Current Opinion in Structural Biology. 13 (5), 545-551 (2003).
  16. Li, D., Boland, C., Aragao, D., Walsh, K., Caffrey, M. Harvesting and Cryo-cooling Crystals of Membrane Proteins Grown in Lipidic Mesophases for Structure Determination by Macromolecular Crystallography. Journal of Visualized Experiments. (67), e4001 (2012).
  17. Diederichs, K., Karplus, P. A. Improved R-factors for diffraction data analysis in macromolecular crystallography. Nature Structural Biology. 4 (4), 269-275 (1997).
  18. Karplus, P. A., Diederichs, K. Linking Crystallographic Model and Data Quality. Science. 336 (6084), 1030-1033 (2012).
  19. de la Mora, E., Coquelle, N., Bury, C. S., Rosenthal, M., Holton, J. M., Carmichael, I., Garman, E. F., Burghammer, M., Colletier, J. -. P., Weik, M. Radiation damage and dose limits in serial synchrotron crystallography at cryo- and room temperatures. Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America. 117 (8), 4142-4151 (2020).
  20. Nave, C. A. Description of Imperfections in Protein Crystals. Acta Crystallographica. Section D, Biological Crystallography. 54 (5), 848-853 (1998).

Tags

CrystallizationStructural DeterminationEnzyme-substrate ComplexSerial CrystallographyMicrofluidic ChipCounter-diffusionIn Situ X-ray DiffractionBiomoleculeCrystal GrowthRoom Temperature Analysis

Play Video
PDF
DOI
DOWNLOAD MATERIALS LIST
Cite This Article
de Wijn, R., Rollet, K., Olieric, V., Hennig, O., Thome, N., Noûs, C., Paulus, C., Lorber, B., Betat, H., Mörl, M., Sauter, C. Crystallization and Structural Determination of an Enzyme:Substrate Complex by Serial Crystallography in a Versatile Microfluidic Chip. J. Vis. Exp. (169), e61972, doi:10.3791/61972 (2021).
Download Citation
Reprints and Permissions

View Video

✖

To prove you're not a robot, please enter the text in the image below

CAPTCHA Image
Play CAPTCHA Audio
Refresh Image