Summary

フローとストレッチの下でバイオ材料の炎症と再生能力を評価するマルチキューバイオリアクター

Published: December 10, 2020
doi:

Summary

このプロトコルの目的は、剪断応力と環状ストレッチの分離を可能にするバイオリアクターを使用して、材料駆動組織再生を調査するために、管状の電気スピン足場でヒトマクロファージと筋線維芽細胞の動的共培養を実行することです。

Abstract

体内で直接再生を誘導する再ソーブルバイオマテリアルの使用は、翻訳の観点から魅力的な戦略です。このような物質は、移植時に炎症反応を誘発し、これは材料のその後の再吸収および新しい組織の再生の原動力である。この戦略は、現場組織工学としても知られており、組織工学的に設計された血管移植片などの心血管置換を得るために追求される。炎症と再生プロセスの両方は、足場上の局所的な生体力学的手がかり(すなわち、ストレッチおよび剪断応力)によって決定される。ここでは、管状足場上のストレッチとせん断応力の分離を独自に可能にするカスタム開発バイオリアクターの使用について詳しく説明する。これにより、よく制御された機械的負荷の影響下での管状足場の炎症および再生能力の体系的かつ標準化された評価が可能となり、ヒトマクロファージおよびミオ線維芽細胞を用いた動的共培養実験に基づいて実証する。このアプローチの主要な実践的なステップ(バイオリアクターの構築とセットアップ、足場と細胞の播種の準備、ストレッチとせん断の流れの適用とメンテナンス、分析用のサンプル採取)について詳しく説明します。

Introduction

心臓血管組織工学(TE)は、患者1、2、3、4の大コホートに最適でない現在使用されている永久的な心臓血管補修(例えば、血管移植片、心臓弁置換術)に対する代替治療選択肢として追求されている。多くの求められているアプリケーションは、組織工学的に設計された血管移植片(TEVGs)5、6および心臓弁(TEHV)7、8を含む。ほとんどの場合、心臓血管TEの方法論は、新しい組織が形成される有益な足場として機能する再ソーブルバイオマテリアル(天然または合成のいずれか)を利用する。新しい組織の形成は、細胞で足場を播種し、移植前にバイオリアクターで培養することによって完全にインビトロで設計することができる(in vitroTE)9、10、11、または合成足場が体内に新しい組織の形成を直接誘導するために前培養せずに移植されるその中で直接(situ TEにおいて)12,12, 13.in vitroとininin心臓血管TEアプローチの両方について、機能的再生の成功は、移植された構築物に対する宿主免疫応答および適切な生体力学的負荷の両方に主に依存する。

心血管TEのための生体力学的負荷の重要性は、十分に認められている15.心臓血管インプラントの場合、足場に入る細胞は、血行力学的環境の結果として生じる周期的なストレッチおよびせん断ストレスにさらされる。多くの研究は、様々な細胞タイプによる、例えばコラーゲン16、17、18、19、グリコサミノグリカン(GAGs)20、およびエラスチン21、22、などのマトリックス成分の形成に対する(環状)ストレッチの刺激効果を報告している。例えば、Huang et al. は、二軸ストレッチが血管バイオリアクター23を用いてインビトロTEVGsにおけるコラーゲンおよびエラスチンの堆積および組織を上昇させたことを実証した。主な負荷として強調される一方で、これらの研究は、多くの場合、サンプルがせん断流に曝露されるフロー駆動のバイオリアクターを利用しています。シアストレスが3Dの組織形成や炎症に及ぼす孤立した影響については比較的ほとんど知られていないが、いくつかのデータが利用可能である。例えば、ヒンダーらおよびEohら.は、剪断流が、3D足場微細構造に加えて、インビトロモデルシステム24、25におけるヒト血管平滑筋細胞による成熟エラスチンの形成にとって重要であることを実証した。全体として、これらの知見は、心血管TEの環状ストレッチとせん断ストレスの両方の関連性を示している。

TEインプラントの成功または失敗に対するもう一つの重要な決定要因は、移植された移植片26に対する宿主の免疫応答である。これは、細胞流入および内因性組織形成および再モデリング27のその後のプロセスを開始するために足場に対する急性炎症反応に実際に依存する、その中での物質駆動のTE戦略にとって特に重要である。マクロファージは、機能的組織再生の重要なイニシエータであり、複数の研究28、29、30によって示されている。創傷治癒に類似して、組織の再生は、マクロファージと線維芽細胞と筋線維芽細胞31、32、33などの組織産生細胞との間のパラクリンシグナル伝達によって支配される。新しい組織堆積の調整に加えて、マクロファージは、外来足場材料34、35の活性再吸収に関与している。このように、生体材料に対するインビトロマクロファージ応答は、インプラント36、37、38の生体内成功の予測パラメータとして同定されている。

埋め込まれた足場に対するマクロファージ応答は、材料組成および微細構造35、39、40などの足場設計特徴に依存する足場の特性に加えて、足場に対するマクロファージ応答および筋線維芽細胞とのクロストークも血行力学的負荷の影響を受ける。例えば、環状ストレッチは、マクロファージ表現型41、42、43、44およびサイトカイン43、44、45、46の分泌の重要なモジュレーターであることが示された。マクロファージと血管平滑筋細胞の共培養システムを用いて、Battistonらは、マクロファージの存在がエラスチンおよびGAGのレベルの増加につながり、適度なレベルの環状ストレッチ(1.07-1.10)がコラーゲンIおよびエラスチン47の沈着を刺激することを実証した。これまでの研究では、剪断応力が3Dエレクトロスパン足場48,49への単球採用にとって重要な決定要因であり剪断応力と環状ストレッチの両方がヒト単球と間葉間質細胞50との間のパラクリンシグナル伝達に影響を及ぼすことを実証した。Fahy et al. は、剪断流がヒト単球51による炎症性サイトカインの分泌を増加することを実証した。

まとめると、上記の証拠は、血行力学的負荷の十分な理解と制御が心血管TEにとって重要であり、これを達成するために炎症反応を考慮することが重要であることを示しています。多数のバイオリアクターが、心血管組織のinvitro 52、53、54、55、56、57、58またはex vivo 59、60、61培養物について以前に説明されている。しかし、これらのシステムはすべて、可能な限り生理学的な血行負荷条件を模倣するように設計されています。これは、体外で心血管組織を作成したり、エキビボ培養を維持する目的で非常に貴重であるが,そのようなシステムは、個々の手がかりの個々の効果に体系的な研究を可能にしません.これは、これらのバイオリアクターにおける環状ストレッチとせん断応力の両方の適用は、本質的にそれらをリンクする同じ加圧流によって駆動されるためです。正確なマルチキュー機械操作を可能にするマイクロシステムは、2D基板62または3Dハイドロゲルセットアップ63、64のために記述されているがそのようなセットアップは、エラストマー3D生体材料足場の組み込みを可能にしていない。

ここでは、せん断応力と環状ストレッチの分離を独自に可能にし、個々の効果と組み合わせた効果を機械論的に調査するのに役立つ管状バイオリアクターシステムの適用を提示する。このシステムは、多種多様な組織工学的に設計された血管移植片(例えば、合成または天然起源、異なるマイクロアーキテクチャ、様々な多孔質)の試験を可能にする。せん断応力とストレッチの適用を効果的に切り離すために、バイオリアクターが使用する重要な概念は、(1)異なるポンプシステムを使用したせん断応力とストレッチの制御の分離と(2)計算駆動寸法を持つ「インサイドアウト」方式で足場の刺激です。流れは流れポンプの使用によって管状足場の外面に適用され、足場の周伸張は、足場が別のひずみポンプを使用して取り付けられるシリコーン管を拡大することによって誘発される。シリコンチューブと構成体を含むガラス管の寸法は、スキャフォールド(流れによる)と周伸縮(チューブ膨張による)のせん断応力が互いに大きな影響を与えないようにするために、計算流体力学シミュレーションを使用して慎重に選択され、検証されます。この裏返しの設計には、いくつかの実用的な根拠があります。ストレッチが(生理学的負荷に似た)発光流体圧力によって適用される場合、サンプル設計は本質的に漏れのないものでなければなりません。さらに、サンプルの伸張に必要な圧力は、サンプルの剛性によって完全に決定され、サンプル間およびサンプル内で時間の経過とずれによって変化し、ストレッチの制御が困難になります。このバイオリアクターは、シリコーンチューブの周りに組織工学的に設計された移植片を取り付け、移植片の外壁に壁せん断応力(WSS)の適用を可能にし、内部から移植片を加圧する。このようにして、サンプルとサンプル内の間の等しい負荷条件を時間をかけて確保することができ、また、多孔性血管足場19に対して一般的であるように、サンプルが漏れやすい状態が許される。この内部出力バイオリアクターは、従来の血管バイオリアクターのセットアップがより適しているインビトロのネイティブのような血管のエンジニアリングではなく、せん断および/またはストレッチの効果に関する体系的な研究のために特に意図されています。バイオリアクター設計図面の 図1A-B およびそれに対応する 表1 を参照して、バイオリアクターの主要成分の背後にある機能の説明と根拠を確認してください。

バイオリアクターの使用は、我々は、その現場の心血管組織19、43、44における再ソーブルエレクトロスパン足場における炎症および組織形成に関する剪断ストレスおよび環状ストレッチの個々および組み合わせた影響を調査した我々のグループによる一連の最近の研究に基づいて実証される。そのために、ヒトマクロファージと筋線維芽細胞をモノ培養または共培養で使用して、イン・シチュの再生カスケードの様々な相をシミュレートしました。ヒトマクロファージによるサイトカイン分泌は、周期的な伸縮とせん断応力の両方によって明らかに影響を受け、これらの足場におけるヒト筋線維芽細胞によるマトリックス沈着および組織に影響を及ぼすことを実証した。特に、これらの研究は、せん断応力とストレッチの併用の場合、組織形成および炎症への影響が2つの負荷のいずれかによって支配されるか、または両方の負荷の相乗効果があることを明らかにした。これらの知見は、両方の負荷を分離して、TE プロセスにおける機械的環境の寄与をより深く理解する関連性を示している。この理解は、関連する血行負荷のレジームでスキャフォールド設計パラメータを体系的に最適化するために適用できます。さらに、このような十分に制御された環境からの機械化データは、TEV65またはTEHV66に対して最近報告されているように、その場での組織改修の経過を予測するために開発されている数値モデルの入力として役立つ可能性があり、予測能力をさらに向上させる。

Protocol

本プロトコルに記載された研究では、冠状動脈通過手術後にサペヌス静脈から分離された末梢血バフィーコートおよびヒト筋線維芽細胞から分離されたヒトマクロファージの原発が44に用いられている。バフィーコートは、サンキン研究制度医学倫理委員会によって承認された書面によるインフォームド・コンセントを提供した健康で匿名のボランティアから入手されまし?…

Representative Results

このバイオリアクターは、3D生体材料足場における血管組織の成長とリモデリングに対するせん断応力と環状ストレッチの個々および組み合わせ効果を研究するために開発されました。バイオリアクターの設計により、様々な負荷条件下で最大8個の血管構造を培養することができます(図1A)。血管構築物は、周延伸とWSSの両方を独立して制御できるフロー培養チャンバー…

Discussion

本明細書に記載されたバイオリアクターは、尿細管付動性足場における炎症および組織再生に対する剪断応力および環状ストレッチの個々および結合された影響の系統的評価を可能にする。このアプローチはまた、代表的な結果セクションで例示されるように、血管構造上で行われる多種多様な分析を可能にする。これらの結果は、TEVG構造の成長とリモデリングの両方に異なる血行力負荷レ…

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

この研究は、LSH 2Treatプログラム(436001003)とオランダ腎臓財団(14a2d507)の一環としてZonMwによって財政的に支援されています。N.A.K.は、欧州研究評議会(851960)からの支援を認めています。オランダ科学研究機構(024.003.013)が出資する重力プログラム「物質主導再生」を感謝します。

Materials

advanced Dulbecco’s modified EagleMedium (aDMEM) Gibco 12491-015 cell culture medium for fibroblasts
Aqua Stabil Julabo 8940012 prevent microorganism growth in bioreactor-hydraulic reservoir
Bovine fibrinogen Sigma F8630 to prepare fibrinogen gel to seed the cells on the electrospun scaffold
Bovine thrombin Sigma T4648 to prepare fibrinogen gel to seed the cells on the electrospun scaffold
Centrifuge Eppendorf 5804 to spin down cells and conditioned medium
Clamp scissor – "kelly forceps" Almedic P-422 clamp the silicone tubing and apply pre-stretch to the scaffold so the scaffold can be sutured into the engraved groove (autoclave at step 1, step 7)
CO2 cell culture incubators Sanyo MCO-170AIC-PE for cell culturing
Compressed air reservoir Festo CRVZS-5 smoothing air pressure fluctuations and create time delays for pressure build-up
Custom Matlab script to calculate the maximum stretches Matlab R2017. The Mathworks, Natick, MA calculate the minimum and maximum outer diameter of the electrospun scaffold
Data acquisition board National Instruments BNC-2090 data processing in between amplifier system and computer
Ethanol VWR VWRK4096-9005 to keep sterile working conditions
Fetal bovine calf serum (FBS) Greiner 758087 cell culture medium supplement; serum-supplement
Flow culture chamber compartments, consisting of a pressure conduit with engraved grooves and small holes to apply pressure on silicone tubing, a screw thread, nose cone, top compartment with flow inlet and bottom compartment flow outlet, adapter bushing Custom made, Department of Biomedical Engineering, Eindhoven University of Technology n.a. flow culture chamber compartments (autoclave at step 1, step 7)
Glass Pasteur pipet Assistant HE40567002 apply vacuum on electrospun scaffold (autoclave at step 1)
Glass tubes of the flow culture chamber Custon made, Equipment & Prototype Center, Eindhoven University of Technology n.a. part of the flow culture chamber (clean and store in 70% ethanol, at step 1 and 7)
GlutaMax Gibco 35050061 cell culture medium amino acid supplement, minimizes ammonia build-up
High speed camera MotionScope M-5 to monitor the stretch during culture; time-lapse photographs of the scaffolds are captured at a frequency of 30 Hz for 6 sec (i.e. 3 stretch cycles)
High speed camera lens – Micro-NIKKOR 55mm f/2.8 – lens Nikon JAA616AB to monitor the stretch during culture; time-lapse photographs of the scaffolds are captured at a frequency of 30 Hz for 6 sec (i.e. 3 stretch cycles)
Hose clip ibidi GmbH 10821 block medium flow (autoclave at step 1, step 7)
Hydraulic reservoir with 8 screw threads for 8 flow culture chambers Custom made, Department of Biomedical Engineering, Eindhoven University of Technology n.a. to apply pressure to the silicone mounted constructs (clean outside with a paper tissue with 70% ethanol, rinse reservoir with 70% ethanol followed by demi water, at step 1 and 7)
Ibidi pump system (8x) including ibidi pump, PumpControl software, fluidic unit, perfusion set (medium tubing), air pressure tubing, drying bottles with orange silica beads ibidi GmbH 10902 set up used to control the flow in the flow culture chambers. Note 1: the ibidi pumps were modified by the manufacturer to enable 200 mbar capacity. Note 2: can be replaced by pump system of other manufacturer, as long as same flow regimes can be applied.
Knives (no.10 sterile blades, individual foil pack) and scalpel handle (stainless steel, individually wrapped) Swann Morton 0301; 0933 to cut the silicone tubing in the correct size for the scaffold and to cut the suture material
LabVIEW Software National Instruments version 2018 to control the stretch applied to the scaffolds
Laminar flow biosafety cabinet with UV light Labconco 302310001 to ensure sterile working conditions. The UV is used to decontaminate everything that cannot be autoclaved, or touched after autoclaving
Large and small petri dishes Greiner 664-160 for sterile working conditions
L-ascorbic acid 2-phosphate (vitamin C) Sigma A8960 cell culture medium supplement, important for collagen production
LED light cold source KL2500 Zeiss Schott AG to aid in visualization for the time lapse of the scaffolds during monitoring of the stretch
Luer (female and male) locks and connectors, white luer caps ibidi GmbH various, see (https://ibidi.com/26-flow-accessories) to close or connect parts of the bioreactor and the ibidi pump (autoclave at step 1, step 7)
Measuring amplifier (PICAS) PEEKEL instruments B.V. n.a. to amplify the signal from the pressure sensor and feedback to LabView
Medium reservoir (large syringes 60 mL) and reservoir holders ibidi GmbH 10974 medium reservoir (autoclave at step 1, step 7)
Medium tubing with 4.25 mm outer diameter and 1 mm inner diameter Rubber BV 1805 to allow for a larger flow rate, the ibidi medium tubing with larger diameter is used. Note: the part of medium tubing guided through the fluidic unit valves are the same as the default ibidi medium tubing
Motion Studio Software Idtvision 2.15.00 to make the high speed time lapse images for stretch monitoring
Needle (19G) BD Microlance 301700 together with thin flexible tubing used to fill the hydraulic reservoir with ultrapure water without adding air bubbles
Needle driver Adson 2429218 to handle the needle of the nylon suture through the silicone tube (autoclave at step 1, step 7)
Paper tissues Kleenex 38044001 for cleaning of the equipment with 70% ethanol
Parafilm Sigma P7793-1EA quick fix if leakage occurs
Penicillin/streptomycin (P/S) Lonza DE17-602E cell culture medium supplement; prevent bacterial contamination
Phosphate Buffered Saline (PBS) Sigma P4417-100TAB for storage and washing steps (autoclave at step 1)
Plastic containers (60 mL) with red screw caps Greiner 206202 to prepare the fibrinogen solution
Pneumatic cylinder Festo AEVC-20-10-I-P to actuate the Teflon bellow (clean with a paper tissue with 70% ethanol at step 1 and 7)
Polycaprolactone bisurea (PCL-BU) tubular scaffolds (3 mm inner diameter, 200 µm wall thickness, 20 mm length) SyMO-Chem, Eindhoven, The Netherlands n.a. produced using electrospinning from 15% (w/w) chloroform (Sigma; 372978) polymer solutions. See Van Haaften et al Tissue Engineering Part C (2018) for more details
Pressure conduit without holes (for static control) Custom made, Department of Biomedical Engineering, Eindhoven University of Technology n.a. to mount electrospun tubes on silicon tubing (autoclave at step 1, step 7)
Pressure sensor and transducer BD TC-XX and P 10 EZ the air pressure going to the pneumatic actuated pump is raised until it reaches the set pressure
Proportional air pressure control valve and pressure sensor Festo MPPES-3-1/8-2-010, 159596 provides compressed air to the pneumatic actuated pump
Roswell Park Memorial Institute 1640 (RPMI-1640) Gibco A1049101 cell culture medium for monocyte/macrophage
Safe lock Eppendorf tubes (1.5 mL) Eppendorf 30120086 multiple applications (autoclave at step 1)
Sodium dodecyl sulfate solution 20% Sigma 5030 Used to clean materials, at a concentration of 0.1%.  
Silicone O-rings Technirub 1250S to prevent leakage (autoclave at step 1, step 7)
Silicone tubing (2.8 mm outer diameter, 400 um wall thickness) Rubber BV 1805 to mount the electrospun tubes on the pressure conduits (autoclave at step 1)
Sterile tube (15 mL) Falcon 352095 multiple applications
Suture, 5-0 prolene with pre-attached taper point needle Ethicon, Johnson&Johnson EH7404H Prolene suture wire 5-0 (75cm length, TF taper point needle, 1/2 circle, 13 mm needle length)
Syringe (24 mL) B. Braun Melsungen AG 2057932 to add the ultrapure water or medium to the hydraulic reservoir or flow culture chamber
Syringe filter (0.2 µm) Satorius 17597-K to filter the fibrinogen solution
T150 cell culture flask with filter cap Nunc 178983 to degas culture medium
T75 Cell culture flask with filter cap Nunc 156499 to culture static control samples
Teflon bellow Custom made, Department of Biomedical Engineering, Eindhoven University of Technology n.a. to load the hydraulic reservoir (clean outside with a paper tissue with 70% ethanol at step 1 and 7)
Tray (stainless steel) PolarWare 15-248 for easy transport of the fluidic culture chambers and the bioreactor from incubator to laminar flow cabinet and back (clean with a paper tissue with 70% ethanol before and after use)
Tweezers Wironit 4910 sterile handling of individual parts (autoclave at step 1 and 7)
Ultrapure water Stakpure Omniapure UV 18200002 to correct for medium evaporation, mixed with aqua stabil mixed and used as hydraulic fluid. (autoclave ultrapure water at step 1)
UV light Philips TUV 30W/G30 T8 for decontamination of grafts and bioreactor parts before seeding

References

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Koch, S. E., van Haaften, E. E., Wissing, T. B., Cuypers, L. A. B., Bulsink, J. A., Bouten, C. V. C., Kurniawan, N. A., Smits, A. I. P. M. A Multi-Cue Bioreactor to Evaluate the Inflammatory and Regenerative Capacity of Biomaterials under Flow and Stretch. J. Vis. Exp. (166), e61824, doi:10.3791/61824 (2020).

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