Descriviamo tre metodi di trapianto di midollo osseo (BMT): BMT con irradiazione totale del corpo, BMT con irradiazione schermata e metodo BMT senza precondi condizionamento (BMT adottivo) per lo studio dell’ematopoiesi clonale nei modelli di topo.
L’ematopoiesi clonale è una condizione prevalente associata all’età che deriva dall’accumulo di mutazioni somatiche nelle cellule staminali ematopoietiche e progenitrici (HSPC). Le mutazioni nei geni dei driver, che conferiscono forma fisica cellulare, possono portare allo sviluppo di cloni HSPC in espansione che danno sempre più origine a leucociti progenie che ospitano la mutazione somatica. Poiché l’ematopoiesi clonale è stata associata a malattie cardiache, ictus e mortalità, lo sviluppo di sistemi sperimentali che modellano questi processi è fondamentale per comprendere i meccanismi che sottinero a questo nuovo fattore di rischio. Le procedure di trapianto di midollo osseo che coinvolgono il condizionamento mieloablativo nei topi, come l’irradiazione totale del corpo (TBI), sono comunemente utilizzate per studiare il ruolo delle cellule immunitarie nelle malattie cardiovascolari. Tuttavia, il danno simultaneo alla nicchia del midollo osseo e ad altri siti di interesse, come il cuore e il cervello, è inevitabile con queste procedure. Pertanto, il nostro laboratorio ha sviluppato due metodi alternativi per ridurre al minimo o evitare possibili effetti collaterali causati da TBI: 1) trapianto di midollo osseo con schermatura di irradiazione e 2) BMT adottivo a topi non condizionati. Negli organi schermati, l’ambiente locale è preservato consentendo l’analisi dell’ematopoiesi clonale mentre la funzione delle cellule immunitarie residenti non è perturbata. Al contrario, il BMT adottivo per topi non condizionati ha l’ulteriore vantaggio che sia gli ambienti locali degli organi che la nicchia ematopoietica sono conservati. Qui, confrontiamo tre diversi approcci di ricostituzione delle cellule ematopoietiche e discutiamo i loro punti di forza e limiti per gli studi sull’ematopoiesi clonale nelle malattie cardiovascolari.
L’ematopoiesi clonale (CH) è una condizione che si osserva frequentemente negli individui anziani e si verifica come risultato di un fusto ematopoietico espanso e di un clone della cellula progenitrice (HSPC) che porta una mutazione genetica1. È stato suggerito che all’età di 50 anni, la maggior parte degli individui avrà acquisito una media di cinque mutazioni esoniche in ogni HSPC2, ma la maggior parte di queste mutazioni comporterà poche o nessuna conseguenza fenotipica per l’individuo. Tuttavia, se per caso una di queste mutazioni conferisce un vantaggio competitivo all’HSPC, ad esempio promuovendone la proliferazione, l’autorinovità, la sopravvivenza o qualche combinazione di queste, ciò potrebbe portare all’espansione preferenziale del clone mutante rispetto agli altri HSPC. Di conseguenza, la mutazione si diffonderà sempre più attraverso il sistema ematopoietico poiché l’HSPC mutato dà origine a cellule del sangue mature, portando a una distinta popolazione di cellule mutate all’interno del sangue periferico. Mentre mutazioni in dozzine di diversi geni driver candidati sono stati associati a eventi clonali all’interno del sistema ematopoietico, tra questi, le mutazioni nel DNA metiltransferasi 3 alfa (DNMT3A) e dieci undici traslocazioni 2 (TET2) sono le più prevalenti3. Diversi studi epidemiologici hanno scoperto che gli individui che portano queste mutazioni genetiche hanno un rischio significativamente più elevato di malattie cardiovascolari (CVD), ictus e mortalità per cause3,4,5,6,7. Mentre questi studi hanno identificato che esiste un’associazione tra CH e aumento dell’incidenza di CVD e ictus, non sappiamo se questa relazione sia causale o un epifenomeno condiviso con il processo di invecchiamento. Per ottenere una migliore comprensione di questa associazione, sono necessari modelli animali adeguati che ricapitolano correttamente la condizione umana di CH.
Diversi modelli di animali CH sono stati stabiliti dal nostro gruppo e altri utilizzando zebrafish, topi e primati non umani8,9,10,11,12,13,14. Questi modelli utilizzano spesso metodi di ricostituzione ematopoietica mediante trapianto di cellule geneticamente modificate, a volte utilizzando la ricombinazione Cre-lox o il sistema CRISPR. Questo approccio consente l’analisi di una specifica mutazione genica nelle cellule ematopoietiche per valutare come contribuisce allo sviluppo della malattia. Inoltre, questi modelli spesso impiegano cellule congeniche o reporter per distinguere gli effetti delle cellule mutanti dalle cellule normali o di tipo selvaggio. In molti casi, è necessario un regime di precondizione per innestare con successo le cellule staminali ematopoietiche del donatore.
Attualmente, il trapianto di midollo osseo ai topi riceventi può essere diviso in due categorie principali: 1) condizionamento mieloablativo e 2) trapianto non condizionato. Il condizionamento mieloablativo può essere ottenuto con uno dei due metodi seguenti, vale a dire l’irradiazione totale del corpo (TBI) o la chemioterapia15. Il TBI viene effettuato sottopose il ricevente a una dose letale di irradiazione gamma o a raggi X, generando rotture di DNA o collegamenti incrociati all’interno di cellule che si dividono rapidamente, rendendoleirreparabili 16. Busulfan e ciclofosfamide sono due farmaci chemioterapici comunemente usati che interrompono la nicchia ematopoietica e allo stesso modo causano danni al DNA alle cellule che si dividono rapidamente. Il risultato netto della precondizione mieloablativa è l’apoptosi delle cellule ematopoietiche, che distrugge il sistema ematopoietico del ricevente. Questa strategia non solo consente il successo dell’innesto degli HSPC donatori, ma può anche prevenire il rifiuto dell’innesto sopprimendo il sistema immunitario del ricevente. Tuttavia, la precondizione mieloablativa ha gravi effetti collaterali come danni a tessuti e organi e alle loro cellule immunitarie residenti, nonché distruzione della nicchia nativa del midollo osseo17. Pertanto, sono stati proposti metodi alternativi per superare questi effetti collaterali indesiderati, in particolare per quanto riguarda i danni agli organi di interesse. Questi metodi comprendono l’irradiazione protetta dei topi riceventi e il BMT adottivo per i topinon condizionati 9,17. La protezione del torace, della cavità addominale, della testa o di altre regioni dall’irradiazione mediante il posizionamento di una barriera di piombo protegge i tessuti di interesse dagli effetti dannosi dell’irradiazione e mantiene la loro popolazione di cellule immunitarie residenti. D’altra parte, il BMT adottivo degli HSPC per i topi non condizionati ha un ulteriore vantaggio perché preserva la nicchia ematopoietica nativa. In questo manoscritto, descriviamo i protocolli e i risultati dell’innesto HSPC dopo diversi regimi di trapianto nei topi, in particolare la consegna di HSPC ai topi TBI, ai topi parzialmente schermati dall’irradiazione e ai topi non condizionati. L’obiettivo generale è quello di aiutare i ricercatori a comprendere i diversi effetti fisiologici di ogni metodo e come influenzano i risultati sperimentali nella definizione di CH e malattie cardiovascolari.
Per gli studi sull’ematopoiesi clonale, abbiamo descritto tre metodi di BMT: BMT con irradiazione totale del corpo, BMT con irradiazione con schermatura parziale e un metodo BMT meno comunemente usato che non comporta precondi condizionamento (BMT adottivo). Questi metodi sono stati utilizzati per valutare l’impatto dell’ematopoiesi clonale sulle malattie cardiovascolari. I ricercatori possono modificare questi metodi di conseguenza per soddisfare lo scopo specifico del loro studio.
Mo…
The authors have nothing to disclose.
Questo lavoro è stato supportato da sovvenzioni dei National Institutes of Health degli Stati Uniti a K. Walsh (HL131006, HL138014 e HL132564), a S. Sano (HL152174), sovvenzione dell’American Heart Association a M. A. Evans (20POST35210098) e una sovvenzione della Japan Heart Foundation a H. Ogawa.
0.5ml microcentrifuge | Fisher Scientific | 05-408-121 | general supply |
1.5ml microcentrifuge | Fisher Scientific | 05-408-129 | general supply |
1/2 cc LO-DOSE INSULIN SYRINGE | EXELINT | 26028 | general supply |
Absolute Ethanol (200 prfof) | Fisher chemical | 200559 | general supply |
BD 1mL Tuberculin Syringes 25G 5/8 Inch Needle | Becton Dickinson | 309626 | general supply |
BD PrecisionGlide Needle 18G (1.22mm X 25mm) | Becton Dickinson | 395195 | general supply |
Cesium-137 Irradiator | J. L. Shepherd | Mark IV | equipment |
DietGel 76A | Clear H2O | 70-01-5022 | general supply |
Falcon 100 mm TC-Treated Cell Culture Dish | Life Sciences | 353003 | general supply |
Falcon 50 mL Conical Centrifuge Tubes | Fisher Scientific | 352098 | general supply |
Fisherbrand sterile cell strainers, 70 μm | Fisher Scientific | 22363548 | general supply |
Graefe Forceps | Fine Science Tools | 11051-10 | general supply |
Hardened Fine Scissors | Fine Science Tools | 14090-09 | general supply |
Isothesia (Isoflurane) solution | Henry Schein | 29404 | Solution |
Ketamine | Zoetis | 043-304 | injection |
Kimwipes Delicate Task Wipers | Kimtech Science | KCC34155 | general supply |
PBS pH7.4 (1X) | Gibco | 10010023 | Solution |
RadDisk – Rodent Irradiator Disk | Braintree Scientific | IRD-P M | general supply |
RPMI Medium 1640 (1X) | Gibco | 11875-093 | Medium |
Sulfamethoxazole and Trimethoprim | TEVA | 0703-9526-01 | injection |
Xylazine | Akorn | 139-236 | injection |
X-ray irradiator | Rad source | RS-2000 | equipment |