Summary

Быстрое определение антител-антигена Аффинити по массовой фотометрии

Published: February 08, 2021
doi:

Summary

Мы описываем одномекулярный подход к измерениям сродства антиген-антител с использованием массовой фотометрии (MP). Протокол на основе MP быстр, точен, использует очень небольшое количество материала и не требует модификации белка.

Abstract

Измерения специфичности и сродства взаимодействий антиген-антител критически важны для медицинского и исследовательского применения. В этом протоколе мы описываем внедрение новой одномекулярной техники, массовой фотометрии (MP), для этой цели. MP — это метод без этикеток и иммобилизации, который обнаруживает и количественно определяет молекулярные массы и популяции антител и антиген-антител на одном молекулярном уровне. Депутат анализирует образец антиген-антитела в течение нескольких минут, что позволяет точно определить связывающее сродство и одновременно предоставлять информацию о стоихиометрии и олигомерном состоянии белков. Это простой и простой метод, который требует только пикомол количества белка и не дорогие расходные расходные материалов. Та же процедура может быть использована для изучения белково-белкового связывания белков с молекулярной массой более 50 кДа. Для многовалентных белковых взаимодействий, сродства нескольких связывающих участков могут быть получены в одном измерении. Однако одномекулярный режим измерения и отсутствие маркировки накладывает некоторые экспериментальные ограничения. Этот метод дает наилучшие результаты при применении к измерениям субмимолярного взаимодействия сродства, антигенов с молекулярной массой 20 кДа или больше, и относительно чистых образцов белка. Мы также описываем процедуру выполнения необходимых этапов установки и расчета с использованием базового программного обеспечения для анализа данных.

Introduction

Антитела стали повсеместными инструментами молекулярной биологии и широко используются как в медицинских, так и в научно-исследовательских приложениях. В медицине, они имеют решающее значение в диагностике, но их терапевтическое применение также расширяется и новые антитела на основетерапии постоянно разрабатываются 1,2,3,4. Научное применение антител включает в себя множество незаменимых лабораторных методов, таких как иммунофлуоресценция5,иммунопреципиентация 6,цитометрия потока 7,ELISA и западное blotting. Для каждого из этих применений, получение точных измерений связывающих свойств антитела, включая связывающее сродство и специфичность, имеет решающее значение.

С тех пор как в 1990 году был введен первый коммерческий прибор для производства поверхностных плазмоновых резонансов (SPR), оптические биосенсоры стали «золотым стандартом» характеристики антител, но другие методы, включая ELISA, также регулярно используются дляизмерения сродства антител 8,9. Эти методы обычно требуют иммобилизации или маркировки анализируемых молекул, что потенциально может повлиять на взаимодействие интересов. Они также относительно медленные, включающие несколько этапов анализа, прежде чем результаты могут быть собраны для анализа данных. Недавно разработанный одномекулярный метод, массовая фотометрия (MP), обнаруживает молекулы непосредственно в растворе, когда они приземляются на поверхность микроскопа coverslip10,11. Световое рассеяние на основе оптического обнаружения, которое использует MP, не требует маркировки или модификации белка. Индивидуальные молекулы белка регистрируются интерферометрическим рассеянным микроскопом как темные пятна, появляющиесяна изображении (рисунок 1D),и несколько тысяч молекул могут быть обнаружены в течение одной минуты полученияданных 12. Сигнал, генерируемый каждой отдельной частицей, измеряется количественно, и рассчитывается его контрастное значение (относительная темнота). Значения интерферометрического контраста пропорциональны молекулярным массам белков, что позволяет идентифицировать связанные и свободные виды в смеси антиген-антител. В то же время, подсчитывая молекулярные посадочные явления, депутат напрямую измеряет популяции видов. Это дает методам, основанным на MP, уникальную возможность независимой количественной оценки сродства нескольких связывающих сайтов.

Связывание молекул антигена(Ag) с двумя связывающими участками нетронутого антитела(Ab) может быть описано как:
Equation 1
с константами равновесной ассоциации Ka1 и Ka2, определяемыми как:
Equation 2
где ci и fя представляю концентрацию и фракцию компонента i,соответственно. Общая концентрация антигена (cAg)tot может быть выражена как:
Equation 3

Так как общие концентрации антитела (cAb )totи антигена (cAg)tot известны, это уравнение может быть использовано непосредственно для непосредственного времени подходят экспериментальные компонентные фракции, полученные из измерений MP и вычислить константы равновесной ассоциации Ka1 и Ka2 (см. Дополнительную информацию).

Данные MP также могут быть использованы для оценки кооператорности между двумя сайтами связывания антител11. Для двух паратопов антител с идентичными микроскопическими связывающими константами, статистические факторы, описывающие процесс популяции Аб Аг и Аб Ag2 комплексы диктуют, что очевидное макроскопическое равновесие константы Ka1 и Ka2 не будет численно равным, и K a1 и 4Ka2. Таким образом, экспериментальные значения Ka1 lt; 4Ka2 указывают на положительную кооператорность между двумя сайтами связывания антител. Аналогичным образом, Ka1 и 4Ka2 указывает на отрицательную кооператорность.

Измерения MP антиген-антитела связывая сродства быстры и требуют малого количества материала. Массовые распределения MP, используемые для равновесных постоянных расчетов, предоставляют дополнительную информацию о свойствах выборки и позволяют оценить чистоту выборки, олигомеризацию и агрегацию в одном эксперименте. Тот же метод может быть использован для измерения высокой сродства белково-белковой привязки, и MP особенно полезен для исследований многовалентных белковых взаимодействий. Мульти-белковые комплексы обычно имеют большие молекулярные массы, оптимальные для обнаружения MP, и одномекулярные данные могут быть использованы для измерения стоихиометрии и расчета сродства нескольких связывающих участков одновременно. Эта информация, как правило, трудно получить с помощью навалочных методов.

Без изменений текущий протокол подходит для измерений относительно высокого сродства, субмимолярных взаимодействий с антигенами молекулярной массы 20 кДа и больше. Для достижения оптимальных результатов запасы белка должны быть высокой чистоты, но особых требований к буферу не существует. С помощью MP, связывание антиген-антител может быть оценено менее чем за пять минут. Сбор и анализ данных, необходимых для точных расчетов Kd, может быть выполнен в течение 30 минут.

Protocol

1. Подготовь камеры потока Очистите стеклянные крышки Используя мыть бутылки с дистиллированной водой, этанолом и изопропанолом, промыть 24 мм х 50 мм крышки в следующем порядке: вода, этанол, вода, изопропанол, вода. Высушите крышки потоком чистого азота. Важно, чтобы промыть кры?…

Representative Results

Ранее мы исследовали взаимодействие человека α-тромбина (HT) и мыши моноклональных антител к тромбину человека (AHT) с использованием MP на основеанализа 11. Поскольку молекулярная масса HT (37 kDa) ниже предела обнаружения 40 кДа, максимальная концентрация образца может превышать о…

Discussion

Протокол на основе массовой фотометрии, изложенный здесь, обеспечивает быстрый и точный метод измерения антиген-антител, связывающих сходства. Анализ MP использует очень небольшое количество материала, и дополнительная информация, включая стоихиометрию, олигомеризацию и чистоту, може…

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Мы благодарим Кейра Ноймана за его критическое прочтение рукописи. Эта работа была поддержана внутримунной программой NHLBI, NIH.

Materials

AcquireMP Refeyn MP data collection software
Anti-human thrombin Haematologic Technologies AHT-5020 RRID: AB_2864302
Cotton-tipped applicators Thorlabs CTA10 cotton optical swabs for lens cleaning
Coverslips 24×24 mm Globe Scientific 1405-10
Coverslips 24×50 mm Fisher Scientific 12-544-EP
DiscoverMP Refeyn MP data processing software
Forceps Electron Microscopy Sciences 78080-CF soft-tipped forceps for coverslips handling
Human α-thrombin Haematologic Technologies HCT-0020
Immersion oil Thorlabs MOIL-30
Isopropanol Alfa Aesar 36644
Microsoft Excel Microsoft spreadsheet
OneMP Refeyn Mass Photometry instrument
Origin OriginLab scientific graphing software
PBS Corning 46-013-CM 10x stock
Syringe filter Millipore SLGSR33SS buffer and sample filtering

References

  1. Francis, R. J., et al. A phase I trial of antibody directed enzyme prodrug therapy (ADEPT) in patients with advanced colorectal carcinoma or other CEA producing tumours. British Journal of Cancer. 87 (6), 600-607 (2002).
  2. van Dyck, C. H. Anti-Amyloid-beta Monoclonal Antibodies for Alzheimer’s Disease: Pitfalls and Promise. Biological Psychiatry. 83 (4), 311-319 (2018).
  3. Vennepureddy, A., Singh, P., Rastogi, R., Atallah, J. P., Terjanian, T. Evolution of ramucirumab in the treatment of cancer – A review of literature. Journal of Oncology Pharmacy Practice. 23 (7), 525-539 (2017).
  4. Waldmann, T. A. Immunotherapy: past, present and future. Nature Medicine. 9 (3), 269-277 (2003).
  5. Huang, B., Bates, M., Zhuang, X. Super-resolution fluorescence microscopy. Annual Review of Biochemistry. 78, 993-1016 (2009).
  6. Rosenberg, M. I. . Protein Analysis and Purification. , (2005).
  7. Picot, J., Guerin, C. L., Le Van Kim, C., Boulanger, C. M. Flow cytometry: Retrospective, fundamentals and recent instrumentation. Cytotechnology. 64 (2), 109-130 (2012).
  8. Khan, S. H., Farkas, K., Kumar, R., Ling, J. A versatile method to measure the binding to basic proteins by surface plasmon resonance. Analytical Biochemistry. 421 (2), 385-390 (2012).
  9. Lofgren, J. A., et al. Comparing ELISA and surface plasmon resonance for assessing clinical immunogenicity of panitumumab. The Journal of Immunology. 178 (11), 7467-7472 (2007).
  10. Young, G., et al. Quantitative mass imaging of single biological macromolecules. Science. 360 (6387), 423-427 (2018).
  11. Wu, D., Piszczek, G. Measuring the affinity of protein-protein interactions on a single-molecule level by mass photometry. Analytical Biochemistry. 592, 113575 (2020).
  12. Cole, D., Young, G., Weigel, A., Sebesta, A., Kukura, P. Label-free single-molecule imaging with numerical-aperture-shaped interferometric scattering microscopy. ACS Photonics. 4 (2), 211-216 (2017).
  13. Soltermann, F., et al. Quantifying protein-protein interactions by molecular counting with mass photometry. Angewandte Chemie International Edition in English. 59 (27), 10774-10779 (2020).
  14. Kemmer, G., Keller, S. Nonlinear least-squares data fitting in Excel spreadsheets. Nature Protocols. 5 (2), 267-281 (2010).

Play Video

Cite This Article
Wu, D., Piszczek, G. Rapid Determination of Antibody-Antigen Affinity by Mass Photometry. J. Vis. Exp. (168), e61784, doi:10.3791/61784 (2021).

View Video