Bu makale, Salmonella tiphimurium triptofan sintazının ekspresyonu ve saflaştırılması için bir dizi ardışık yöntem sunar, bu protokol protein kompleksini bir günde arındırmak için hızlı bir sistemdir. Kapsanan yöntemler escherichia coliprotein ekspresyözü, benzeşim kromatografisi, jel filtrasyon kromatografisi ve kristalizasyondur.
Salmonella tiphimurium’dan triptofan sintaz (TS) bienzim kompleksi (α2β2 TS) ile yapılan yapısal çalışmalar, katalitik mekanizmasını, allosterik davranışını ve PLP’ye bağımlı enzimlerde substratın ürüne enzimatik dönüşümünün ayrıntılarını daha iyi anlamak için gerçekleştirilmiştir. Bu çalışmada, yalıtılmış α ve yalıtılmış β alt birliğini üretmek için yeni bir ifade sistemi, yüksek miktarda saf alt birim ve α2β2StTS kompleksinin izole alt birli dış birimlerden 2 gün içinde arındırılmasına izin etti. Saflaştırma, benzeşim kromatografisi ve ardından benzeşim etiketinin bölünmesi, amonyum sülfat çökeltme ve boyut dışlama kromatografisi (SEC) ile gerçekleştirildi. Enzim β-sitedeki anahtar kalıntılarının rolünü daha iyi anlamak için, önceki yapısal çalışmalarda bölgeye doğrudan mutajensis yapıldı. Vahşi tip ve mutant α2β2StTS kompleksini arındırmak için başka bir protokol oluşturuldu. Amonyum sülfat fraksiyonasyonu ve SEC kullanılarak basit, hızlı ve verimli bir protokol, α2β2StTS kompleksinin tek bir günde arındırılmasına izin sağladı. Bu çalışmada açıklanan her iki saflaştırma protokolü, saflaştırma protokolü boyunca α2β2StTS kompleksini kristalize etmek için PEG 8000 ve spermin kullanarak aynı kompleksi arındırmak için önceki protokollerle karşılaştırıldığında önemli avantajlara sahiptir. Vahşi tip ve bazı mutant formlarının kristalleşmesi, peg 8000 ve spermin kullanarak bazı mutantların saflaşmasını bozan biraz farklı koşullar altında gerçekleşir. X-ışını kristalografik çalışmalarına uygun kristalleri hazırlamak için kristalizasyon, kristal kalitesi ve kriyoproteksiyonu optimize etmek için çeşitli çabalar sarfedildi. Burada sunulan yöntemler genellikle triptofan sintaz alt biraları ve vahşi tip ve mutant α2β2StTS komplekslerinin saflaştırılması için uygulanmalıdır.
Triptofan sintaz (TS) bienza kompleksi (α2β2),bakteri, bitki ve mantarlarda L-Triptofan amino asidinin biyosentezinde son iki adımı katalizleyen allosterik birenzimdir. Salmonella enterica serovar typhimurium (St) bakterisi insanlarda ve diğer hayvanlarda ciddi bir gastrointestinal enfeksiyona neden olur. İnsanlarda ve daha yüksek hayvanlarda TS (EC 4.2.1.20) olmadığından, S’nin inhibisyonu. tifüs α2β2 TS kompleksi (α2β2StTS) kriptosporidiosis ve tüberküloz tedavisi için potansiyel bir ilaç hedefi olarak araştırılmıştır4, genital ve oküler enfeksiyonlar5ve tarımda potansiyel herbisit kullanımı için6. α-alt birimi, GAP ve indole3,6’yıüretmek için bir indolenine tautomer ara ve daha sonra karbon-karbon bağı bölünmesinin oluşumu yoluyla, gliseraldehit-3-fosfat (GAP) ve indole’ye kadar olan aldolitik bölünmeyi kataliz eder. β katalitik alan, β-Lys87’ye bir Schiff tabanı aracılığıyla bağlı bir piridoksial 5′-fosfat (PLP) kofaktör molekülü içerir, bu da enzim β-alt biradaki reaksiyonlar sırasında bir elektron lavabosu olarak işlev β3,7. β alanı, L-Serine yan zincir hidroksilinin L-Triptofan ve PLP’ye bağımlı reaksiyonda bir su molekülü vermek için hintkenede değiştirilmesini katalİze eder. St TS, çok enzimli kompleksler içinde substrat kanal ve allosterik iletişimin araştırılması için uzun süredir devam eden bir model olarak hizmet vermektedir2,3. L-Triptofan sentezi sırasında katalitik adımları senkronize etmek ve indole salınımını önlemek için TS’nin α ve β alt biraları arasındaki çift yönlü allosterik iletişim3. Bu çabayı genişletmek için, StTS β-subunit’in katalitik bölgesinde enzim yapısı, mekanizması ve fonksiyonu arasındaki ilişkinin daha fazla araştırılmasında kullanılmak üzere tek nokta mutasyonu ile birkaç mutant (β-Gln114Ala, β-Lys167Thr ve β-Ser377Ala) hazırladık.
Edith W. Miles araştırma grubu tarafındanα 2β2StTS’nin katalitik mekanizması hakkında detaylı araştırma başlatılmıştır. Yerli Escherichia coli α2β2 TS kompleksi ile yapılan ilkçalışmalar,yalıtılmış α-alt bira 8 ,9, izole β-alt bira 10,11ve α 2 β 2TS kompleksinin yalıtılmış alt birelerden arındırılmasına ve karakterizasyonuna odaklanmıştır12. Saflaştırma, amonyum sülfat çökeltme, örnek diyaliz, DEAE-Sephadex kromatografisi, diyaliz ve DEAE-Sephadex sütun12üzerinde ikinci bir kromatografik yuvarlak ile gerçekleştirildi. Başka bir protokolde, aynı kompleksin saflaştırılması, netleştirilmiş hücre lisatının bir DEAE-Sephadex sütununa yüklenmesi ve ardından Sepharose 4B sütununa kromatografik bir adım, amonyum sülfat çökeltme ve diyaliz13. Her iki saflaştırma protokolü de 4-5 gün sürer. Escherichia coli α2β2 TS kompleksi kristalize edildi, ancak kristaller o zaman X-ışını kırınımı için uygun değildi.
Yeni bir çalışmada, S. typhimurium α 2 β2TS kompleksinin rekombinant ve vahşi tip formları saflaştırıldı ve kristalize edildi14,15. Rekombinant α2β2StTS kompleksi, pEBA-10 ifade vektörü taşıyan E. coli strain CB149’da aşırı ifade edildi. α2β 2StTS kompleksinin ilk kristalizasyonu veX-ışınıkırınım verisi toplanması ve analizi14bildirilmiştir. Bununla birlikte, α2β2StTS kristalleri gibi uzun ve ince iğne yapısal çalışmaları bozmuşlardır. Daha iyi X-ışını kırınım verileri toplamak amacıyla, α 2 β 2StTS kompleksi15’invahşi tipini ve mutant formlarını arındırmak için başka bir saflaştırma protokolü tanımlanmıştır. Temizleme, netleştirilmiş hücre lisatına spermin ve PEG 8.000 kullanılarak ilk çökeltme ile gerçekleştirildi ve santrifüjleme ile büyük bir hacimli çökelti çıkarıldı. Yüksek miktarda α içeren süpernatant fraksiyon2β2StTS kompleksi, sarı kristaller çökene kadar 4 °C’de 16-48 saat boyunca depolandı. Kristaller yıkandı ve farklı tamponlara karşı yoğun bir şekilde çaprazlandı. Protein kompleksi amonyum sülfat içeren tamponda rekristalite edildi ve15. Protein kristalizasyonu çözeltideki protein ve çökelti konsantrasyonlarına bağlı olsa da, çözeltideki diğer mutant formları için saflaştırmayı izlemek, tahmin etmek ve çoğaltmak α2β2StTS kompleksinin çözeltisinde. Bu protokol, herhangi bir kromatografik yöntem kullanmaması avantajına sahiptir; bununla birlikte, dezavantajları, tipik olarak 5-7 gün gerektiren kristalize etmek, dialyze etmek ve recrystallize etmek için gerekli olan uzun saflaştırma süresidir. X-ışını veri toplama için uygun kristaller elde etmek, 600’den fazla kristalizasyon koşulu protein konsantrasyonu, sıcaklık, çökeltiler (PEG 4.000, 6.000 ve 8.000) ve katkı maddeleri (CaCl 2 , MnCl2, ZnCl2, kadavra, putrescine, spermin veya spermidin) kombinasyonu ve varyasyonu kullanılarak değerlendirildi15. Kristaller daha iyi bir kristal formuna sahipti ve% 12 PEG 8.000 ve 2 mM spermin içeren koşullarda daha hızlı büyüdü. Kristalizasyon 4, 30 veya 42 ° C yerine 25 ° C’de daha elverişliydi ve 3 gün içinde maksimum boyutlara büyüdü15. O dönemde(1996-β1999) 16 , 17 , 18 , 19,20,21ve daha birçok yapının yayınlandıkları α bildirilmiştir.
Burada temel amaç triptofan sintazını arındırmak ve protein kristalizasyonunu optimize etmek için alternatif protokoller sunmaktır. Mevcut çalışma, yalıtılmış β-alt birliğini (β St TS), 2 β 2StTS kompleksini yalıtılmış alt birelerden yeniden oluşturan αalt birliğini (α αStTS), α2β2StTS kompleksinin vahşi tip ve mutant formlarını arındırmak için önemli iyileştirmelergöstermektedir. Arınma süresi önemli ölçüde azaltıldığı ve kristalizasyon ve kriyoproteksiyon optimize edildiğinden, geçmiş protokollere göre avantajlar önemli ölçüdedir. Bu çalışmada tasarlanan α2β2StTS kompleksinin mutant formları, vahşi tip formu için kullanılan durumun yakınında kristalleşmiştir. Bununla birlikte, atomik çözünürlüğe yakın yapı belirleme için yeterli kalitede büyük tek kristaller elde etmek için ince kristalizasyon optimizasyonu gerekliydi. Bugüne kadar Protein Veri Bankası’nda (PDB) bakteri, arkea ve ökaryot için sırasıyla 101, 31 ve 2 kristal yapıyı oluşturan 134 triptofan sintaz kristal yapısı bulunmaktadır. Güzel bir şekilde, 73 yapı S. enterica serovar typhimurium’a aittir ve α 2 β2StTS kompleksinin5kristal yapısı 1.50 Angstrom’dan daha yüksek çözünürlük sınırlarına sahiptir. Şaşırtıcı olmayan bir şekilde, araştırma grubumuzda 5’te 4’ü hazırlandı (PDB IDs:5CGQ 1.18 Å’da, 4HT3 1.30 Å’da, 4HPJ 1.45 Å’da, 6DZ4 1.45 şçözünürlükte). α2β2StTS kompleksinin mutant formunun rafine kristal yapılarının, L-Triptofan sentezinde yer alan esansiyel amino asit kalıntılarının oynadığı mekanizma ve roller hakkında yeni içgörüler sağlaması beklenmektedir.
Yapı fonksiyonu korelasyon çalışmaları için2β 2 βQ114A,2 β2 βK167Tα ve2 α β2βS377A StTS kompleksleri α mutant formunu başarıyla tasarladık. Başlangıçta, mutantları daha önceki bir saflaştırma protokolü22kullanarak arındırmaya çalıştık , bu da α2β2StTS karmaşık kristalizasyonu PEG 8000 ve spermin ile saflaştırma sırasında gerektirir. Kristalleşme hızı …
The authors have nothing to disclose.
Bu çalışma ABD Ulusal Sağlık Enstitüsü (GM097569) tarafından desteklendi.
15 mL 10 kDa filter | MilliporeSigma | UFC901024 | centrifugal filter unit |
15 mL 100 kDa filter | MilliporeSigma | UFC910024 | centrifugal filter unit |
2 mL cryogenic vials | Corning | CLS430489 | Cryogenic vials |
2 mL microcentrifuge tubes | Fisher Scientific | 05-408-141 | microcentrifuge tubes |
24-well Cryschem Plate | Hampton Research | HR3-158 | 24-well sitting drop plates |
2-mercaptoethanol | Fisher Scientific | O3446I-100 | Chemical |
50 mL centrifuge conical tubes | Thermo Scientific | 12-565-270 | centrifuge conical tubes |
AB15 ACCUMET Basic | Fisher Scientific | 13-636-AB15 | pH meter |
Agarose | Fisher Scientific | BP1356-100 | Agarose gel |
ammonium sulfate | Fisher Scientific | A702-500 | Chemical |
Ampicillin | Fisher Scientific | BP1760-5 | Antibiotic |
Bacterial incubator | Fisher Scientific | S35836 | incubator. |
BamHI | New England Biolabs | R0136S | Restriction enzyme |
bicine | Fisher Scientific | BP2646100 | Chemical |
Branson 450 Digital Sonifier | Brason | B450 | Cell disruptor |
Cesium chloride | Fisher Scientific | BP210-100 | Chemical |
Cesium hydroxide | Acros Organics | AC213601000 | Chemical |
Chloramphenicol | Fisher Scientific | BP904-100 | Antibiotic |
dimethyl sulfoxide | Fisher Scientific | D1391 | Chemical |
dithiothreitol | Fisher Scientific | BP172-5 | Chemical |
DNA Polymerase | Thermo Scientific | F530S | HF polymerase |
dNTP Set | Invitrogen | 10-297-018 | dNTPs set |
EcoRI | New England Biolabs | R0101S | Restriction enzyme |
Ethylenediaminetetraacetic acid | Fisher Scientific | S311-100 | Chemical |
Excella E25R Orbital Shaker | Eppendorf New Brunswick | M1353-0004 | Orbital incubator |
GE AKTA Prime Plus | GE Healthcare | 8149-30-0004 | FPLC |
Gel Extraction Kit | Invitrogen | K210012 | DNA purification kit |
Glycerol | Fisher Scientific | G33-500 | Chemical |
HindIII | New England Biolabs | R0104S | Restriction enzyme |
His-Trap columns | GE Healthcare | GE17-5255-01 | 5 mL Histrap column |
imidazole | Fisher Scientific | O3196-500 | Chemical |
IPTG | Thermo Fisher Scientific | R0392 | Inducer |
Kanamycin | Fisher Scientific | BP906-5 | Antibiotic |
Kelvinator Series-100 | Kelvinator | discontinued | Ultra low freezer |
LB broth | Fisher Scientific | BP1426-500 | Liquid broth |
Luria Bertani agar | Fisher Scientific | BP1425-2 | Solid broth |
NaCl | Fisher Scientific | S271-500 | Chemical |
NcoI | New England Biolabs | R0193S | Restriction enzyme |
Ni-NTA affinity beads | Thermo Fisher Scientific | R90115 | Ni-NTA agarose beads |
PEG 8000 | Fisher Scientific | BP233-100 | Chemical |
phenylmethylsulfonyl fluoride | Fisher Scientific | 44-865-0 | Chemical |
pyridoxal phosphate | Acros Organics | AC228170010 | Chemical |
S-200 HR | Cytiva | 45-000-196 | Size exclusion column |
SacI | New England Biolabs | R0156S | Restriction enzyme |
Sodium hydroxide | Fisher Scientific | S318-100 | Chemical |
Sorvall RC-5B centrifuge | Sorvall | 8327-30-1004 | Floor cetrifuge |
Spermine | Acros Organics | AC132750010 | Chemical |
Superdex 200 prep grade | Cytiva | 45-002-491 | Size exclusion column |
T4 DNA ligase | New England Biolabs | M0202S | DNA liagse |
Tris | Fisher Scientific | BP152-500 | Chemical |
Ubl-specific protease 1 | Thermo Scientific | 12588018 | SUMO Protease |