Dieses Protokoll beschreibt, wie optogenetische Experimente zur Kontrolle der Genexpression mit rotem und tiefrotem Licht unter Verwendung von PhyB und PIF3 durchgeführt werden können. Enthalten sind Schritt-für-Schritt-Anleitungen für den Aufbau eines einfachen und flexiblen Beleuchtungssystems, das die Steuerung der Genexpression oder anderer Optogenetik mit einem Computer ermöglicht.
Die Steuerung biologischer Prozesse mit Licht hat die Genauigkeit und Geschwindigkeit erhöht, mit der Forscher viele biologische Prozesse manipulieren können. Die optische Kontrolle ermöglicht eine beispiellose Fähigkeit, Funktionen zu analysieren, und birgt das Potenzial, neuartige Gentherapien zu ermöglichen. Optogenetische Experimente erfordern jedoch geeignete Lichtquellen mit räumlicher, zeitlicher oder Intensitätskontrolle, was für die Forscher oft ein Engpass darstellt. Hier erfahren Sie, wie Sie ein kostengünstiges und vielseitiges LED-Beleuchtungssystem bauen, das leicht an verschiedene verfügbare optogenetische Werkzeuge angepasst werden kann. Dieses System ist konfigurierbar für manuelle oder Computersteuerung mit einstellbarer LED-Intensität. Wir bieten eine illustrierte Schritt-für-Schritt-Anleitung für den Aufbau der Schaltung, die computergesteuerte Schaltung und den Aufbau der LEDs. Um die Montage dieses Geräts zu erleichtern, besprechen wir auch einige grundlegende Löttechniken und erklären die Schaltung, die zur Steuerung der LEDs verwendet wird. Mit unserer Open-Source-Benutzeroberfläche können Benutzer das präzise Timing und Pulsieren des Lichts auf einem PC oder einem kostengünstigen Tablet automatisieren. Diese Automatisierung macht das System nützlich für Experimente, die LEDs verwenden, um Gene, Signalwege und andere zelluläre Aktivitäten zu steuern, die sich über große Zeitskalen erstrecken. Für dieses Protokoll sind keine Vorkenntnisse in der Elektronik erforderlich, um alle benötigten Teile zu bauen oder das Beleuchtungssystem zur Durchführung optogenetischer Experimente zu verwenden.
Optogenetische Werkzeuge werden allgegenwärtig und es werden ständig neue Technologien entwickelt, um biologische Prozesse wie Genexpression, Zellsignalisierung und vieles mehr optisch zu steuern 1,2,3. Die Fähigkeit, zelluläre Prozesse mit Licht zu steuern, ermöglicht eine schnelle Kinetik, eine enge räumliche Kontrolle und eine dosisabhängige Regulierung, die durch Lichtintensität und Belichtungszeit gesteuert werden kann. Um diese Werkzeuge verwenden zu können, ist ein Gerät zur Steuerung dieser Parameter erforderlich. Wir haben kürzlich einen genetisch kodierten PhyB-PIF3-Genschalter für Säugetiere entwickelt, der Gene mit rotem/tiefrotem Licht reversibel aktiviert und deaktiviert4. Dieses System wurde in mehreren Säugetierzelllinien getestet und ermöglichte die beispiellose Induktion der Genexpression auch bei sehr geringen Lichtmengen, einschließlich Lichtimpulsen. Forscher, die den PhyB-Schalter und ähnliche Werkzeuge 5,6 verwenden möchten, fragen häufig nach Informationen über Methoden zur Steuerung der Beleuchtungsintensität und -dauer. Daher haben wir dieses Protokoll mit Schritt-für-Schritt-Anleitungen entwickelt, um eine breitere Akzeptanz dieser Werkzeuge für die Optogenetik zu ermöglichen.
Vor der weit verbreiteten Verwendung von LEDs wurden breitbandige Lichtquellen mit Filtern verwendet, um lichtempfindliche Proteine wie Phytochromezu untersuchen 7. In jüngster Zeit wurden einige LED-Beleuchtungssysteme zusammen mit optogenetischen Werkzeugen 8,9,10,11,12 veröffentlicht, aber diese Protokolle können erhebliche Fachkenntnisse in Elektronik / Software erfordern, spezielle Ausrüstung erfordern (z. B. 3D-Drucker, Laserschneidemaschinen oder Fotomasken) oder nicht die Schritt-für-Schritt-Anweisungen liefern, die einige Forscher für ihre Forschungsbedürfnisse einsetzen müssten. Während die unabhängige Kontrolle einzelner Vertiefungen in einer Multiwell-Platte nützlich sein kann, ist sie oft unnötig, wenn Forscher nur mehrere verschiedene Proben in hellem und dunklem oder rotem Licht im Vergleich zu dunkelrotem Licht vergleichen müssen. Außerdem sind viele bestehende kommerzielle Systeme teuer und können nur eingeschränkt angepasst werden. Die in diesem Protokoll beschriebenen LEDs sind jedoch kostengünstig, hell und können auf viele Arten montiert werden. Daher können sie verwendet werden, um verschiedene Arten von Proben zu beleuchten. Mit dem mitgelieferten Protokoll und der mitgelieferten Software können LEDs im Bereich von Ultraviolett (UV) bis NIR verwendet und mit Software gesteuert werden, um optogenetische Experimente mit UVR8 13,14, Dronpa 15,16, LOV-Domänen 17,18, Step Function Opsins 19,20, CRY2 21,22, PhyB 4,23,24 durchzuführen ,25, bakterielle Phytochrome26,27,28,29 und andere lichtempfindliche Systeme 30,31,32.
Dieses Protokoll stellt ein Tutorial für den Aufbau der Schaltkreise und anderer Hardware dar, die zur Steuerung verschiedener Parameter für die Lichtstimulation benötigt werden, sowie für die molekularen / zellulären Werkzeuge zur Durchführung eines optogenetischen Experiments. Darüber hinaus berichten wir über Plasmide, die von Kyriakakis et al.4 optimiert wurden und für das Klonen kleiner und stabiler sind. Durch dieses Protokoll können Biologen ohne Erfahrung in Elektronik und Optik Beleuchtungssysteme bauen, die flexibel und robust sind. In einer Schritt-für-Schritt-Art zeigen wir, wie man LED-Systeme baut, um den technischen Engpass für die breitere Einführung optogenetischer Werkzeuge zu beseitigen. Dieses System kann problemlos in den meisten Zellkultur-Inkubatoren verwendet werden, auch wenn sie keine Drahtanschlüsse enthalten. Zum Beispiel haben wir das LED-System in einem befeuchteten CO2 -Inkubator für mehr als 6 Monate kontinuierlich ohne Leistungseinbußen gehalten. Wir erklären auch, wie Sie das LED-System an einen Computer anschließen und mit Open-Source-Software verbinden, die wir auf GitHub (https://github.com/BreakLiquid/LED-Control-User-Interfaces) zur Verfügung stellen. Der Aufbau eines Systems mit diesem Protokoll bietet Forschern das grundlegende Wissen, um potenzielle Probleme zu beheben, Teile zu ersetzen und Funktionalitäten zu verbessern / zu erweitern.
Systemübersicht
Der Aufbau des Beleuchtungssystems umfasst (1) den Aufbau der elektronischen Schaltung, (2) den Aufbau der Peripheriegeräte (Netzkabel, Netzschalter usw.), (3) den Aufbau der LEDs, (4) den Zusammenbau all dieser Komponenten und (5) die Installation der Software zur Steuerung der LEDs mit einer Benutzeroberfläche (Abbildung 1A). Nach der Fertigstellung kann das Beleuchtungssystem bis zu vier LEDs unabhängig voneinander über eine Benutzeroberfläche steuern (Abbildung 1B). Die Benutzeroberfläche ermöglicht es, dass jede LED in bestimmten Zeitintervallen pulsiert und nach einer bestimmten Zeit abschaltet. Es gibt auch eine Startverzögerung, um Beleuchtungsprogramme zu einem bestimmten Zeitpunkt zu starten. Potentiometer (POTs) regeln die Intensität jeder LED unabhängig voneinander oder können zur manuellen LED-Steuerung ohne Computer verwendet werden. Die Drähte zu den LEDs können beliebig lang sein, so dass sie einfach in einem Inkubator oder Laborraum platziert werden können. Aufgrund der hohen Leistung dieser LEDs können sie verwendet werden, um eine große Fläche mit einer einzigen LED aus der Ferne zu beleuchten.
Beschreibung des LED-Treibers
Um die Intensität der LEDs mit Strom zu versorgen und zu steuern, durchläuft dieses Protokoll Schritte, um einen “LED-Treiber” zu erstellen. Jede LED hat einen bestimmten Spannungsbereich, in dem sie arbeitet (Abbildung 1C). Während des Betriebs kann die Ausgangsspannung des Reglers, die die Lichtintensität steuert, über ein Potentiometer eingestellt werden. Der POT variiert den Widerstand und passt die Ausgangsspannung / Helligkeit an. Das Tuning mit einem 1kΩ (1 Kiloohm) POT ergibt das, was wir als “Hochspannungsschaltung” bezeichnen und einen Bereich von 1,35 V bis 2,9 V haben. Da 2,9 V für den Betrieb der LEDs mit niedrigerer Spannung zu hoch sind (Abbildung 1C), zeigen wir eine einzelne Modifikation (Widerstand 3 oder “R3” Zusatzabbildung 1A), die den Bereich auf die Niederspannungs-LEDs begrenzt. R3 dient dazu, die maximale Spannung, die an die LEDs angelegt wird, auf 1,85 V zu senken (Baugruppe siehe ergänzende Abbildung 8), wenn sie parallel zum Potentiometer angeordnet ist. Durch die Verwendung von Spannung zur Steuerung der Helligkeit anstelle von Strom ist das System flexibler für LEDs mit unterschiedlichen Betriebsspannungen. Abbildung 1C enthält eine Liste der Hoch- und Niederspannungs-LEDs, um die optimale Schaltungsauswahl zu unterstützen. Dieses Design hält die Mindestspannung niedrig genug, so dass die LED vollständig ausgeschaltet ist, wenn das Potentiometer ausgeschaltet ist und die Spannung nicht über die typische Betriebsspannung der LED steigt. Für die PhyB-Optogenetik verwenden wir tiefrote und tiefrote LEDs, die die Niederspannungsschaltung nutzen.
Beschreibung des LED-Computersteuerungssystems
Das LED-Beleuchtungssystem kann für eine konstante Beleuchtung ohne Computer oder Mikrocontroller verwendet werden. Für pulsierende Programme und für die Steuerung einzelner LED-Timings muss jedoch ein Mikrocontroller installiert werden. Um einen Mikrocontroller zur Steuerung der LEDs zu verwenden, wird ein Transistor benötigt, um den Mikrocontroller mit der Schaltung zu verbinden. Dieser Transistor erfasst die Spannung des Mikrocontrollers und schaltet von leitfähig oder isolierend um. Um das “Ein” und “Aus” zu steuern, verwenden wir einen sogenannten “NPN-Schalttransistor” (2N2222) als steuerbaren Shunt über R2 (ergänzende Abbildung 1A). Wenn die Spannung des Mikrocontrollers an die Transistorbasis angelegt wird, wird der Transistor leitfähig und macht die LED-Spannung niedrig, wodurch die LED ausgeschaltet wird. So werden die Ein- und Ausschaltzustände von LED und Transistor direkt vom Mikrocontroller gesteuert, der von der auf dem PC installierten Software gesteuert wird.
Für die Herstellung des Beleuchtungssystems sind die folgenden Schritte erforderlich: Bauen Sie den Stromkreis auf; Aufbau der Stromversorgung, des manuellen Netzschalters, der POTs und der Mikrocontroller-Verbindung; bauen Sie die LEDs; Platz für eine Blackbox für das Beleuchtungssystem; Schließen Sie alle Kabel und Geräte an. Installieren Sie die LED-Steuerungssoftware, stimulieren Sie die Zellen mit Licht; Messen Sie die Genexpression mit einem dualen Luciferase-Assay.
Das hier beschriebene LED-System wurde in unserem Labor verwendet, um verschiedene optogenetische Werkzeuge zu optimieren, zu charakterisieren und mit ihnen zu arbeiten. In Kyriakakis et al.4 haben wir viele Kombinationen von PhyB-PIF-Genschaltern parallel getestet. Wir haben dieses System dann verwendet, um Lichtimpulse mit verschiedenen Frequenzen zu testen, um die Genschalterkinetik und die effektive Lichtintensität zu messen. Dieses System wurde auch verwendet, um zwei optogenetische Systeme zu optimieren und zu charakterisieren, die blaues Licht für die Stimulation 5,6 verwenden. Da nur eine LED hell genug sein muss, um die meisten optogenetischen Werkzeuge zu aktivieren, ist es nicht immer notwendig, ein System mit einer großen Anzahl von LEDs über jeder Vertiefung zu kaufen. Dieses Setup ist kostengünstig, zuverlässig, einfach zu rekonfigurieren und erfordert keine elektrischen Vorkenntnisse, um das Montageprotokoll zu befolgen.
In den ergänzenden Ergänzungsabbildungen 31–38 beschreiben wir, wie bis zu vier LEDs in das System integriert werden können. Während dies einige Experimente einschränken kann, die eine große Anzahl von parallelen Bedingungen erfordern, können mehr LEDs hinzugefügt werden, indem die in diesem Protokoll verwendete 9-Volt-Stromversorgung durch eine höhere Wattzahl ersetzt wird. Ebenso können mehrere LEDs mit geringerer Leistung parallel zu jedem Stromkreis angeschlossen werden. In dieser letzteren Anordnung werden einige LEDs nicht einzeln angesteuert, aber dies kann nützlich sein, wenn viele LEDs benötigt werden, um einen größeren Bereich abzudecken. Sobald Sie mit der Elektronik dieses Systems vertraut sind, gibt es viele Möglichkeiten, es anzupassen. Weitere Strategien zur Anpassung des Systems umfassen die Platzierung der LED weiter oder näher an der Probe und die Beleuchtung durch Filter/Diffusoren für homogene Beleuchtungsbedingungen oder zur Verhinderung von Erwärmung wie in (ergänzende Abbildung 23) und Allen et al.5. Ein weiteres bemerkenswertes Merkmal unseres LED-Designs ist, dass es in Epoxidharz gekapselt ist und einen Touch-Verschluss auf der Rückseite hat. Dadurch kann die LED praktisch überall sicher und einfach platziert werden: in Inkubatoren, Aquarien, Tierkäfigen, Wänden usw.
Viele Experimente, die Optogenetik verwenden, um Gene, Signalwege und andere zelluläre Aktivitäten zu kontrollieren, erfordern oft Pulse, erstrecken sich über große Zeitskalen oder müssen in einem Inkubator durchgeführt werden, was eine Automatisierung oder Fernmanipulation ohne Mikroskop erfordert. Dieses LED-System wurde über mehrere Monate kontinuierlich in einem befeuchteten CO2 -Inkubator ohne Probleme getestet. Darüber hinaus muss der Experimentator bei reversiblen Systemen wie optogenetischen PhyB-Systemen möglicherweise spezifische pulsierende Beleuchtungspläne programmieren. In unserer vorherigen Arbeit4 haben wir pulsierende Programme verwendet, um die Reversibilitätsdynamik eines PhyB-PIF3-Schalters in Säugetierzellen über die Benutzeroberfläche zu testen. Mit der in diesem Manuskript beschriebenen Methodik ist die Programmierung eines Pulsprotokolls einfach und bietet die Flexibilität und Autonomie, die für viele Arten von optogenetischen Experimenten auf benutzerfreundliche Weise erforderlich sind.
Zu den wichtigsten Schritten beim Aufbau dieses Systems gehören das Zusammensetzen der elektrischen Schaltung auf der Leiterplatte und das Anschließen der Komponenten, die in Abschnitt 1 und Abschnitt 2 beschrieben sind. Es ist wichtig, jeden Schritt in diesen Abschnitten sorgfältig zu befolgen und die Lochnummern Zeile für Zeile zu überprüfen, bevor jede Komponente gelötet wird. In Abschnitt 2 wird erläutert, wie die Komponenten eingerichtet werden, die an den Stromkreis angeschlossen werden. Damit sich die Komponenten in der richtigen Ausrichtung verbinden, ist es besonders wichtig, darauf zu achten, dass die Farben der schwarzen und roten Drähte an den Wire-to-Wire-Steckverbindern übereinstimmen. Kleine Versäumnisse in diesen beiden Abschnitten werden sich sehr wahrscheinlich auf die Funktionalität des Systems auswirken. In der Tat besteht der erste Schritt bei der Fehlerbehebung dieser Methode darin, zu überprüfen, ob die Schaltung korrekt aufgebaut wurde und ob alle Verbindungen vorhanden sind. Zweitens ist die Überprüfung der Lötqualität auf lose Verbindungen und der Drähte auf aufplatzende Drahthaare, die den Stromkreis kurzschließen können, von besonderer Bedeutung. Ein dritter Schritt besteht darin, sicherzustellen, dass die LEDs korrekt funktionieren, was über ein Netzteil oder eine 1,5-V-Batterie erfolgen kann, indem die beiden Anschlüsse der LED mit Krokodilklemmen beschnitten werden. Eine weitere potenziell kritische Überlegung ist die Vermeidung von Erwärmung (wenn die LEDs mit hoher Leistung verwendet werden) oder die Streuung des Lichts für eine breitere Beleuchtung. Um diesen Überlegungen Rechnung zu tragen, können die LEDs außerhalb einer Blackbox mit “Sichtschutzfolie” auf der Innenseite montiert werden, wie in Ergänzende Abbildung 23 und Allen et al.5 beschrieben. Aufgrund der Einfachheit dieses Systems ist es nicht schwierig, es auseinanderzunehmen, um modulare Komponenten zu überprüfen, zu modifizieren, zu aktualisieren oder zu reparieren.
Ein weiterer kritischer Faktor für induzierbare Gensysteme ist die Überlegung, wie viel Aktivierung erforderlich ist oder wie viel Undichtigkeit für das zu kontrollierende biologische System akzeptabel ist. Wie in Abbildung 6 dargestellt, können diese mit der Menge an Reporter-DNA variieren. Darüber hinaus variiert die Transfektionseffizienz und damit die Kopienanzahl der Reporterkonstrukte in jeder Zelle. Es kann für einige Experimente vorteilhaft sein, eine Zelllinie mit einer festen Menge an Reporter- oder PhyB-Genschalterkomponenten herzustellen und nach Klonen mit dem gewünschten induzierten Expressionsbereich zu suchen, wie es üblicherweise bei medikamenteninduzierbaren Systemen der Fall ist. Aufgrund der Größe und Instabilität des lentiviralen Plasmids pPK-2304 haben wir auch nicht-lentivirale Plasmidversionen des PhyB-Schalters im pcDNA-Backbone pPK-351 (Addgene #157921) und pPK-352 (Addgene #157922) hergestellt.
Durch den Bau dieses LED-Beleuchtungssystems nach diesem Protokoll verfügen die Benutzer über alle notwendigen Komponenten, um eine Vielzahl von optogenetischen Experimenten in vitro und in vivo durchzuführen. In Kombination mit den Anweisungen für die Verwendung von PhyB-PIF3 in Säugetierzellen wird dieses Protokoll es Nicht-Ingenieuren und Biologen ermöglichen, die PhyB-basierte Optogenetik flexibel und effektiv in einer Vielzahl von Kontexten einzusetzen.
The authors have nothing to disclose.
Wir möchten uns bei Yingxiao (Peter) Wang, Ziliang Huang und Molly Allen dafür bedanken, dass sie während der Entwicklung verschiedene Versionen des LED-Systems getestet haben. Diese Arbeit wurde vom Kavli Institute for Brain and Mind an der UC San Diego und dem Salk Institute, National Science Foundation durch das NSF Center for Science of Information unter Grant CCF-0939370, NIH Grant NS060847 und NIH Grant R21DC018237 unterstützt.
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Farred LED 780nm | Ushio | EDC780D-1100 | Uses "STAR XP 3535" base http://www.ushio-optosemi.com/jp/products/led/power/pdfs/edc/EDC780D-1100.pdf |
Farred LED 810nm | Ushio | EDC810D-1100 | Uses "STAR XP 3535" base http://www.ushio-optosemi.com/jp/products/led/power/pdfs/edc/EDC810D-1100.pdf |
Farred LED 850nm | Ushio | EDC850D-1100 | Uses "STAR XP 3535" base http://www.ushio-optosemi.com/jp/products/led/power/pdfs/edc/EDC850D-1100.pdf |
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Human Embryonic Kidney 293 cells HEK293 | ATCC | ATCC CRL-1573 | Common Cell line. https://www.atcc.org/products/all/CRL-1573.aspx |
Fetal Bovine Serum | ThermoFisher | 26140079 | These are very common and there are many equivalents. https://www.thermofisher.com/order/catalog/product/26140079#/26140079 |
Dulbecco’s Modified Eagle Medium High Glucose | ThermoFisher | 11965−092 | These are very common and there are many equivalents. https://www.thermofisher.com/order/catalog/product/11965118?SID=srch-srp-11965118#/11965118?SID=srch-srp-11965118 |
10,000 units/mL of penicillin and 10,000 µg/mL of streptomycin | ThermoFisher | 15140122 | These are very common and there are many equivalents. https://www.thermofisher.com/order/catalog/product/15140122?SID=srch-srp-15140122#/15140122?SID=srch-srp-15140122 |
White Corning 96-Well Solid Black or White Polystyrene Microplates | ThermoFisher | 07-200-589 | White plates are preferred. Do not use clear plates. https://www.fishersci.com/shop/products/costar-96-well-black-white-solid-plates-8/p-152852 |
PEI MAX – Transfection Grade Linear Polyethylenimine Hydrochloride (MW 40,000) | PolySciences | 24765-1 | Can be replaced with another transfection reagent. https://www.polysciences.com/default/catalog-products/life-sciences/transfection-reagents/polyethylenimine-max-mw40000-high-potency-linear-pei/ |
Name of Equipment | |||
Diagonal Cutting Plier (110mm) | Amazon | Proskit 1PK-037S | These are very common and there are many equivalents. https://www.amazon.com/iExcell-Diagonal-Cutting-Nippers-Chrome-Vanadium/dp/B076XYVS6Y/ref=sr_1_11?dchild=1&keywords=diagonal+cutting+pliers&qid=1594436230&sr=8-11 |
Dremil 3000 with cutting tool and grinder | Amazon | Dremel 3000 | Dremel 3000-2/28 Variable Speed Rotary Tool Kit- 1 Attachments & 28 Accessories- Grinder, Sander, Polisher, Router, and Engraver. https://www.amazon.com/Dremel-3000-2-28-Attachments-Accessories/dp/B005JRJE7Y/ref=sr_1_3?dchild=1&keywords=Dremel+200-1%2F15+Two-Speed+Rotary+Tool+Kit&qid=1594436404&s=hi&sr=1-3 |
Dremil cutting and grinding tool | Amazon | Dremel 200-1/15 | Any similar Dremil will work. https://www.amazon.com/Dremel-200-1-Two-Speed-Rotary-Tool/dp/B002BAHF8W/ref=sr_1_1?s=hi&ie=UTF8&qid=1519268058&sr=1-1&keywords=dremel+200&dpID=41h9ZucnTYL&preST=_SY300_QL70_&dpSrc=srch |
Dremil grinding tip | Amazon | Dremel 84922 | Silicon Carbide Grinding Stone. https://www.amazon.com/Dremel-84922-Silicon-Carbide-Grinding/dp/B00004UDKD/ref=sr_1_fkmr0_1?s=hi&ie=UTF8&qid=1519268585&sr=1-1-fkmr0&keywords=dremel+tip+84922 |
EDSYN The Original Deluxe SOLDAPULLT | Amazon | DS017 | For removing solder/mistakes. https://www.amazon.com/EDSYN-The-Original-Deluxe-SOLDAPULLT/dp/B006GOKVKI |
Helping Hand with Magnifying Glass | Amazon | SE MZ101B | These are very common and there are many equivalents. https://www.amazon.com/SE-MZ101B-Helping-Magnifying-Glass/dp/B000RB38X8/ref=sr_1_4?s=hi&ie=UTF8&qid=1519268108&sr=1-4&keywords=Helping+hands&dpID=31GEhMw7WvL&preST=_SX300_QL70_&dpSrc=srch |
Pointed Nose Micro Pliers | Amazon | Hakko CHP PN-20-M | Steel Super Specialty Pointed Nose Micro Pliers with Smooth Jaws, 1.0mm Nose. https://www.amazon.com/Hakko-PN-20-M-Specialty-Pointed-Pliers/dp/B00FZPGUBI/ref=sr_1_1?s=hi&ie=UTF8&qid=1519268153&sr=1-1&keywords=Hakko+CHP+PN-20-M+Steel+Super+Specialty+Pointed+Nose+Micro+Pliers+with+Smooth+Jaws%2C+1.0mm+Nose&dpID=3109XRgwn3L&preST=_SX342_QL70_&dpSrc=srch |
Small screw drivers | Amazon | Wiha 26197 | These are very common and there are many equivalents. https://www.amazon.com/26197-Precision-Slotted-Phillips-Screwdrivers/dp/B01L46TEN2/ref=sr_1_1?s=hi&ie=UTF8&qid=1519268018&sr=1-1&keywords=Wiha+precision+set |
Soldering iron | Amazon | Yihua 939D+ Digital Soldering Station | These are very common and there are many equivalents. https://www.amazon.com/Professional-Digital-Soldering-Station-Switch/dp/B07YSCBZ4F/ref=psdc_13837391_t1_B07RVMZNYR |
TraceTech No-Clean Flux Pen | Amazon | 2507-N | Tech Spray 2507-N No-Clean Flux Dispensing Pen, 11.5 mL. https://www.amazon.com/Tech-Spray-2507-N-No-Clean-Dispensing/dp/B00DDF2FYS/ref=sr_1_1?dchild=1&keywords=2507-N&qid=1595469618&sr=8-1 |
Weller WSA350 120v Bench Top Smoke Absorber | Amazon | WSA350 | For soldering safety. https://www.amazon.com/Weller-WSA350-Bench-Smoke-Absorber/dp/B000EM74SK |
Wire strippers | Amazon | CSP-30-7 | These are very common and there are many equivalents. https://www.amazon.com/Hakko-CSP-30-7-Stripper-Maximum-Capacity/dp/B00FZPHY7M/ref=psdc_553398_t5_B00FZPHMUG |
IWISS IWS-3220M Micro Connector Pin Crimping Tool 0.03-0.52mm² 32-20AWG | Amazon | IWS-3220M | These are very common and there are many equivalents. https://www.amazon.com/gp/product/B078WPT5M1/ref=ppx_yo_dt_b_search_asin_title?ie=UTF8&psc=1 |