מאמר זה מציג סדרה של שיטות רצופות לביטוי וטיהור של סלמונלה טיפוס סינתאז comp פרוטוקול זה מערכת מהירה כדי לטהר את קומפלקס החלבון ביום. שיטות מכוסות הן מוטאגנסיס מכוונת אתר, ביטוי חלבון ב Escherichia coli, כרומטוגרפיה זיקה, כרומטוגרפיה סינון ג’ל, והתגבשות.
מחקרים מבניים עם קומפלקס ביאנזים טריפטופן (TS) (α2β 2 TS) מ טיפוס סלמונלה בוצעו כדי להבין טוב יותר את המנגנון הקטליטי שלה, התנהגות אלוסטרית, ופרטים על הטרנספורמציה אנזימטית של מצע למוצר באנזימים תלויי PLP. בעבודה זו, מערכת ביטוי חדשנית לייצור α המבודדת והמבודדת β-subunit אפשרה טיהור של כמויות גבוהות של תת-קהילות טהורות ו-α2β2מתחם סנטTS ממתחם התת-קרקעי המבודד תוך יומיים. הטיהור בוצע על ידי כרומטוגרפיה של זיקה ואחריו מחשוף של תג הזיקה, משקעים אמוניום גופרתי, כרומטוגרפיה אי הכללת גודל (SEC). כדי להבין טוב יותר את התפקיד של שאריות מפתח באנזים β-אתר, מוטגנזה ישירה באתר בוצעה במחקרים מבניים קודמים. פרוטוקול נוסף נוצר כדי לטהר את הסוג הפראי ואת המוטציה α2β2מתחמי סנטTS. פרוטוקול פשוט, מהיר ויעיל באמצעות שבר אמוניום גופרתי ו- SEC אפשרטיהורשל מתחם α 2 β2StTS ביום אחד. שני פרוטוקולי הטיהור המתוארים בעבודה זו יש יתרונות ניכרים בהשוואה לפרוטוקולים קודמים כדי לטהר את אותו קומפלקס באמצעות PEG 8000 ו spermine כדי לגבש את α2β2StTS מורכב לאורך פרוטוקול הטיהור. התגבשות של סוג פראי וכמה צורות מוטנטיות מתרחשת בתנאים שונים במקצת, ופוגעת בטיהור של כמה מוטציות באמצעות PEG 8000 וזרעון. כדי להכין גבישים המתאימים למחקרי קריסטלוגרפיה רנטגן נעשו מספר מאמצים כדי לייעל התגבשות, איכות קריסטל ו cryoprotection. השיטות המוצגות כאן צריכות להיות ישימות בדרך כלל לטיהור של תת-units טריפטופן סינתאז וסוג פראי ומוטנטים α2β2מתחמיסנטTS.
קומפלקס הדו-אנזים (TS) (α2β2)הוא אנזים אלוסטרית, המזרז את שני השלבים האחרונים בביוסינתזה של חומצת האמינו L-טריפטופן בחיידקים, צמחים ופטריות1,2,3. חיידק סלמונלה אנטטיקה שרף שרף ( St) גורם לזיהום חמור במערכת העיכול בבני אדם ובבעלי חיים אחרים. מאז בני אדם ובעלי חיים גבוהים אין TS (EC 4.2.1.20), עיכוב של S. טיפוס α2β2 תסביך TS (α2β2StTS) נחקר כיעד תרופה פוטנציאלי לטיפול cryptosporidiosis ושחפת4, זיהומים באברי המין והעיקולים5, ועל ניצול פוטנציאלי של קוטלי עשבים בחקלאות6. α-subunit מזרז את המחשוף האלדוליטי של אינדול-3-גלייצרול-פוספט (IGP) כדי הגליצרלדהיד-3-פוספט (GAP) והאינדול, באמצעות היווצרות של טאוטומר אינדולנין ביניים ולאחר מכן מחשוף קשר פחמן-פחמן כדי לייצר GAP ו indole3,6. האתר β-קטליטי מכיל מולקולת קופקטור פירידוקסלית 5′-פוספט (PLP) הקשורה β-Lys87 דרך בסיס שיף, המתפקד ככיור אלקטרונים במהלך התגובות באנזים β-subunit3,7. האתר β מזרז את החלפת ההידרוקסיל בצד L-Serine על ידי אינדול כדי לתת L-טריפטופן ומולקולת מים בתגובה תלויה PLP. סנט TS משמש מודל ארוך שנים לחקירת תקשור מצע ותקשורת אלוסטרה בתוך מתחמים מרובי אנזימים2,3. תקשורת אלוסטרית דו-כיוונית בין α ואיחודי המשנה β של TS נחוצה כדי לסנכרן את השלבים הקטליטיים ולמנוע שחרור אינודול במהלך סינתזה L-טריפטופן3. כדי להאריך את המאמץ הזה, הכנו מספר מוטציות (β-Gln114Ala, β-Lys167Thr, ו- β-Ser377Ala) על ידי מוטציה של נקודה אחת שישמשו לחקר נוסף של הקשר בין מבנה האנזים, המנגנון והתפקוד באתר הקטליטי של stTS β-subunit.
מחקר מפורט על המנגנון הקטליטי של α2β2סנטTS יזם על ידי קבוצת המחקר של אדית וו מיילס. מחקרים מוקדמים עם ילידי Escherichia coli α2β2 TS מורכבים התמקדו בטיהור ואפיון של α-subunit מבודד8,9, מבודד β-subunit10,11 ואת השבת α2β2 מתחם TS מן subunits מבודד12. הטיהור בוצע על ידי משקעים אמוניום גופרתי, דיאליזה לדוגמה, כרומטוגרפיה DEAE-Sephadex, דיאליזה, וסיבוב כרומטוגרפי שני על טור DEAE-Sephadex12. בפרוטוקול אחר, הטיהור של אותו קומפלקס שופר על ידי טעינת lysate התא המובהר על עמוד DEAE-Sephadex ואחריו צעד כרומטוגרפי על עמוד Sepharose 4B, משקעים אמוניום גופרתי ודיאליזה13. שני פרוטוקולי הטיהור נמשכים 4-5 ימים. Escherichia coli α2β2 TS מורכב מגובש אבל גבישים לא היו מתאימים עקיפה רנטגן באותו זמן.
במחקר חדשני, צורות רקומביננטיות ופראיות של S. typhimurium α2β2 תסביך TS טוהרו וגובשו14,15. מתחם ה-CB149 של α רקומביננטי2β 2StTS הובע יתר עלהמידהבזן E. coli CB149 הנושא את וקטור הביטוי pEBA-10. התגבשות ראשונית ואיסוף וניתוח נתוני עקיפה של קרני רנטגן של מתחם α2β2StTS דווחו14. עם זאת, מחט ארוכה ודקה כמו α2β2גבישיסנטTS לקוי מחקרים מבניים. בניסיון לאסוף נתוני עקיפה טובים יותר של קרני רנטגן, תואר פרוטוקול טיהור נוסף כדי לטהר את הסוג הפראי ואת צורות המוטציה של α2β2StTSמתחם 15. הטיהור בוצע עם משקעים ראשוניים באמצעות זרע ו PEG 8,000 לתוך ליסאט התא המובהק ומצרף גדול מגושם הוסר על ידי צנטריפוגה. השבר העל-טבעי המכיל כמויות גבוהות של α2β2StTS מתחם אוחסנו במשך 16-48 שעות ב 4 °C (70 °F) עד גבישים צהובים מזורם. גבישים נשטפו ודיאליגו בהרחבה כנגד מאגרים שונים. קומפלקס החלבון היה recrystallized במאגר המכיל אמוניום גופרתי וחיוג15. אמנם, התגבשות חלבון תלויה בחלבון ובריכוזים מזרזים בתמיסה, קשה לפקח, לחזות ולהתרבות טיהור לצורות מוטנטיות אחרות של α2β2StTS תסביך. לפרוטוקול זה יש יתרון בכך שהוא אינו משתמש בשיטות כרומטוגרפיות כלשהן; עם זאת, החסרונות הם זמן הטיהור הארוך הדרוש כדי להתגבש, לחייג ולבטל, הדורש בדרך כלל 5-7 ימים. כדי להשיג גבישים המתאימים לאיסוף נתוני רנטגן, יותר מ -600 תנאי התגבשות הוערכו באמצעות שילוב וריאציה של ריכוז חלבון, טמפרטורה, משקעים (PEG 4,000, 6,000, ו 8,000), ותוספים (CaCl2, MnCl2, ZnCl2, cadaverine, putrescine, זרע, או זרע)15. גבישים היו בצורת גבישית טובה יותר וגדלו מהר יותר בתנאים המכילים 12% PEG 8,000 ו 2 mM זרעון. ההתגבשות הייתה חיובית יותר ב 25 °C (75 °F) ולא ב 4, 30, או 42 °C (5 °F) גדל לממדים מקסימליים בתוך 3 ימים15. כמה α2βשנימבני גבישסנטTS דווחו באותה תקופה (1996-1999)16,17,18,19,20,21 ומבנים רבים אחרים פורסמו עד כה.
כאן, המטרה העיקרית היא להציג פרוטוקולים חלופיים כדי לטהר סינתאז טריפטופן ולמטב את התגבשות חלבון. העבודה הנוכחית מציגה שיפורים משמעותיים כדי לטהר את סוג הפרא מבודד α-subunit (αStTS), מבודד β-subunit (βStTS), מחדש α2β2סנטTS המתחם מן subunits מבודד, וסוג פראי וצורות מוטציה של α2β2מתחם סנטTS. היתרונות על פני פרוטוקולים קודמים ניכרים שכן זמן הטיהור צומצם באופן משמעותי והתגבשות והגנה קריו-הגנתית היו מותאמים. צורות מוטנטיות של α2β2 מתחםסנטTS מהונדס בעבודה זו התגבשו ליד אותו מצב המשמש עבור צורת סוג הבר. עם זאת, אופטימיזציה התגבשות בסדר היה צורך להשיג גבישים יחיד גדול באיכות מספקת לקביעת מבנה ברזולוציה אטומית קרובה. עד כה, ישנם 134 מבני קריסטל סינתאז טריפטופן שהופקדו בבנק נתוני החלבון (PDB), חשבונאות 101, 31 ו -2 מבני קריסטל, בהתאמה, עבור חיידקים, ארכאי ואאוקריוטה. יפה, 73 מבנים שייכים S. enterica serovar typhimurium ו 5 מבני קריסטל של α2β2סנטTS מתחם יש מגבלות רזולוציה גבוהות יותר מ 1.50 אנגסטרום. באופן לא מפתיע, 4 מתוך 5 הוכנו בקבוצת המחקר שלנו (מזהי PDB:5CGQ ב 1.18 Å, 4HT3 ב 1.30 Å, 4HPJ ב 1.45 Å, 6DZ4 ברזולוציה 1.45 Å). מבני הגביש המעודנים של צורה מוטנטית של α2β2StTS קומפלקס צפויים לספק תובנות חדשות על המנגנון והתפקידים שיחקו שאריות חומצת אמינו חיונית המעורבים בסינתזה L-טריפטופן.
תכננו בהצלחה צורת מוטציה α2β2 βQ114A, α2β2 βK167T, ו- α2β2 מתחמי βS377A StTS למחקרי מתאם פונקציית מבנה. בתחילה, ניסינו לטהר את המוטציות באמצעות פרוטוקולטיהור קודם 22, אשר דורש α2β2סנטTS התגבשות מורכבת עם PEG 8000 וזרע במהלך הטיהור. למרות ש?…
The authors have nothing to disclose.
עבודה זו נתמכה על ידי המכון הלאומי לבריאות בארה”ב (GM097569).
15 mL 10 kDa filter | MilliporeSigma | UFC901024 | centrifugal filter unit |
15 mL 100 kDa filter | MilliporeSigma | UFC910024 | centrifugal filter unit |
2 mL cryogenic vials | Corning | CLS430489 | Cryogenic vials |
2 mL microcentrifuge tubes | Fisher Scientific | 05-408-141 | microcentrifuge tubes |
24-well Cryschem Plate | Hampton Research | HR3-158 | 24-well sitting drop plates |
2-mercaptoethanol | Fisher Scientific | O3446I-100 | Chemical |
50 mL centrifuge conical tubes | Thermo Scientific | 12-565-270 | centrifuge conical tubes |
AB15 ACCUMET Basic | Fisher Scientific | 13-636-AB15 | pH meter |
Agarose | Fisher Scientific | BP1356-100 | Agarose gel |
ammonium sulfate | Fisher Scientific | A702-500 | Chemical |
Ampicillin | Fisher Scientific | BP1760-5 | Antibiotic |
Bacterial incubator | Fisher Scientific | S35836 | incubator. |
BamHI | New England Biolabs | R0136S | Restriction enzyme |
bicine | Fisher Scientific | BP2646100 | Chemical |
Branson 450 Digital Sonifier | Brason | B450 | Cell disruptor |
Cesium chloride | Fisher Scientific | BP210-100 | Chemical |
Cesium hydroxide | Acros Organics | AC213601000 | Chemical |
Chloramphenicol | Fisher Scientific | BP904-100 | Antibiotic |
dimethyl sulfoxide | Fisher Scientific | D1391 | Chemical |
dithiothreitol | Fisher Scientific | BP172-5 | Chemical |
DNA Polymerase | Thermo Scientific | F530S | HF polymerase |
dNTP Set | Invitrogen | 10-297-018 | dNTPs set |
EcoRI | New England Biolabs | R0101S | Restriction enzyme |
Ethylenediaminetetraacetic acid | Fisher Scientific | S311-100 | Chemical |
Excella E25R Orbital Shaker | Eppendorf New Brunswick | M1353-0004 | Orbital incubator |
GE AKTA Prime Plus | GE Healthcare | 8149-30-0004 | FPLC |
Gel Extraction Kit | Invitrogen | K210012 | DNA purification kit |
Glycerol | Fisher Scientific | G33-500 | Chemical |
HindIII | New England Biolabs | R0104S | Restriction enzyme |
His-Trap columns | GE Healthcare | GE17-5255-01 | 5 mL Histrap column |
imidazole | Fisher Scientific | O3196-500 | Chemical |
IPTG | Thermo Fisher Scientific | R0392 | Inducer |
Kanamycin | Fisher Scientific | BP906-5 | Antibiotic |
Kelvinator Series-100 | Kelvinator | discontinued | Ultra low freezer |
LB broth | Fisher Scientific | BP1426-500 | Liquid broth |
Luria Bertani agar | Fisher Scientific | BP1425-2 | Solid broth |
NaCl | Fisher Scientific | S271-500 | Chemical |
NcoI | New England Biolabs | R0193S | Restriction enzyme |
Ni-NTA affinity beads | Thermo Fisher Scientific | R90115 | Ni-NTA agarose beads |
PEG 8000 | Fisher Scientific | BP233-100 | Chemical |
phenylmethylsulfonyl fluoride | Fisher Scientific | 44-865-0 | Chemical |
pyridoxal phosphate | Acros Organics | AC228170010 | Chemical |
S-200 HR | Cytiva | 45-000-196 | Size exclusion column |
SacI | New England Biolabs | R0156S | Restriction enzyme |
Sodium hydroxide | Fisher Scientific | S318-100 | Chemical |
Sorvall RC-5B centrifuge | Sorvall | 8327-30-1004 | Floor cetrifuge |
Spermine | Acros Organics | AC132750010 | Chemical |
Superdex 200 prep grade | Cytiva | 45-002-491 | Size exclusion column |
T4 DNA ligase | New England Biolabs | M0202S | DNA liagse |
Tris | Fisher Scientific | BP152-500 | Chemical |
Ubl-specific protease 1 | Thermo Scientific | 12588018 | SUMO Protease |