Summary

PCR מוטגנסיס, שיבוט, ביטוי, פרוטוקולי טיהור חלבונים מהירים והתגבשות של סוג הבר וצורות מוטציה של טריפטופן סינתאז

Published: September 26, 2020
doi:

Summary

מאמר זה מציג סדרה של שיטות רצופות לביטוי וטיהור של סלמונלה טיפוס סינתאז comp פרוטוקול זה מערכת מהירה כדי לטהר את קומפלקס החלבון ביום. שיטות מכוסות הן מוטאגנסיס מכוונת אתר, ביטוי חלבון ב Escherichia coli, כרומטוגרפיה זיקה, כרומטוגרפיה סינון ג’ל, והתגבשות.

Abstract

מחקרים מבניים עם קומפלקס ביאנזים טריפטופן (TS) (α2β 2 TS) מ טיפוס סלמונלה בוצעו כדי להבין טוב יותר את המנגנון הקטליטי שלה, התנהגות אלוסטרית, ופרטים על הטרנספורמציה אנזימטית של מצע למוצר באנזימים תלויי PLP. בעבודה זו, מערכת ביטוי חדשנית לייצור α המבודדת והמבודדת β-subunit אפשרה טיהור של כמויות גבוהות של תת-קהילות טהורות ו-α2β2מתחם סנטTS ממתחם התת-קרקעי המבודד תוך יומיים. הטיהור בוצע על ידי כרומטוגרפיה של זיקה ואחריו מחשוף של תג הזיקה, משקעים אמוניום גופרתי, כרומטוגרפיה אי הכללת גודל (SEC). כדי להבין טוב יותר את התפקיד של שאריות מפתח באנזים β-אתר, מוטגנזה ישירה באתר בוצעה במחקרים מבניים קודמים. פרוטוקול נוסף נוצר כדי לטהר את הסוג הפראי ואת המוטציה α2β2מתחמי סנטTS. פרוטוקול פשוט, מהיר ויעיל באמצעות שבר אמוניום גופרתי ו- SEC אפשרטיהורשל מתחם α 2 β2StTS ביום אחד. שני פרוטוקולי הטיהור המתוארים בעבודה זו יש יתרונות ניכרים בהשוואה לפרוטוקולים קודמים כדי לטהר את אותו קומפלקס באמצעות PEG 8000 ו spermine כדי לגבש את α2β2StTS מורכב לאורך פרוטוקול הטיהור. התגבשות של סוג פראי וכמה צורות מוטנטיות מתרחשת בתנאים שונים במקצת, ופוגעת בטיהור של כמה מוטציות באמצעות PEG 8000 וזרעון. כדי להכין גבישים המתאימים למחקרי קריסטלוגרפיה רנטגן נעשו מספר מאמצים כדי לייעל התגבשות, איכות קריסטל ו cryoprotection. השיטות המוצגות כאן צריכות להיות ישימות בדרך כלל לטיהור של תת-units טריפטופן סינתאז וסוג פראי ומוטנטים α2β2מתחמיסנטTS.

Introduction

קומפלקס הדו-אנזים (TS) (α2β2)הוא אנזים אלוסטרית, המזרז את שני השלבים האחרונים בביוסינתזה של חומצת האמינו L-טריפטופן בחיידקים, צמחים ופטריות1,2,3. חיידק סלמונלה אנטטיקה שרף שרף ( St) גורם לזיהום חמור במערכת העיכול בבני אדם ובבעלי חיים אחרים. מאז בני אדם ובעלי חיים גבוהים אין TS (EC 4.2.1.20), עיכוב של S. טיפוס α2β2 תסביך TS (α2β2StTS) נחקר כיעד תרופה פוטנציאלי לטיפול cryptosporidiosis ושחפת4, זיהומים באברי המין והעיקולים5, ועל ניצול פוטנציאלי של קוטלי עשבים בחקלאות6. α-subunit מזרז את המחשוף האלדוליטי של אינדול-3-גלייצרול-פוספט (IGP) כדי הגליצרלדהיד-3-פוספט (GAP) והאינדול, באמצעות היווצרות של טאוטומר אינדולנין ביניים ולאחר מכן מחשוף קשר פחמן-פחמן כדי לייצר GAP ו indole3,6. האתר β-קטליטי מכיל מולקולת קופקטור פירידוקסלית 5′-פוספט (PLP) הקשורה β-Lys87 דרך בסיס שיף, המתפקד ככיור אלקטרונים במהלך התגובות באנזים β-subunit3,7. האתר β מזרז את החלפת ההידרוקסיל בצד L-Serine על ידי אינדול כדי לתת L-טריפטופן ומולקולת מים בתגובה תלויה PLP. סנט TS משמש מודל ארוך שנים לחקירת תקשור מצע ותקשורת אלוסטרה בתוך מתחמים מרובי אנזימים2,3. תקשורת אלוסטרית דו-כיוונית בין α ואיחודי המשנה β של TS נחוצה כדי לסנכרן את השלבים הקטליטיים ולמנוע שחרור אינודול במהלך סינתזה L-טריפטופן3. כדי להאריך את המאמץ הזה, הכנו מספר מוטציות (β-Gln114Ala, β-Lys167Thr, ו- β-Ser377Ala) על ידי מוטציה של נקודה אחת שישמשו לחקר נוסף של הקשר בין מבנה האנזים, המנגנון והתפקוד באתר הקטליטי של stTS β-subunit.

מחקר מפורט על המנגנון הקטליטי של α2β2סנטTS יזם על ידי קבוצת המחקר של אדית וו מיילס. מחקרים מוקדמים עם ילידי Escherichia coli α2β2 TS מורכבים התמקדו בטיהור ואפיון של α-subunit מבודד8,9, מבודד β-subunit10,11 ואת השבת α2β2 מתחם TS מן subunits מבודד12. הטיהור בוצע על ידי משקעים אמוניום גופרתי, דיאליזה לדוגמה, כרומטוגרפיה DEAE-Sephadex, דיאליזה, וסיבוב כרומטוגרפי שני על טור DEAE-Sephadex12. בפרוטוקול אחר, הטיהור של אותו קומפלקס שופר על ידי טעינת lysate התא המובהר על עמוד DEAE-Sephadex ואחריו צעד כרומטוגרפי על עמוד Sepharose 4B, משקעים אמוניום גופרתי ודיאליזה13. שני פרוטוקולי הטיהור נמשכים 4-5 ימים. Escherichia coli α2β2 TS מורכב מגובש אבל גבישים לא היו מתאימים עקיפה רנטגן באותו זמן.

במחקר חדשני, צורות רקומביננטיות ופראיות של S. typhimurium α2β2 תסביך TS טוהרו וגובשו14,15. מתחם ה-CB149 של α רקומביננטי2β 2StTS הובע יתר עלהמידהבזן E. coli CB149 הנושא את וקטור הביטוי pEBA-10. התגבשות ראשונית ואיסוף וניתוח נתוני עקיפה של קרני רנטגן של מתחם α2β2StTS דווחו14. עם זאת, מחט ארוכה ודקה כמו α2β2גבישיסנטTS לקוי מחקרים מבניים. בניסיון לאסוף נתוני עקיפה טובים יותר של קרני רנטגן, תואר פרוטוקול טיהור נוסף כדי לטהר את הסוג הפראי ואת צורות המוטציה של α2β2StTSמתחם 15. הטיהור בוצע עם משקעים ראשוניים באמצעות זרע ו PEG 8,000 לתוך ליסאט התא המובהק ומצרף גדול מגושם הוסר על ידי צנטריפוגה. השבר העל-טבעי המכיל כמויות גבוהות של α2β2StTS מתחם אוחסנו במשך 16-48 שעות ב 4 °C (70 °F) עד גבישים צהובים מזורם. גבישים נשטפו ודיאליגו בהרחבה כנגד מאגרים שונים. קומפלקס החלבון היה recrystallized במאגר המכיל אמוניום גופרתי וחיוג15. אמנם, התגבשות חלבון תלויה בחלבון ובריכוזים מזרזים בתמיסה, קשה לפקח, לחזות ולהתרבות טיהור לצורות מוטנטיות אחרות של α2β2StTS תסביך. לפרוטוקול זה יש יתרון בכך שהוא אינו משתמש בשיטות כרומטוגרפיות כלשהן; עם זאת, החסרונות הם זמן הטיהור הארוך הדרוש כדי להתגבש, לחייג ולבטל, הדורש בדרך כלל 5-7 ימים. כדי להשיג גבישים המתאימים לאיסוף נתוני רנטגן, יותר מ -600 תנאי התגבשות הוערכו באמצעות שילוב וריאציה של ריכוז חלבון, טמפרטורה, משקעים (PEG 4,000, 6,000, ו 8,000), ותוספים (CaCl2, MnCl2, ZnCl2, cadaverine, putrescine, זרע, או זרע)15. גבישים היו בצורת גבישית טובה יותר וגדלו מהר יותר בתנאים המכילים 12% PEG 8,000 ו 2 mM זרעון. ההתגבשות הייתה חיובית יותר ב 25 °C (75 °F) ולא ב 4, 30, או 42 °C (5 °F) גדל לממדים מקסימליים בתוך 3 ימים15. כמה α2βשנימבני גבישסנטTS דווחו באותה תקופה (1996-1999)16,17,18,19,20,21 ומבנים רבים אחרים פורסמו עד כה.

כאן, המטרה העיקרית היא להציג פרוטוקולים חלופיים כדי לטהר סינתאז טריפטופן ולמטב את התגבשות חלבון. העבודה הנוכחית מציגה שיפורים משמעותיים כדי לטהר את סוג הפרא מבודד α-subunit (αStTS), מבודד β-subunit (βStTS), מחדש α2β2סנטTS המתחם מן subunits מבודד, וסוג פראי וצורות מוטציה של α2β2מתחם סנטTS. היתרונות על פני פרוטוקולים קודמים ניכרים שכן זמן הטיהור צומצם באופן משמעותי והתגבשות והגנה קריו-הגנתית היו מותאמים. צורות מוטנטיות של α2β2 מתחםסנטTS מהונדס בעבודה זו התגבשו ליד אותו מצב המשמש עבור צורת סוג הבר. עם זאת, אופטימיזציה התגבשות בסדר היה צורך להשיג גבישים יחיד גדול באיכות מספקת לקביעת מבנה ברזולוציה אטומית קרובה. עד כה, ישנם 134 מבני קריסטל סינתאז טריפטופן שהופקדו בבנק נתוני החלבון (PDB), חשבונאות 101, 31 ו -2 מבני קריסטל, בהתאמה, עבור חיידקים, ארכאי ואאוקריוטה. יפה, 73 מבנים שייכים S. enterica serovar typhimurium ו 5 מבני קריסטל של α2β2סנטTS מתחם יש מגבלות רזולוציה גבוהות יותר מ 1.50 אנגסטרום. באופן לא מפתיע, 4 מתוך 5 הוכנו בקבוצת המחקר שלנו (מזהי PDB:5CGQ ב 1.18 Å, 4HT3 ב 1.30 Å, 4HPJ ב 1.45 Å, 6DZ4 ברזולוציה 1.45 Å). מבני הגביש המעודנים של צורה מוטנטית של α2β2StTS קומפלקס צפויים לספק תובנות חדשות על המנגנון והתפקידים שיחקו שאריות חומצת אמינו חיונית המעורבים בסינתזה L-טריפטופן.

Protocol

1. פרוטוקול מהיר לטיהור מתחם α β וה-α המחודש2β2StTS החלפת דנ”א לווקטור הביטוי pETSUMOהשג את הגן המצמד התרגומי (trpA ו- trpB) המקודד את α- ואת β-subunits של סינתאז טריפטופן מחיידק סלמונלה אנטטיקה ספירובה טיפימוריום משובט בווקטור הביטוי pEBA-1022. השתמש …

Representative Results

טיהור α- ואיחודי המשנה βשלסינתאז טריפטופן α-subunit (αstTS) ואת β-subunit (βStTS) של סלמונלה טיפוס טריפטופן סינתאז היו subcloned בווקטור PET SUMO שונה. איור 1A מציג תוצאות מייצגות של SDS-PAGE של שתי רצועות חזקות המתאימות ?…

Discussion

תכננו בהצלחה צורת מוטציה α2β2 βQ114A, α2β2 βK167T, ו- α2β2 מתחמי βS377A StTS למחקרי מתאם פונקציית מבנה. בתחילה, ניסינו לטהר את המוטציות באמצעות פרוטוקולטיהור קודם 22, אשר דורש α2β2סנטTS התגבשות מורכבת עם PEG 8000 וזרע במהלך הטיהור. למרות ש?…

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

עבודה זו נתמכה על ידי המכון הלאומי לבריאות בארה”ב (GM097569).

Materials

15 mL 10 kDa filter MilliporeSigma UFC901024 centrifugal filter unit
15 mL 100 kDa filter MilliporeSigma UFC910024 centrifugal filter unit
2 mL cryogenic vials Corning CLS430489 Cryogenic vials
2 mL microcentrifuge tubes Fisher Scientific 05-408-141 microcentrifuge tubes
24-well Cryschem Plate Hampton Research HR3-158 24-well sitting drop plates
2-mercaptoethanol Fisher Scientific O3446I-100 Chemical
50 mL centrifuge conical tubes Thermo Scientific 12-565-270 centrifuge conical tubes
AB15 ACCUMET Basic Fisher Scientific 13-636-AB15 pH meter
Agarose Fisher Scientific BP1356-100 Agarose gel
ammonium sulfate Fisher Scientific A702-500 Chemical
Ampicillin Fisher Scientific BP1760-5 Antibiotic
Bacterial incubator Fisher Scientific S35836 incubator.
BamHI New England Biolabs R0136S Restriction enzyme
bicine Fisher Scientific BP2646100 Chemical
Branson 450 Digital Sonifier Brason B450 Cell disruptor
Cesium chloride Fisher Scientific BP210-100 Chemical
Cesium hydroxide Acros Organics AC213601000 Chemical
Chloramphenicol Fisher Scientific BP904-100 Antibiotic
dimethyl sulfoxide Fisher Scientific D1391 Chemical
dithiothreitol Fisher Scientific BP172-5 Chemical
DNA Polymerase Thermo Scientific F530S HF polymerase
dNTP Set Invitrogen 10-297-018 dNTPs set
EcoRI New England Biolabs R0101S Restriction enzyme
Ethylenediaminetetraacetic acid Fisher Scientific S311-100 Chemical
Excella E25R Orbital Shaker Eppendorf New Brunswick M1353-0004 Orbital incubator
GE AKTA Prime Plus GE Healthcare 8149-30-0004 FPLC
Gel Extraction Kit Invitrogen K210012 DNA purification kit
Glycerol Fisher Scientific G33-500 Chemical
HindIII New England Biolabs R0104S Restriction enzyme
His-Trap columns GE Healthcare GE17-5255-01 5 mL Histrap column
imidazole Fisher Scientific O3196-500 Chemical
IPTG Thermo Fisher Scientific R0392 Inducer
Kanamycin Fisher Scientific BP906-5 Antibiotic
Kelvinator Series-100 Kelvinator discontinued Ultra low freezer
LB broth Fisher Scientific BP1426-500 Liquid broth
Luria Bertani agar Fisher Scientific BP1425-2 Solid broth
NaCl Fisher Scientific S271-500 Chemical
NcoI New England Biolabs R0193S Restriction enzyme
Ni-NTA affinity beads Thermo Fisher Scientific R90115 Ni-NTA agarose beads
PEG 8000 Fisher Scientific BP233-100 Chemical
phenylmethylsulfonyl fluoride Fisher Scientific 44-865-0 Chemical
pyridoxal phosphate Acros Organics AC228170010 Chemical
S-200 HR Cytiva 45-000-196 Size exclusion column
SacI New England Biolabs R0156S Restriction enzyme
Sodium hydroxide Fisher Scientific S318-100 Chemical
Sorvall RC-5B centrifuge Sorvall 8327-30-1004 Floor cetrifuge
Spermine Acros Organics AC132750010 Chemical
Superdex 200 prep grade Cytiva 45-002-491 Size exclusion column
T4 DNA ligase New England Biolabs M0202S DNA liagse
Tris Fisher Scientific BP152-500 Chemical
Ubl-specific protease 1 Thermo Scientific 12588018 SUMO Protease

References

  1. Miles, E. W. Tryptophan synthase: a multienzyme complex with an intramolecular tunnel. Chemical Record. 1 (2), 140-151 (2001).
  2. Raboni, S., Bettati, S., Mozzarelli, A. Tryptophan synthase: a mine for enzymologists. Cellular and Molecular Life. 66 (14), 2391-2403 (2009).
  3. Dunn, M. F. Allosteric regulation of substrate channeling and catalysis in the tryptophan synthase bienzyme complex. Archives of Biochemistry and Biophysics. 519 (2), 154-166 (2012).
  4. Chaudhary, K., Roos, D. S. Protozoan genomics for drug discovery. Nature Biotechnology. 23 (9), 1089-1091 (2005).
  5. Caldwell, H. D., et al. Polymorphisms in Chlamydia trachomatis tryptophan synthase genes differentiate between genital and ocular isolates. Journal of Clinical Investigation. 111 (11), 1757-1769 (2003).
  6. Kulik, V., et al. On the structural basis of the catalytic mechanism and the regulation of the alpha subunit of tryptophan synthase from Salmonella typhimurium and BX1 from maize, two evolutionarily related enzymes. Journal of Molecular Biology. 352 (3), 608-620 (2005).
  7. Barends, T. R., et al. Structure and mechanistic implications of a tryptophan synthase quinonoid intermediate. Chembiochem. 9 (7), 1024-1028 (2008).
  8. Hatanaka, M., White, E. A., Horibata, K., Crawford, I. P. A study of the catalytic properties of Escherichia coli tryptophan synthetase, a two-component enzyme. Archives of Biochemistry and Biophysics. 97, 596-606 (1962).
  9. Henning, U., Helinski, D. R., Chao, F. C., Yanofsky, C. The A protein of the tryptophan synthetase of Escherichia coli. Purification, crystallization, and composition studies. Journal of Biological Chemistry. 237, 1523-1530 (1962).
  10. Wilson, D. A., Crawford, I. P. Purification and properties of the B component of Escherichia coli tryptophan synthetase. Journal of Biological Chemistry. 240 (12), 4801-4808 (1965).
  11. Adachi, O., Miles, E. W. A rapid method for preparing crystalline beta 2 subunit of tryptophan synthetase of Escherichia coli in high yield. Journal of Biological Chemistry. 249 (17), 5430-5434 (1974).
  12. Adachi, O., Kohn, L. D., Miles, E. W. Crystalline alpha2 beta2 complexes of tryptophan synthetase of Escherichia coli. A comparison between the native complex and the reconstituted complex. Journal of Biological Chemistry. 249 (24), 7756-7763 (1974).
  13. Higgins, W., Fairwell, T., Miles, E. W. An active proteolytic derivative of the alpha subunit of tryptophan synthase. Identification of the site of cleavage and characterization of the fragments. Biochemistry. 18 (22), 4827-4835 (1979).
  14. Ahmed, S. A., Miles, E. W., Davies, D. R. Crystallization and preliminary X-ray crystallographic data of the tryptophan synthase alpha 2 beta 2 complex from Salmonella typhimurium. Journal of Biological Chemistry. 260 (6), 3716-3718 (1985).
  15. Miles, E. W., et al. The beta subunit of tryptophan synthase. Clarification of the roles of histidine 86, lysine 87, arginine 148, cysteine 170, and cysteine 230. Journal of Biological Chemistry. 264 (11), 6280-6287 (1989).
  16. Rhee, S., Parris, K. D., Ahmed, S. A., Miles, E. W., Davies, D. R. Exchange of K+ or Cs+ for Na+ induces local and long-range changes in the three-dimensional structure of the tryptophan synthase alpha2beta2 complex. Biochemistry. 35 (13), 4211-4221 (1996).
  17. Rhee, S., et al. Crystal structures of a mutant (betaK87T) tryptophan synthase alpha2beta2 complex with ligands bound to the active sites of the alpha- and beta-subunits reveal ligand-induced conformational changes. Biochemistry. 36 (25), 7664-7680 (1997).
  18. Schneider, T. R., et al. Loop closure and intersubunit communication in tryptophan synthase. Biochemistry. 37 (16), 5394-5406 (1998).
  19. Rhee, S., Miles, E. W., Davies, D. R. Cryo-crystallography of a true substrate, indole-3-glycerol phosphate, bound to a mutant (alphaD60N) tryptophan synthase alpha2beta2 complex reveals the correct orientation of active site alphaGlu49. Journal of Biological Chemistry. 273 (15), 8553-8555 (1998).
  20. Weyand, M., Schlichting, I. Crystal structure of wild-type tryptophan synthase complexed with the natural substrate indole-3-glycerol phosphate. Biochemistry. 38 (50), 16469-16480 (1999).
  21. Sachpatzidis, A., et al. Crystallographic studies of phosphonate-based alpha-reaction transition-state analogues complexed to tryptophan synthase. Biochemistry. 38 (39), 12665-12674 (1999).
  22. Yang, L. H., Ahmed, S. A., Miles, E. W. PCR mutagenesis and overexpression of tryptophan synthase from Salmonella typhimurium: On the roles of beta (2) subunit Lys-382. Protein Expression and Purification. 8 (2), 126-136 (1996).
  23. Green, M. R., Sambrook, J. . Molecular cloning: a laboratory manual. , (2012).
  24. Lowry, O. H., et al. Protein Measurement with the Folin Phenol Reagent. Journal of Biological Chemistry. 193 (1), 265-275 (1951).
  25. Laemmli, U. K. Cleavage of structural proteins during the assembly of the head of bacteriophage T4. Nature. 227 (5259), 680-685 (1970).
  26. Kawasaki, H., Bauerle, R., Zon, G., Ahmed, S. A., Miles, E. W. Site-specific mutagenesis of the alpha subunit of tryptophan synthase from Salmonella typhimurium. Changing arginine 179 to leucine alters the reciprocal transmission of substrate-induced conformational changes between the alpha and beta 2 subunits. Journal of Biological Chemistry. 262 (22), 10678-10683 (1987).
  27. Battye, T. G., Kontogiannis, L., Johnson, O., Powell, H. R., Leslie, A. G. iMOSFLM: a new graphical interface for diffraction-image processing with MOSFLM. Acta Crystallographica Section D Structural Biology. 67, 271-281 (2011).
  28. Evans, P. Scaling and Assessment of Data Quality. Acta Crystallographica Section D-Biological Crystallography. 62, 72-82 (2006).
  29. Winn, M. D., et al. Overview of the CCP4 suite and current developments. Acta Crystallographica Section D-Biological Crystallography. 67, 235-242 (2011).
  30. Vagin, A., Teplyakov, A. Molecular replacement with MOLREP. Acta Crystallographica Section D Structural Biology. 66, 22-25 (2010).
  31. Adams, P. D., et al. PHENIX: a comprehensive Python-based system for macromolecular structure solution. Acta Crystallographica Section D Structural Biology. 66, 213-221 (2010).
  32. Emsley, P., Lohkamp, B., Scott, W. G., Cowtan, K. Features and development of Coot. Acta Crystallographica Section D Structural Biology. 66, 486-501 (2010).
  33. Murshudov, G. N., Vagin, A. A., Dodson, E. J. Refinement of macromolecular structures by the maximum-likelihood method. Acta Crystallographica Section D Structural Biology. 53, 240-255 (1997).
  34. Afonine, P. V., et al. Towards automated crystallographic structure refinement with phenix.refine. Acta Crystallographica Section D Structural Biology. 68, 352-367 (2012).
  35. Matthews, B. W. Solvent content of protein crystals. Journal of Molecular Biology. 33 (2), 491-497 (1968).
  36. Kantardjieff, K. A., Matthews Rupp, B. coefficient probabilities: Improved estimates for unit cell contents of proteins, DNA, and protein-nucleic acid complex crystals. Protein Science. 12 (9), 1865-1871 (2003).

Play Video

Cite This Article
Hilario, E., Fan, L., Mueller, L. J., Dunn, M. F. PCR Mutagenesis, Cloning, Expression, Fast Protein Purification Protocols and Crystallization of the Wild Type and Mutant Forms of Tryptophan Synthase. J. Vis. Exp. (163), e61839, doi:10.3791/61839 (2020).

View Video