Ce protocole décrit comment effectuer des expériences optogénétiques pour contrôler l’expression des gènes avec la lumière rouge et rouge lointain en utilisant PhyB et PIF3. Vous y trouverez des instructions étape par étape pour la construction d’un système d’éclairage simple et flexible, qui permet le contrôle de l’expression génique ou d’autres optogénétiques avec un ordinateur.
Le contrôle des processus biologiques à l’aide de la lumière a augmenté la précision et la vitesse avec lesquelles les chercheurs peuvent manipuler de nombreux processus biologiques. Le contrôle optique permet une capacité sans précédent de disséquer la fonction et a le potentiel de permettre de nouvelles thérapies génétiques. Cependant, les expériences optogénétiques nécessitent des sources lumineuses adéquates avec un contrôle spatial, temporel ou d’intensité, souvent un goulot d’étranglement pour les chercheurs. Ici, nous détaillons comment construire un système d’éclairage LED peu coûteux et polyvalent qui est facilement personnalisable pour différents outils optogénétiques disponibles. Ce système est configurable pour un contrôle manuel ou informatique avec une intensité LED réglable. Nous fournissons un guide illustré étape par étape pour la construction du circuit, le rendre contrôlé par ordinateur et la construction des LED. Pour faciliter l’assemblage de cet appareil, nous discutons également de quelques techniques de soudure de base et expliquons les circuits utilisés pour contrôler les LED. Grâce à notre interface utilisateur open source, les utilisateurs peuvent automatiser la synchronisation précise et les pulsations de la lumière sur un ordinateur personnel (PC) ou une tablette bon marché. Cette automatisation rend le système utile pour les expériences qui utilisent des LED pour contrôler les gènes, les voies de signalisation et d’autres activités cellulaires qui couvrent de grandes échelles de temps. Pour ce protocole, aucune expertise préalable en électronique n’est requise pour construire toutes les pièces nécessaires ou pour utiliser le système d’éclairage pour effectuer des expériences optogénétiques.
Les outils optogénétiques deviennent omniprésents et de nouvelles technologies sont constamment développées pour contrôler optiquement les processus biologiques tels que l’expression des gènes, la signalisation cellulaire et bien d’autres 1,2,3. La capacité de contrôler les processus cellulaires avec la lumière permet une cinétique rapide, un contrôle spatial serré et une régulation dose-dépendante qui peut être contrôlée par l’intensité lumineuse et le temps d’exposition. Pour utiliser ces outils, un dispositif permettant de contrôler ces paramètres est nécessaire. Nous avons récemment développé un commutateur génétique de mammifère PhyB-PIF3 codé qui active et désactive de manière réversible les gènes en utilisant la lumière rouge/rouge-lointaine, respectivement4. Ce système a été testé dans plusieurs lignées cellulaires de mammifères et a permis l’induction inégalée de l’expression génique même avec de très petites quantités de lumière, y compris des impulsions de lumière. Les chercheurs qui souhaitent utiliser l’interrupteur PhyB et des outils similaires 5,6 demandent fréquemment des informations sur les méthodes de contrôle de l’intensité et de la durée de l’éclairage. Par conséquent, nous avons développé ce protocole avec des instructions étape par étape pour permettre une adoption plus large de ces outils pour l’optogénétique.
Avant l’utilisation généralisée des LED, des sources lumineuses à large bande avec filtres étaient utilisées pour étudier les protéines sensibles à la lumière telles que les phytochromes7. Récemment, certains systèmes d’éclairage DEL ont été publiés avec les outils optogénétiques 8,9,10,11,12, mais ces protocoles peuvent nécessiter une expertise importante en électronique / logiciel, nécessitent de l’équipement spécialisé (par exemple, des imprimantes 3D, des machines de découpe laser ou des photomasques) ou ne fournissent pas les instructions étape par étape que certains chercheurs devraient déployer pour leurs besoins de recherche. Bien qu’un contrôle indépendant des puits individuels dans une plaque multipuits puisse être utile, il est souvent inutile lorsque les chercheurs n’ont besoin de comparer que plusieurs échantillons différents dans la lumière claire et l’obscurité ou la lumière rouge par rapport à la lumière rouge lointain. En outre, de nombreux systèmes commerciaux existants sont coûteux, avec une capacité de personnalisation limitée. Cependant, les LED décrites dans ce protocole sont rentables, lumineuses et peuvent être montées de plusieurs façons; Par conséquent, ils peuvent être utilisés pour éclairer plusieurs types d’échantillons différents. Avec le protocole et le logiciel fournis, les LED allant de l’ultraviolet (UV) au NIR peuvent être utilisées et contrôlées avec un logiciel pour effectuer des expériences optogénétiques en utilisant UVR8 13,14, Dronpa 15,16, LOV domains 17,18, Step Function Opsins 19,20, CRY2 21,22, PhyB 4,23,24 ,25, phytochromes bactériens26,27,28,29 et autres systèmes photosensibles 30,31,32.
Ce protocole constitue un tutoriel pour l’assemblage des circuits et autres matériels nécessaires pour contrôler différents paramètres de stimulation lumineuse ainsi que les outils moléculaires/cellulaires pour mener une expérience optogénétique. De plus, nous rapportons des plasmides optimisés à partir de Kyriakakis et al.4 qui sont plus petits et plus stables pour le clonage. Grâce à ce protocole, les biologistes sans expertise en électronique et en optique peuvent construire des systèmes d’éclairage flexibles et robustes. Étape par étape, nous montrons comment construire des systèmes LED, en supprimant le goulot d’étranglement technique pour une adoption plus large des outils optogénétiques. Ce système peut facilement être utilisé dans la plupart des incubateurs de culture cellulaire, même s’ils ne contiennent pas de ports filaires. Par exemple, nous avons conservé le système LED dans un incubateur de CO2 humidifié en continu pendant plus de 6 mois sans diminution des performances. Nous expliquons également comment connecter le système LED à un ordinateur et l’interfacer avec un logiciel open source que nous fournissons sur GitHub (https://github.com/BreakLiquid/LED-Control-User-Interfaces). La construction d’un système utilisant ce protocole fournit aux chercheurs les connaissances de base pour déboguer les problèmes potentiels, remplacer des pièces et améliorer/étendre les fonctionnalités.
Vue d’ensemble du système
La construction du système d’éclairage implique (1) la construction du circuit électronique, (2) la construction des périphériques (cordon d’alimentation, interrupteur d’alimentation, etc.), (3) la construction des LED, (4) l’assemblage de tous ces composants et (5) l’installation du logiciel pour contrôler les LED avec une interface utilisateur (Figure 1A). Une fois terminé, le système d’éclairage peut contrôler jusqu’à quatre LED indépendamment avec une interface utilisateur (Figure 1B). L’interface utilisateur permet à chaque LED d’émettre des impulsions à des intervalles de temps spécifiés et de s’éteindre après un temps spécifié. Il y a aussi un délai de démarrage-début pour commencer les programmes d’éclairage à une heure spécifiée. Les potentiomètres (POT) régulent l’intensité de chaque LED indépendamment ou peuvent être utilisés pour le contrôle manuel des LED sans ordinateur. Les fils des LED peuvent être de n’importe quelle longueur personnalisée, ce qui leur permet d’être facilement placés dans un incubateur ou un espace de laboratoire. En raison de la puissance élevée de ces LED, elles peuvent être utilisées pour éclairer une grande surface avec une seule LED à distance.
Description du pilote LED
Pour alimenter et contrôler l’intensité des LED, ce protocole passera par des étapes pour construire un « pilote LED ». Chaque LED a une plage de tensions dans laquelle elle fonctionne (Figure 1C). Pendant le fonctionnement, la tension de sortie du régulateur, qui contrôle l’intensité lumineuse, peut être réglée par un potentiomètre. Le POT fait varier la résistance, en ajustant la tension / luminosité de sortie. Le réglage avec un POT de 1 kΩ (1 kilo-ohm) donne ce que nous appelons le « circuit haute tension » et a une plage de 1,35 V à 2,9 V. Étant donné que 2,9 V est trop élevé pour faire fonctionner les LED basse tension (Figure 1C), nous montrons une seule modification (Résistance 3 ou Figure 1A supplémentaire « R3 ») qui limite la plage pour correspondre aux LED basse tension. R3 sert à diminuer la tension maximale appliquée aux LED à 1,85 V (ensemble détaillé dans la figure supplémentaire 8) lorsqu’il est en parallèle avec le potentiomètre. En utilisant la tension pour contrôler la luminosité au lieu du courant, le système est plus flexible pour les LED avec différentes tensions de fonctionnement. La Figure 1C contient une liste des voyants haute et basse tension pour guider la sélection optimale du circuit. Cette conception maintient la tension minimale suffisamment basse pour que la LED soit complètement éteinte lorsque le potentiomètre est éteint et ne permet pas à la tension de dépasser la tension de fonctionnement typique de la LED. Pour l’optogénétique PhyB, nous utilisons des LED rouge foncé et rouge lointain, qui utilisent le circuit basse tension.
Description du système de contrôle informatique LED
Le système d’éclairage LED peut être utilisé pour un éclairage constant sans ordinateur ni microcontrôleur. Cependant, pour les programmes pulsés et pour contrôler la synchronisation individuelle des LED, un microcontrôleur doit être installé. Pour utiliser un microcontrôleur pour contrôler les LED, un transistor est nécessaire pour connecter le microcontrôleur au circuit. Ce transistor détecte la tension du microcontrôleur et passe de la conductivité ou de l’isolation. Pour contrôler le « on » et « off », nous utilisons ce qu’on appelle un « transistor de type commutation NPN » (2N2222) comme shunt contrôlable à travers R2 (Figure supplémentaire 1A). Lorsque la tension du microcontrôleur est appliquée à la base du transistor, le transistor devient conducteur et rend la tension de la LED faible, éteignant la LED. Ainsi, les états d’allumage et d’arrêt de la LED et du transistor sont directement contrôlés par le microcontrôleur, qui est contrôlé par le logiciel installé sur le PC.
Pour fabriquer le système d’éclairage, les étapes suivantes sont nécessaires: Construire le circuit électrique; construire l’alimentation, l’interrupteur d’alimentation manuel, les POT et la connexion du microcontrôleur; construire les LED; accueillir une boîte noire pour s’adapter au système d’éclairage; connecter tout le câblage et les appareils; installer le logiciel de contrôle LED, stimuler les cellules avec de la lumière; Mesurer l’expression génique à l’aide d’un double test de luciférase.
Le système LED décrit ici a été utilisé dans notre laboratoire pour optimiser, caractériser et travailler avec plusieurs outils optogénétiques. Dans Kyriakakis et al.4, nous avons testé de nombreuses combinaisons de commutateurs de gènes PhyB-PIF en parallèle. Nous avons ensuite utilisé ce système pour tester des impulsions lumineuses à différentes fréquences afin de mesurer la cinétique de commutation génétique et l’intensité lumineuse effective. Ce système a également été utilisé pour optimiser et caractériser deux systèmes optogénétiques qui utilisent la lumière bleue pour la stimulation 5,6. Étant donné qu’une seule LED devait être suffisamment lumineuse pour activer la plupart des outils optogénétiques, l’achat d’un système avec un grand nombre de LED sur chaque puits n’est pas toujours nécessaire. Cette configuration est peu coûteuse, fiable, facile à reconfigurer et ne nécessite aucune expertise électrique préalable pour suivre le protocole d’assemblage.
Dans les figures supplémentaires 31 à 38, nous décrivons comment incorporer jusqu’à quatre LED dans le système. Bien que cela puisse limiter certaines expériences nécessitant un grand nombre de conditions parallèles, plus de LED peuvent être ajoutées en remplaçant l’alimentation 9 volts utilisée dans ce protocole par une alimentation de puissance plus élevée. De même, plusieurs LED de faible puissance peuvent être connectées en parallèle à chaque circuit. Dans ce dernier arrangement, certaines LED ne seront pas contrôlées individuellement, mais cela peut être utile lorsque de nombreuses LED sont nécessaires pour couvrir une plus grande surface. Une fois familiarisé avec l’électronique de ce système, il existe de nombreuses façons de le personnaliser. D’autres stratégies de personnalisation du système consistent à placer la DEL plus loin ou plus près de l’échantillon et à éclairer à travers des filtres/diffuseurs pour des conditions d’éclairage homogènes ou pour empêcher l’échauffement, comme dans (figure supplémentaire 23) et Allen et coll.5. Une autre caractéristique notable de notre conception LED est qu’elle est encapsulée dans de l’époxy et dispose d’une attache tactile à l’arrière; cela permet de placer facilement et en toute sécurité la LED pratiquement n’importe où: dans les incubateurs, les aquariums, les cages pour animaux, les murs, etc.
De nombreuses expériences qui utilisent l’optogénétique pour contrôler les gènes, les voies de signalisation et d’autres activités cellulaires nécessitent souvent des pulsations, couvrent de grandes échelles de temps ou doivent être effectuées dans un incubateur, nécessitant donc une automatisation ou une manipulation à distance sans microscope. Ce système LED a été testé en continu pendant plusieurs mois à l’intérieur d’un incubateur de CO2 humidifié sans aucun problème. De plus, avec des systèmes réversibles tels que les systèmes optogénétiques PhyB, l’expérimentateur peut avoir besoin de programmer des programmes d’éclairage pulsé spécifiques. Dans notre travail précédent4, nous avons utilisé des programmes pulsés pour tester la dynamique de réversibilité d’un commutateur PhyB-PIF3 dans des cellules de mammifères via l’interface utilisateur. En utilisant la méthodologie décrite dans ce manuscrit, la programmation d’un protocole pulsé est facile, offrant la flexibilité et l’autonomie nécessaires pour de nombreux types d’expériences optogénétiques d’une manière conviviale.
Les étapes les plus critiques de la construction de ce système comprennent l’assemblage du circuit électrique sur la carte PCB et la connexion des composants, qui sont détaillés dans les sections 1 et 2. Il est essentiel de suivre attentivement chaque étape de ces sections et de vérifier les numéros de sténopé ligne par ligne avant de souder chaque composant. La section 2 explique comment configurer les composants qui seront connectés au circuit. Pour que les composants se connectent dans la bonne orientation, il est particulièrement important de s’assurer que les couleurs des fils noirs et rouges sur les connecteurs fil à fil correspondent. De petits oublis dans ces deux sections affecteront très probablement la fonctionnalité du système. En effet, la première étape du dépannage de cette méthode sera de vérifier que le circuit a été construit correctement et que toutes les connexions sont en place. Deuxièmement, la vérification de la qualité de soudure pour les connexions desserrées et des fils pour les poils de fil évasés qui peuvent court-circuiter le circuit est d’une importance particulière. Une troisième étape serait de s’assurer que les LED fonctionnent correctement, ce qui peut être fait à l’aide d’une alimentation ou d’une batterie de 1,5 V en clipsant les deux bornes de la LED avec des pinces crocodiles. Une autre considération potentiellement critique est d’empêcher le chauffage (lors de l’utilisation des LED à haute puissance) ou la diffusion de la lumière pour un éclairage plus répandu. Pour tenir compte de ces considérations, les DEL peuvent être montées à l’extérieur d’une boîte noire avec un « film d’intimité » à l’intérieur, comme décrit dans la figure supplémentaire 23 et Allen et al.5. En raison de la simplicité de ce système, il n’est pas difficile de le démonter pour vérifier, modifier, mettre à niveau ou réparer des composants modulaires.
Un autre facteur critique pour les systèmes de gènes inductibles est de considérer combien d’activation est nécessaire ou combien de fuite est acceptable pour le système biologique contrôlé. Comme le montre la figure 6, ceux-ci peuvent varier en fonction de la quantité d’ADN du déclarant. En outre, l’efficacité de la transfection et, par conséquent, le nombre de copies des constructions rapporteures dans chaque cellule varieront. Il peut être avantageux pour certaines expériences de fabriquer une lignée cellulaire avec une quantité fixe de composants rapporteurs ou de commutation génique PhyB et de rechercher des clones avec la gamme souhaitée d’expression induite, comme cela se fait couramment avec les systèmes inductibles par les médicaments. En raison de la taille et de l’instabilité du plasmide lentiviral pPK-2304, nous avons également fabriqué des versions plasmides non lentivirales du commutateur PhyB dans le squelette pcDNA pPK-351 (Addgene #157921) et pPK-352 (Addgene #157922).
En construisant ce système d’éclairage LED suivant ce protocole, les utilisateurs disposent de tous les composants nécessaires pour réaliser un large éventail d’expériences optogénétiques in vitro et in vivo. Combiné aux instructions d’utilisation de PhyB-PIF3 dans les cellules de mammifères, ce protocole permettra aux non-ingénieurs et aux biologistes d’utiliser l’optogénétique basée sur PhyB de manière flexible et efficace dans divers contextes.
The authors have nothing to disclose.
Nous tenons à remercier Yingxiao (Peter) Wang, Ziliang Huang et Molly Allen d’avoir testé différentes versions du système LED au fur et à mesure de son développement. Ce travail a été soutenu par le Kavli Institute for Brain and Mind de l’UC San Diego et le Salk Institute, National Science Foundation par le biais du NSF Center for Science of Information sous la subvention CCF-0939370, la subvention NIH NS060847 et la subvention NIH R21DC018237.
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Farred LED 740nm | Ushio | EDC740D-1100-S5 | Uses "STAR XP 3535" base https://www.ushio-optosemi.com/jp/products/led/power/pdfs/edc/EDC740D-1100-S5.pdf |
Farred LED 780nm | Ushio | EDC780D-1100 | Uses "STAR XP 3535" base http://www.ushio-optosemi.com/jp/products/led/power/pdfs/edc/EDC780D-1100.pdf |
Farred LED 810nm | Ushio | EDC810D-1100 | Uses "STAR XP 3535" base http://www.ushio-optosemi.com/jp/products/led/power/pdfs/edc/EDC810D-1100.pdf |
Farred LED 850nm | Ushio | EDC850D-1100 | Uses "STAR XP 3535" base http://www.ushio-optosemi.com/jp/products/led/power/pdfs/edc/EDC850D-1100.pdf |
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Cell Culture Reagents | |||
Human Embryonic Kidney 293 cells HEK293 | ATCC | ATCC CRL-1573 | Common Cell line. https://www.atcc.org/products/all/CRL-1573.aspx |
Fetal Bovine Serum | ThermoFisher | 26140079 | These are very common and there are many equivalents. https://www.thermofisher.com/order/catalog/product/26140079#/26140079 |
Dulbecco’s Modified Eagle Medium High Glucose | ThermoFisher | 11965−092 | These are very common and there are many equivalents. https://www.thermofisher.com/order/catalog/product/11965118?SID=srch-srp-11965118#/11965118?SID=srch-srp-11965118 |
10,000 units/mL of penicillin and 10,000 µg/mL of streptomycin | ThermoFisher | 15140122 | These are very common and there are many equivalents. https://www.thermofisher.com/order/catalog/product/15140122?SID=srch-srp-15140122#/15140122?SID=srch-srp-15140122 |
White Corning 96-Well Solid Black or White Polystyrene Microplates | ThermoFisher | 07-200-589 | White plates are preferred. Do not use clear plates. https://www.fishersci.com/shop/products/costar-96-well-black-white-solid-plates-8/p-152852 |
PEI MAX – Transfection Grade Linear Polyethylenimine Hydrochloride (MW 40,000) | PolySciences | 24765-1 | Can be replaced with another transfection reagent. https://www.polysciences.com/default/catalog-products/life-sciences/transfection-reagents/polyethylenimine-max-mw40000-high-potency-linear-pei/ |
Name of Equipment | |||
Diagonal Cutting Plier (110mm) | Amazon | Proskit 1PK-037S | These are very common and there are many equivalents. https://www.amazon.com/iExcell-Diagonal-Cutting-Nippers-Chrome-Vanadium/dp/B076XYVS6Y/ref=sr_1_11?dchild=1&keywords=diagonal+cutting+pliers&qid=1594436230&sr=8-11 |
Dremil 3000 with cutting tool and grinder | Amazon | Dremel 3000 | Dremel 3000-2/28 Variable Speed Rotary Tool Kit- 1 Attachments & 28 Accessories- Grinder, Sander, Polisher, Router, and Engraver. https://www.amazon.com/Dremel-3000-2-28-Attachments-Accessories/dp/B005JRJE7Y/ref=sr_1_3?dchild=1&keywords=Dremel+200-1%2F15+Two-Speed+Rotary+Tool+Kit&qid=1594436404&s=hi&sr=1-3 |
Dremil cutting and grinding tool | Amazon | Dremel 200-1/15 | Any similar Dremil will work. https://www.amazon.com/Dremel-200-1-Two-Speed-Rotary-Tool/dp/B002BAHF8W/ref=sr_1_1?s=hi&ie=UTF8&qid=1519268058&sr=1-1&keywords=dremel+200&dpID=41h9ZucnTYL&preST=_SY300_QL70_&dpSrc=srch |
Dremil grinding tip | Amazon | Dremel 84922 | Silicon Carbide Grinding Stone. https://www.amazon.com/Dremel-84922-Silicon-Carbide-Grinding/dp/B00004UDKD/ref=sr_1_fkmr0_1?s=hi&ie=UTF8&qid=1519268585&sr=1-1-fkmr0&keywords=dremel+tip+84922 |
EDSYN The Original Deluxe SOLDAPULLT | Amazon | DS017 | For removing solder/mistakes. https://www.amazon.com/EDSYN-The-Original-Deluxe-SOLDAPULLT/dp/B006GOKVKI |
Helping Hand with Magnifying Glass | Amazon | SE MZ101B | These are very common and there are many equivalents. https://www.amazon.com/SE-MZ101B-Helping-Magnifying-Glass/dp/B000RB38X8/ref=sr_1_4?s=hi&ie=UTF8&qid=1519268108&sr=1-4&keywords=Helping+hands&dpID=31GEhMw7WvL&preST=_SX300_QL70_&dpSrc=srch |
Pointed Nose Micro Pliers | Amazon | Hakko CHP PN-20-M | Steel Super Specialty Pointed Nose Micro Pliers with Smooth Jaws, 1.0mm Nose. https://www.amazon.com/Hakko-PN-20-M-Specialty-Pointed-Pliers/dp/B00FZPGUBI/ref=sr_1_1?s=hi&ie=UTF8&qid=1519268153&sr=1-1&keywords=Hakko+CHP+PN-20-M+Steel+Super+Specialty+Pointed+Nose+Micro+Pliers+with+Smooth+Jaws%2C+1.0mm+Nose&dpID=3109XRgwn3L&preST=_SX342_QL70_&dpSrc=srch |
Small screw drivers | Amazon | Wiha 26197 | These are very common and there are many equivalents. https://www.amazon.com/26197-Precision-Slotted-Phillips-Screwdrivers/dp/B01L46TEN2/ref=sr_1_1?s=hi&ie=UTF8&qid=1519268018&sr=1-1&keywords=Wiha+precision+set |
Soldering iron | Amazon | Yihua 939D+ Digital Soldering Station | These are very common and there are many equivalents. https://www.amazon.com/Professional-Digital-Soldering-Station-Switch/dp/B07YSCBZ4F/ref=psdc_13837391_t1_B07RVMZNYR |
TraceTech No-Clean Flux Pen | Amazon | 2507-N | Tech Spray 2507-N No-Clean Flux Dispensing Pen, 11.5 mL. https://www.amazon.com/Tech-Spray-2507-N-No-Clean-Dispensing/dp/B00DDF2FYS/ref=sr_1_1?dchild=1&keywords=2507-N&qid=1595469618&sr=8-1 |
Weller WSA350 120v Bench Top Smoke Absorber | Amazon | WSA350 | For soldering safety. https://www.amazon.com/Weller-WSA350-Bench-Smoke-Absorber/dp/B000EM74SK |
Wire strippers | Amazon | CSP-30-7 | These are very common and there are many equivalents. https://www.amazon.com/Hakko-CSP-30-7-Stripper-Maximum-Capacity/dp/B00FZPHY7M/ref=psdc_553398_t5_B00FZPHMUG |
IWISS IWS-3220M Micro Connector Pin Crimping Tool 0.03-0.52mm² 32-20AWG | Amazon | IWS-3220M | These are very common and there are many equivalents. https://www.amazon.com/gp/product/B078WPT5M1/ref=ppx_yo_dt_b_search_asin_title?ie=UTF8&psc=1 |