Summary

Aislamiento y análisis de lipoproteínas plasmáticas por ultracentrifugación

Published: January 28, 2021
doi:

Summary

Se han utilizado varios métodos para analizar lipoproteínas plasmáticas; sin embargo, ultracentrifugación sigue siendo uno de los métodos más populares y confiables. Aquí, describimos un método con respecto a cómo aislar las lipoproteínas del plasma utilizando ultracentrifugación de densidad secuencial y cómo analizar las apolipoproteínas con fines diagnósticos y de investigación.

Abstract

El análisis de lipoproteínas plasmáticas y apolipoproteínas es una parte esencial para el diagnóstico de dislipidemia y estudios de metabolismo lipídico y aterosclerosis. Aunque hay varios métodos para analizar lipoproteínas plasmáticas, ultracentrifugación sigue siendo uno de los métodos más populares y fiables. Debido a su procedimiento de separación intacto, las fracciones de lipoproteína aisladas por este método se pueden utilizar para el análisis de lipoproteínas, apolipoproteínas, proteomas, y estudio funcional de lipoproteínas con células cultivadas in vitro. Aquí, proporcionamos un protocolo detallado para aislar siete fracciones de lipoproteína incluyendo VLDL (d<1.006 g/mL), IDL (d=1.02 g/mL), PMA (d=1.04 y 1.06 g/mL), HDL (d=1.08, 1.10, y 1.21 g/mL) de plasma de conejo utilizando ultracentrifugación flotante secuencial. Además, presentamos a los lectores cómo analizar apolipoproteínas como apoA-I, apoB y apoE por SDS-PAGE y Western blotting y mostrar resultados representativos de perfiles de lipoproteína y apolipoproteína utilizando modelos de conejo hiperlipidémico. Este método puede convertirse en un protocolo estándar para que tanto los médicos como los científicos básicos analicen las funciones de lipoproteína.

Introduction

La dislipidemia es el principal factor de riesgo de la enfermedad aterosclerótica en el mundo. Los altos niveles de lipoproteínas de baja densidad (PMA) y los bajos niveles de lipoproteínas de alta densidad (HDL) están estrechamente asociados con un alto riesgo de enfermedad coronaria (CHD)1,2. En el entorno clínico, tanto el colesterol LDL (LDL-C) como el colesterol HDL (HDL-C) se miden rutinariamente utilizando un analizador automatizado en un laboratorio clínico3,4. A pesar de esto, es esencial analizar los perfiles de lipoproteína en detalle para el diagnóstico de dislipidemia y el estudio del metabolismo lipídico y la aterosclerosis en animales humanos y experimentales. Se han notificado varios métodos para analizar lipoproteínas plasmáticas como ultracentrifugación, cromatografía de exclusión de tamaño [cromatografía líquida de proteína rápida (FPLC) y cromatografía líquida de alto rendimiento (HPLC)], electroforesis por agarose y geles de poliacrilamida, resonancia magnética nuclear y precipitación química selectiva utilizando polianiones y cálculos divalentes u otros productos químicos. En la década de 1950, el grupo de Havel propuso por primera vez el concepto de lipoproteínas definidas por densidades utilizando ultracentrifugación y las clasificó en chylomicrons (CM), lipoproteínas de muy baja densidad (VLDL), lipoproteínas de densidad intermedia (IDL), LDL y HDL5 y posteriores, el método fue modificado por otros grupos6,7. Hasta ahora, ultracentrifugación es el método más popular y fiable, mientras que el protocolo práctico todavía no está disponible. En este artículo, intentamos describir un protocolo fácil de usar para aislar una pequeña escala de plasma utilizando ultracentrifugación flotante de densidad secuencial descrita originalmente anteriormente8. Aislamiento de siete fracciones plasmáticas de lipoproteína [VLDL (d<1.006 g/mL), IDL (d=1.02 g/mL), PMA (d=1.04 y 1.06 g/mL), HDLs (d=1.08, 1.10, y 1.21 g/mL)] permite a los investigadores hacer un análisis exhaustivo de las lipoproteínas y sus apolipoproteínas composicionales9,10,11. Las lipoproteínas intactas de siete densidades consecutivas se pueden utilizar para analizar las funciones de lipoproteína y también servir para estrategias in vitro basadas en células. Este protocolo debe ser útil tanto para el diagnóstico clínico como para la investigación básica. Aquí usamos plasma de conejo como ejemplo para demostrar esta técnica, mientras que el plasma de otras especies se puede aplicar de la misma manera.

Protocol

Todos los procedimientos para los estudios de conejo se realizaron con la aprobación del Comité Institucional de Cuidado y Uso de Animales de la Universidad de Yamanashi (Número aprobado: A28-39). 1. Separación plasmática de sangre de conejo Preparar microtubos de 1,5 ml que contengan 15 μL de 0,5 M EDTA (pH 8,0) para la recolección de sangre. Ponga un conejo en un retenedador y pinche una arteria intermedia auricular usando una aguja del calibre 22 y recoja sangre e…

Representative Results

Usando este protocolo, aislamos lipoproteínas de conejo usando 1 ml de plasma y obtuvimos siete fracciones de densidad. Las fracciones aisladas de densidad son suficientes para medir lípidos y apolipoproteínas como se describió anteriormente para la mayoría de los propósitos de investigación. El mismo procedimiento también se puede utilizar para aislar lipoproteínas plasmáticas de especies humanas y de otras especies. Para animales pequeños como ratones, se requiere plasma agrupado. Figura…

Discussion

La hiperlipidemia es uno de los factores de riesgo más importantes de la enfermedad aterosclerótica. Por lo tanto, el análisis de lipoproteínas plasmáticas no sólo es esencial para el diagnóstico de pacientes con dislipidemia, sino también importante para la investigación de mecanismos moleculares del metabolismo de la lipoproteína y la aterosclerosis. En este estudio, describimos el protocolo de aislamiento y análisis de lipoproteínas plasmáticas que se pueden aplicar en los laboratorios donde hay ultracent…

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Este trabajo fue apoyado en parte por una beca de investigación de JSPS KAKENHI Grant Number JP 20K08858, la Fundación Nacional de Ciencias Naturales de China (No. 81941001 y 81770457), JSPS-CAS bajo el Programa Cooperativo de Investigación Japón-China.

Materials

22-gauge needle Terumo NN-2232S For blood collection
96-well microplate greiner bio-one 655101 For lipids measurment
Anti-apolipoprotein A-I antibody LifeSpan BioSciences LS-C314186 For Western blottng, use 1:1,000
Anti-apolipoprotein B antibody ROCKLAND 600-101-111 For Western blottng, use 1:1,000
Anti-apolipoprotein E antibody Merck Millipore AB947 For Western blottng, use 1:1,000
CBB staining kit FUJIFILM Wako Pure Chemical 299-50101 For apolipoprotein analysis
Centrifuge HITACHI himac CF15RN
Closure Spectrum 132736 For lipoprotein dialysis
Dialysis tubing FUJIFILM Wako Pure Chemical 043-30921 For lipoprotein dialysis, MWCO 14,000
Dry heat block Major Science MD-01N For SDS-PAGE sample preparation
ECL Western blotting detection reagents GE Healthcare RPN2209 For Western blotting
Electrophoresis Chamber BIO-RAD Mini-PROTEAN Tetra Cell
Ethylenediamine-N,N,N',N'-tetraacetic acid (EDTA) disodium salt dihydrate FUJIFILM Wako Pure Chemical 345-01865 For anticoagulant (0.5 M), for dialysis (1 mM)
Filter paper ADVANTEC 590 For Western blotting
Fixed angle ultracentrifuge rotor BECKMAN COULTER 357656 TLA-120.2
Fixing solution For SDS-PAGE (50% Methanol/ 10% Acetic acid)
Immun-Blot PVDF menbrane BIO-RAD 1620177 For Western blotting
Lumino image analyzer GE Healthcare For Western blotting, ImageQuant LAS 4000
Magnetic stirrer ADVANTEC SR-304 For lipoprotein dialysis
Microplate reader iMARK BIO-RAD For lipids measurment
Microtube INA-OPTIKA SC-0150
Orbital agitator USBDbo Stovall Life Science
Peroxidase congugated anti goat IgG antibody Jackson ImmunoResearch 705-035-003 For Western blotting, use 1:2,000
Peroxidase congugated anti mouse IgG antibody Jackson ImmunoResearch 715-035-150 For Western blotting, use 1:2,000
Phospholipids assay kit FUJIFILM Wako Pure Chemical 433-36201 For lipids measurment
Polycarbonate ultracentrifuge Tubes BECKMAN COULTER 343778
Potassium Bromide FUJIFILM Wako Pure Chemical 168-03475 For density solution
Power Supply BIO-RAD For SDD-PAGE and Western blotting, PowerPac 300, PowerPac HC
Protein standards Precidion Plus Protein Dual Xtra BIO-RAD 161-0377 For SDS-PAGE and Western blotting
Rabbit restrainer Natsume Seisakusho KN-318 For blood collection
Rotor HITACHI T15A43
SDS-PAGE running buffer 25 mM Tris/ 192 mM Glycine/ 0.1% SDS
SDS-PAGE sample buffer (2x) 0.1M Tris-HCl (pH 6.8)/ 4% SDS/ 20% glycerol/ 0.01% BPB/12% 2-merpaptoethanol
SDS-polyacrylamide gel 4-20% gradient polyacrylamide gel
Skim milk powder FUJIFILM Wako Pure Chemical 190-12865 For Western blotting blocking buffer (5% skim milk/ 0.1% Tween 20/ PBS)
Total cholesterol assay kit FUJIFILM Wako Pure Chemical 439-17501 For lipids measurment
Triglyicerides assay kit FUJIFILM Wako Pure Chemical 432-40201 For lipids measurment
Tube slicer for thick-walled tube BECKMAN COULTER 347960 For lipoprotein isolation
Tween 20 SIGMA-ALDRICH P1379 For Western blotting washing buffer (0.1% Tween 20/ PBS)
Ultracentrifuge BECKMAN COULTER A95761 Optima MAX-TL
Western blotting wet transfer system BIO-RAD Mini Trans-Blot Cell

References

  1. Gordon, T., Castelli, W. P., Hjortland, M. C., Kannel, W. B., Dawber, T. R. High density lipoprotein as a protective factor against coronary heart disease: The Framingham study. The American Journal of Medicine. 62 (5), 707-714 (1977).
  2. Baigent, C., et al. Efficacy and safety of cholesterol-lowering treatment: prospective meta-analysis of data from 90,056 participants in 14 randomised trials of statins. Lancet. 366 (9493), 1267-1278 (2005).
  3. Nauck, M., Warnick, G. R., Rifai, N. Methods for Measurement of LDL-Cholesterol: A Critical Assessment of Direct Measurement by Homogeneous Assays versus Calculation. Clinical Chemistry. 48 (2), 236-254 (2002).
  4. Warnick, G. R., Nauck, M., Rifai, N. Evolution of Methods for Measurement of HDL-Cholesterol: From Ultracentrifugation to Homogeneous Assays. Clinical Chemistry. 47 (9), 1579-1596 (2001).
  5. Havel, R. J., Eder, H. A., Bragdon, J. H. The distribution and chemical composition of ultracentrifugally separated lipoproteins in human serum. The Journal of Clinical Investigation. 34 (9), 1345-1353 (1955).
  6. Hatch, F. T., Lees, R. S. Practical Methods for Plasma Lipoprotein Analysis. Advances in Lipid Research. 6, 1-68 (1968).
  7. Lindgren, F. T., Adamson, G. L., Jenson, L. C., Wood, P. D. Lipid and lipoprotein measurements in a normal adult American population. Lipids. 10 (12), 750-756 (1975).
  8. Fan, J., et al. Overexpression of hepatic lipase in transgenic rabbits leads to a marked reduction of plasma high density lipoproteins and intermediate density lipoproteins. Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America. 91, 8724-8728 (1994).
  9. Wang, Y., et al. Human Apolipoprotein A-II Protects Against Diet-Induced Atherosclerosis in Transgenic Rabbits. Arteriosclerosis, Thrombosis, and Vascular Biology. 33 (2), 224-231 (2013).
  10. Niimi, M., et al. ApoE knockout rabbits: A novel model for the study of human hyperlipidemia. Atherosclerosis. 245, 187-193 (2016).
  11. Zhang, J., et al. Deficiency of Cholesteryl Ester Transfer Protein Protects Against Atherosclerosis in RabbitsHighlights. Arteriosclerosis, Thrombosis, and Vascular Biology. 37 (6), 1068-1075 (2017).
  12. Yan, H., et al. Endothelial Lipase Exerts its Anti-Atherogenic Effect through Increased Catabolism of β-VLDLs. Journal of Atherosclerosis and Thrombosis. 40 (9), 2095-2107 (2020).
  13. Fan, J., et al. Overexpression of Lipoprotein Lipase in Transgenic Rabbits Inhibits Diet-induced Hypercholesterolemia and Atherosclerosis. Journal of Biological Chemistry. 276 (43), 40071-40079 (2001).
  14. Koike, T., et al. Expression of Human ApoAII in Transgenic Rabbits Leads to Dyslipidemia: A New Model for Combined Hyperlipidemia. Arteriosclerosis, Thrombosis, and Vascular Biology. 29 (12), 2047-2053 (2009).
  15. Ichikawa, T., et al. Overexpression of lipoprotein lipase in transgenic rabbits leads to increased small dense LDL in plasma and promotes atherosclerosis. Laboratory investigation; a Journal of Technical Methods and Pathology. 84 (6), 715-726 (2004).
  16. von Zychlinski, A., Kleffmann, T. Dissecting the proteome of lipoproteins: New biomarkers for cardiovascular diseases. Translational Proteomics. 7, 30-39 (2015).
  17. Yan, H., et al. Apolipoprotein CIII Deficiency Protects Against Atherosclerosis in Knockout Rabbits. Arteriosclerosis, Thrombosis, and Vascular Biology. 28 (2), 157-168 (2021).
  18. Kang, I., Park, M., Yang, S. J., Lee, M. Lipoprotein Lipase Inhibitor, Nordihydroguaiaretic Acid, Aggravates Metabolic Phenotypes and Alters HDL Particle Size in the Western Diet-Fed db/db Mice. International Journal of Molecular Sciences. 20 (12), 3057 (2019).
  19. De Silva, H. V., et al. Overexpression of human apolipoprotein C-III in transgenic mice results in an accumulation of apolipoprotein B48 remnants that is corrected by excess apolipoprotein E. Journal of Biological Chemistry. 269 (3), 2324-2335 (1994).
  20. Usui, S., Hara, Y., Hosaki, S., Okazaki, M. A new on-line dual enzymatic method for simultaneous quantification of cholesterol and triglycerides in lipoproteins by HPLC. Journal of Lipid Research. 43 (5), 805-814 (2002).

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Cite This Article
Niimi, M., Yan, H., Chen, Y., Wang, Y., Fan, J. Isolation and Analysis of Plasma Lipoproteins by Ultracentrifugation. J. Vis. Exp. (167), e61790, doi:10.3791/61790 (2021).

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