Summary

Fraccionamiento flujo de campo de flujo asimétrico para dimensionamiento de nanopartículas de oro en suspensión

Published: September 11, 2020
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Summary

Este protocolo describe el uso del Fraccionamiento flujo de campo de flujo asimétrico junto con la detección uv-vis para la determinación del tamaño de una muestra de nanopartícula de oro desconocida.

Abstract

El tamaño de las partículas es sin duda el parámetro físico-químico más importante asociado con la noción de una nanopartícula. El conocimiento preciso del tamaño y la distribución del tamaño de las nanopartículas es de suma importancia para diversas aplicaciones. El rango de tamaño también es importante, ya que define el componente más “activo” de una dosis de nanopartícula.

El Fraccionamiento flujo de campo de flujo asimétrico (AF4) es una técnica poderosa para dimensionar partículas en suspensión en un rango de tamaño de aproximadamente 1-1000 nm. Hay varias maneras de obtener información de tamaño de un experimento AF4. Además de acoplar AF4 en línea con detectores sensibles al tamaño basados en los principios de dispersión de luz multi-ángulo o dispersión dinámica de luz, también existe la posibilidad de correlacionar el tamaño de una muestra con su tiempo de retención utilizando un enfoque teórico bien establecido (teoría FFF) o comparándolo con los tiempos de retención de los estándares de tamaño de partículas bien definidos (calibración de tamaño externo).

Aquí describimos el desarrollo y la validación interna de un procedimiento operativo estándar (SOP) para el tamaño de una muestra de nanopartícula de oro desconocida por AF4 junto con la detección uv-vis utilizando la calibración de tamaño externo con estándares de nanopartícula de oro en el rango de tamaño de 20-100 nm. Este procedimiento proporciona una descripción detallada del flujo de trabajo desarrollado, incluida la preparación de muestras, la configuración y calificación del instrumento AF4, el desarrollo del método AF4 y el fraccionamiento de la muestra de nanopartículas de oro desconocida, así como la correlación de los resultados obtenidos con la calibración de tamaño externo establecida. El PSOE descrito aquí fue finalmente validado con éxito en el marco de un estudio de comparación interlaboratorio que destaca la excelente robustez y fiabilidad de AF4 para el dimensionamiento de muestras nanopartículas en suspensión.

Introduction

Las nanopartículas de oro (AuNP) en forma de oro coloidal habían sido parte de la cultura humana mucho antes de que hubiera una comprensión de lo que eran las nanopartículas y antes de que el término nanopartícula hubiera encontrado su camino en el vocabulario contemporáneo y científico. Sin un conocimiento distintivo de su aspecto a nanoescala, auNP suspendido ya había sido utilizado para fines médicos y otros propósitos en la antigua China, Arabia, e India en los siglos V-VI aC1,y también los antiguos romanos aprovecharon su color rojo rubí para manchar famosamente su cerámica en la exposición de la Copa Lycurgus en el Museo Británico2. En el mundo occidental, a lo largo de los siglos desde la Edad Media hasta la Era Moderna, aunp suspendido fueron utilizados predominantemente como agentes colorantes para vidrio y esmalte (Púrpura de Cassius)3, así como para tratar una variedad de enfermedades (Oro Potable), especialmente sífilis4.

Sin embargo, todos estos estudios se habían centrado principalmente en la aplicación de AuNP suspendido y le ocurrió a Michael Faraday en 1857 introducir el primer enfoque racional para investigar su formación, su naturaleza, así como sus propiedades5. Aunque Faraday ya era consciente de que estos AuNP deben tener dimensiones muy minuciosas, no fue hasta el desarrollo de microscopía electrónica cuando la información explícita sobre su distribución de tamaño era accesible6,7,permitiendo finalmente la correlación entre el tamaño y otras propiedades aunp.

Hoy en día, gracias a su síntesis bastante fácil y directa, notables propiedades ópticas (resonancia de plasmón superficial), buena estabilidad química y por lo tanto toxicidad menor, así como su alta versatilidad en términos de tamaños disponibles y modificaciones superficiales, AuNP han encontrado aplicaciones generalizadas en campos como la nanoelectrónica8,diagnóstico9,terapia contra el cáncer10,o la administración de fármacos11. Obviamente, para estas aplicaciones, el conocimiento preciso del tamaño y la distribución del tamaño del AuNP aplicado es un requisito previo fundamental para garantizar una eficacia óptima12 y hay una demanda sustancial de herramientas robustas y fiables para determinar este parámetro fisicoquí químico crucial. Hoy en día, hay una gran cantidad de técnicas analíticas capaces de dimensionar AuNP en suspensión, incluyendo, por ejemplo, Espectroscopia UV-vis (UV-vis)13, Dispersión dinámica de luz (DLS)14 o Espectrometría de masa plasmática acoplada inductivamente de partículas únicas (SPICP-MS)15 con fraccionamiento de flujo de campo (FFF) siendo un jugador clave en este campo16,17,18,19,20.

Conceptualizado por primera vez en 1966 por J. Calvin Giddings21, FFF comprende una familia de técnicas de fraccionamiento basadas en elution, donde la separación tiene lugar dentro de un canal delgado, similar a una cinta sin una fase estacionaria22,23. En FFF, la separación es inducida por la interacción de una muestra con un campo de fuerza externo que actúa perpendicular a la dirección de un flujo de canal laminar, en el que la muestra se transporta río abajo normalmente hacia los detectores en línea respectivos. Entre estas técnicas FFF relacionadas, el Fraccionamiento flujo asimétrico campo-flujo (AF4), donde un segundo flujo (flujo cruzado) actúa como campo de fuerza, se ha convertido en el subtipo24más utilizado. En AF4, el fondo del canal (pared de acumulación) está equipado con una membrana de ultrafiltración semipermeable que es capaz de retener la muestra mientras que al mismo tiempo permite que el flujo cruzado pase a través de la membrana y salga del canal a través de una salida adicional. Por este medio, el flujo cruzado puede empujar la muestra hacia la pared de acumulación contrarrestando así su flujo inducido por difusión (movimiento browniano). En un equilibrio resultante de los fundentes inducidos por el campo y la difusión; los componentes de muestra más pequeños que exhiben coeficientes de difusión más altos se alinean más cerca del centro del canal, mientras que los componentes de muestra más grandes que exhiben coeficientes de difusión más bajos se ubican más cerca de la pared de acumulación. Debido al perfil de flujo parabólico dentro del canal, por lo tanto, los componentes de muestra más pequeños se transportan en las láminas más rápidas del flujo de canal y elute antes de componentes de muestra más grandes. Utilizando el parámetro de retención FFF y las ecuaciones de coeficiente de difusión Stokes-Einstein, el tiempo de elución y, respectivamente, el volumen de elución, de una muestra en AF4 se pueden traducir directamente a su tamaño hidrodinámico22. Aquí el comportamiento de elución descrito se refiere al modo de elución normal y suele ser válido para AF4 dentro de un rango de tamaño de partícula entre aproximadamente 1-500 nm (a veces hasta 2000 nm dependiendo de las propiedades de las partículas y los parámetros de fraccionamiento), mientras que la elución estetérica-hipercapa generalmente ocurre por encima de este umbral de tamaño25.

Hay tres maneras comunes de derivar información de tamaño después de la separación por FFF. Dado que FFF es un instrumento modular, se puede combinar aguas abajo con múltiples detectores tales como detectores de dispersión de luz sensibles al tamaño basados en el principio de dispersión de luz multi-ángulo (MALS)26,27, dispersión de luz dinámica (DLS)28,29, o incluso una combinación de ambos para obtener información de forma adicional30,31. Sin embargo, dado que el comportamiento de retención de una muestra en un canal FFF generalmente se rige por fuerzas físicas bien definidas, el tamaño también se puede calcular utilizando un enfoque matemático (teoría FFF), donde un detector de concentración simple (por ejemplo, un detector UV-vis) es suficiente para indicar la presencia de una muestra de elucio32,33.

Como tercera opción, aquí informamos de la aplicación de una calibración de tamaño externo34,35 utilizando estándares AuNP bien definidos en el rango de tamaño de 20-100 nm para dimensionar una muestra de nanopartícula de oro desconocida en suspensión utilizando AF4 junto con detección de vis UV. Esta sencilla configuración experimental fue elegida a propósito para permitir que tantos laboratorios como fuera posible se unieran a una comparación interlaboratoria internacional (ILC), que más tarde se realizó en el marco del proyecto de la Unión Europea Horizonte 2020 ACEnano basado en el protocolo presentado aquí.

Protocol

1. Configuración del sistema AF4 Monte el cartucho AF4 y conecte todos los componentes de hardware del sistema AF4 y el detector UV-vis(Tabla de materiales)siguiendo las instrucciones dadas en el manual del fabricante. Instale todos los paquetes de software necesarios para el control, adquisición de datos, procesamiento y evaluación siguiendo las instrucciones dadas en el manual del fabricante. Asegúrese de que se han establecido todas las conexiones de señal necesarias entre el sistema AF4 y el detector UV-vis. Asegúrese de que las conexiones AF4-UV-vis establecidas sean estrechas y sin fugas tirando la configuración con agua ultrapura (UPW) durante 15 min (caudal de punta 1 mL∙min-1,caudal de enfoque 1 mL∙min-1y caudal cruzado 1,5 ml∙min-1). Para ello, abra el software de control AF4 e introduzca los caudales en los paneles respectivos en el lado superior derecho de la página de destino. Apriete los conectores respectivos (empalmes), si es necesario, y repita el procedimiento hasta que no se respeten las fugas.NOTA: La presión interna del sistema durante todas las mediciones debe ser monitoreada y debe estar dentro de 4 a 12 bar. En caso de que la presión sea mayor o menor, es necesario ajustar el tubo de contrapresión. Además, la tendencia de presión del canal debe ser constante durante todo el tiempo de medición.NOTA: Si hay un horno de canal disponible, ajuste su temperatura a 25 °C para garantizar condiciones de medición comparables a lo largo de todos los experimentos af4. 2. Preparación de soluciones y suspensiones para la calificación del sistema AF4-UV-vis y análisis de muestras Solución de limpieza Añadir 8 g de hidróxido de sodio sólido (NaOH) y 2 g de sulfato de dodecilo sódico (SDS) a 1 L de UPW y agitar la solución hasta la disolución total. Eluyente Añadir 500 μL de mezcla de tensioactivo filtrado a 2 L de UPW filtrado y desgasificación para obtener el eluent (0,025% (v/v), pH alrededor de 9,4).NOTA: En el Cuadro 1 (también Tabla de Materiales) se indica una descripción detallada de los compuestos de la mezcla de tensioactivos . Norma arbitraria de tamaño AuNP para la determinación de recuperación masiva Vórtice un estándar de tamaño AuNP arbitrario (50 mg∙L-1)durante 2 min y diluirlo 1:4 con UPW para obtener una concentración de masa final de 12,5 mg∙L-1. Vórtice durante 2 minutos adicionales después de la dilución para homogeneizar la suspensión obtenida.PRECAUCIÓN: Se requieren medidas de precaución necesarias y equipos de protección adecuados cuando se trabaja con productos químicos, especialmente pellets NaOH.NOTA: Generalmente se recomienda desgastear y filtrar todas las soluciones necesarias (excepto la solución de limpieza) utilizando un filtro de membrana de 0,1 μm (PVDF hidrófilo o similar) para garantizar fondos de partículas bajos durante los experimentos af4-UV-vis. Esto puede ser establecido por una unidad de filtración de vacío dedicada o mediante el uso de filtros de jeringa. 3. Calificación del sistema AF4-UV-vis Utilice los ajustes de software descritos en el paso 1.4 para vaciar el sistema con la solución de limpieza durante 30 min (caudal de punta 1 mL∙min-1,caudal de enfoque 1 mL∙min-1y caudal cruzado 1,5 mL∙min-1). Cambie el frasco eluent respectivo y enjuague el sistema con UPW durante 20 min (caudal de punta 1 mL∙min-1,caudal de enfoque 1 mL∙min-1y caudal cruzado 1,5 mL∙min-1). Reemplace los filtros de bomba en línea respectivos. Abra el cartucho AF4 y reemplace la membrana AF4. Vuelva a montar el cartucho AF4 y vuelva a conectarlo con el sistema AF4-UV-vis. Enjuague el sistema AF4-UV-vis limpiado con el eluent durante al menos 30 minutos con el fin de equilibrar la membrana y estabilizar el sistema (caudal de punta 1 mL∙min-1,caudal de enfoque 1 mL∙min-1,y caudal cruzado 1,5 mL∙min-1). Compruebe si hay posibles fugas de nuevo (consulte el paso 1.4). Califique el sistema AF4-UV-vis determinando la recuperación masiva y la variación del tiempo de retención utilizando un estándar arbitrario de tamaño AuNP. Realice una ejecución de inyección directa sin la aplicación de una fuerza de separación. Cree un nuevo archivo de medición abriendo file | Nueva | Ejecutar en el software de control AF4. Defina la descripción de la muestra y la medición, así como el volumen de inyección y el nombre de la muestra dentro de la pestaña Ejecutar. Las condiciones de medición se muestran en la Tabla 2. Establezca los parámetros de medición en la segunda ficha método FFF según la Tabla 2. Haga clic en el botón Ejecutar para iniciar la medición. Realice una ejecución de fraccionamiento con la aplicación de una fuerza de separación (Flujo cruzado). Defina el método de fraccionamiento como se describe en la sección anterior utilizando las condiciones de fraccionamiento especificadas en la Tabla 3. Haga clic en el botón Ejecutar para iniciar la medición. Realice la medición en cuadrúplicado.NOTA: La primera ejecución tiene como objetivo acondicionar el sistema (es decir, la membrana AF4) y se excluirá de la evaluación final de los resultados de calificación del sistema.NOTA: Se recomienda guardar todos los archivos de ejecución generados abriendo file | Ahorre en el software de control AF4. Considere el af4-UV-vis-system calificado si se obtiene una recuperación masiva de >80% y una variación del tiempo de retención <2% para el estándar de tamaño AuNP arbitrario. Cuando utilice un autoamplificador como sistema de inyección, llene la botella del depósito de lavado de agujas del autoamplificador con la misma solución que se bombea a través del sistema AF4-UV-vis (por ejemplo, solución de limpieza, UPW o eluent respectivo) para garantizar condiciones óptimas de funcionamiento. Al cambiar el eluent, generalmente se recomienda seguir el reequilibrado del sistema AF4 mediante la supervisión de la señal UV-vis-detector hasta que su línea base permanezca estable en un nivel constante. 4. Análisis de muestras AF4-UV-vis Prepare todos los estándares de tamaño AuNP para la calibración de tamaño externo mediante el vórtice de la suspensión AuNP respectiva (20 nm, 40 nm, 80 nm, 100 nm, cada 50 mg. L-1) durante 2 min y diluirlo 1:4 con UPW para obtener una concentración de masa final de 12,5 mg∙L-1. Vórtice durante 2 minutos adicionales después de la dilución para homogeneizar las suspensiones obtenidas. Prepare la muestra AuNP desconocida para el análisis aplicando el mismo procedimiento que para los estándares de calibración descritos en el paso 4.1. Realice una medición directa de la inyección de todos los estándares de tamaño AuNP utilizando el método AF4 que se muestra en la Tabla 2. Para ello, introduzca los valores respectivos resumidos en la Tabla 2 en el software del fabricante en las posiciones adecuadas para definir los parámetros de separación y muestra y pulse el botón Ejecutar para iniciar el experimento. Fraccionar cada estándar de tamaño AuNP individualmente utilizando el método AF4 que se muestra en la Tabla 3 para establecer la función de calibración de tamaño externo. Introduzca los valores respectivos resumidos en la Tabla 3 en el software del fabricante en las posiciones adecuadas. El método de fraccionamiento se define mediante un paso de enfoque, varios pasos de elución y un paso de enjuague. Después de configurar el método, pulse el botón Ejecutar para iniciar el experimento. Realice una medición directa de inyección de la muestra AuNP desconocida utilizando el método AF4 que se muestra en la Tabla 2. Realice el fraccionamiento de la muestra AuNP desconocida realizando el método AF4 enumerado en la Tabla 3. Llevar a cabo todas las mediciones mencionadas en las Secciones 3 y 4 en triplicado a menos que se indique lo contrario para asegurar resultados significativos y estadísticamente relevantes. Almacene 50 mg∙L-1 Suspensiones de stock AuNP a 4-8 °C antes de su uso. Las suspensiones AuNP diluidas se preparan idealmente dentro de los 30 minutos anteriores a la aplicación.NOTA: El vórticeing suele ser suficiente y no es necesaria la ultrasonidos de las suspensiones. Para habilitar una correlación del tiempo de retención de la muestra AuNP desconocida con los tiempos de retención obtenidos para los estándares de tamaño AuNP, mida todas las muestras utilizando el mismo método AF4.NOTA: Para asegurar condiciones de separación constantes y válidas, incluya/repita el paso de fraccionamiento descrito en la sección de calificación del sistema (véase el paso 3.6.2) después de un número definido de mediciones de muestra (por ejemplo, 10 mediciones). Además, registre la presión del sistema y la estabilidad basal del detector UV-vis. Deben permanecer estables y constantes a lo largo de una carrera af4-UV-vis completa.NOTA: Por lo general, reemplazar la membrana de ultrafiltración cuando se pierda el detector uv-vis (o detector de dispersión de luz multi ángulo (MALS), si está disponible) muestra un mayor nivel de ruido o los criterios definidos de calificación del sistema, como la recuperación, la forma del pico de la muestra o la repetibilidad (o el sistema AF4-UV-vis fue sometido a un procedimiento de limpieza exhaustivo). En las condiciones descritas aquí, el sistema AF4-UV-vis calificado suele ser estable para al menos 50 mediciones utilizando la misma membrana; sin embargo, el número de posibles mediciones consecutivas que cumplen los criterios de calidad definidos puede variar significativamente dependiendo de la muestra, la matriz de muestras y la composición eluente. 5. Evaluación de datos Realice el cálculo de recuperación masiva utilizando el software de evaluación de datos proporcionado por el fabricante del sistema AF4-UV-vis o el análisis de hojas de cálculo después de la exportación de todos los datos sin procesar necesarios (es decir, zona de pico UV-vis) desde el software de adquisición de datos respectivo siguiendo las instrucciones dadas en el manual del fabricante. Calcule la recuperación de masa AuNP comparando las áreas bajo los respectivos picos UV-vis de la medición del fraccionamiento(fraccionamientoA) y la medición directa de inyección (unainyección directa)utilizando la siguiente ecuación:NOTA: Durante una medición directa de la inyección, no se aplica ninguna fuerza de separación, y por lo tanto se pueden descuidar las interacciones potenciales de una especie de analito con la pared de acumulación. El área bajo un pico UV-vis respectivo puede estar directamente correlacionada con la masa AuNP usando la ley Beer-Lambert suponiendo que ninguna otra especie dentro de la muestra absorbe en los respectivos elutes de longitud de onda y/o i) en otro momento de retención bajo condiciones de fraccionamiento ii) se elimina a través de la membrana AF4. Importe los archivos dat. obtenidos tanto de la inyección directa como de la ejecución de fraccionamiento. Seleccione la traza del detector UV-vis en la pestaña Visión general. Defina una región de interés (ROI) y una línea base en la vista de señal y línea base para todas las mediciones. Inserte una calibración de inyección directa mediante insertar. Seleccione todas las ejecuciones de inyección directa en la vista Configuración de calibración de inyección directa e introduzca un coeficiente de extinción UV.NOTA: Es importante utilizar el mismo coeficiente de extinción UV-vis tanto para la calibración como para la medición del fraccionamiento. Establezca la línea de calibración utilizando el área bajo la traza de señal UV-vis dentro del ROI y la cantidad inyectada calculada a partir de la concentración introducida y el volumen de inyección. La calibración obtenida se mostrará en la ventana independiente función de calibración directa de inyección. Asigne la función de calibración a las respectivas mediciones de fraccionamiento.NOTA: Para cada estándar de tamaño de calibración y la muestra AuNP desconocida, es necesario establecer una función de calibración independiente debido a la absorbancia uv-vis dependiente del tamaño de AuNP. Este inconveniente del detector UV-vis se puede eludir utilizando un detector sensible a la masa, como un ICP-MS. Realice los análisis insertando un cálculo de resultados cuantitativos y los resultados se mostrarán dentro de una tabla a la derecha como valores de concentración y cantidad inyectada. Calcule la variación del tiempo de retención utilizando el software de evaluación de datos proporcionado por el fabricante del sistema AF4 o el análisis de hojas de cálculo después de la exportación de todos los datos sin procesar necesarios (es decir, los tiempos de retención de los estándares de calibración AuNP en los respectivos tiempos máximos de máximo de vis UV y los respectivos tiempos nulos) a partir del software de adquisición de datos respectivo siguiendo las instrucciones dadas en el manual del fabricante. Abra la ventana Visión general para mostrar las trazas UV respectivas para todas las mediciones importadas. La detección máxima se realizará automáticamente; ajustar los parámetros de detección de picos dentro de la caja de herramientas de procesamiento de señal para optimizar el rendimiento. Extraiga la máxima máxima de pico respectiva revisando todos los archivos de medición. Calcule la desviación estándar relativa para todas las mediciones utilizando la siguiente ecuación:El cálculo también se puede realizar utilizando un software de hoja de cálculo respectivo. Realizar la determinación de tamaño utilizando el software de evaluación de datos proporcionado por el fabricante o el análisis de hojas de cálculo después de la exportación de todos los datos sin procesar necesarios (tiempo de retención en uv-vis máximo máximo de analito y tiempo nulo respectivo) desde el software de adquisición de datos respectivo siguiendo las instrucciones dadas en el manual del fabricante. Se puede establecer una función de calibración de tamaño externo trazando los tiempos de retención corregidos por tiempo nulo (tiempos de retención netos, véase la Tabla 5)de los estándares de tamaño AuNP (20 nm, 40 nm, 80 nm, 100 nm) contra sus tamaños hidrodinámicos obtenidos de mediciones DLS realizadas previamente (véase la Tabla 4).NOTA: Las mediciones DLS deben realizarse idealmente el mismo día que las mediciones de fraccionamiento respectivas para garantizar propiedades de muestra comparables. Después de importar los archivos .dat, todas las mediciones se muestran en la pestaña Visión general. Seleccione la señal del detector UV-vis de la lista de detectores, que se muestra debajo de la ventana de superposición. Defina un ROI y una línea base para cada medición, que se pueden ajustar en la vista Señal y Línea base. Utilice la caja de herramientas procesamiento de señal a la derecha para suavizar las señales ruidosas. Utilice la función Asignar parámetros de procesamiento a otras ejecuciones para permitir que los parámetros se asignen a otras mediciones, respectivamente. Seleccione la Calibración de tamaño de partícula en la pestaña Insertar. Seleccione todas las ejecuciones de calibración haciendo clic en la medición respectiva en la tabla Seleccionar referencias para calibración en la parte superior derecha. Todas las mediciones seleccionadas se mostrarán en una tabla a continuación. Introduzca el radio hidrodinámico para todas las mediciones de calibración especificadas en la Tabla 4. La función se mostrará en la calibración tamaño de partícula – Ventana de función y la ecuación también se mostrará.NOTA: El coeficiente de correlación (R2)de la función de calibración de tamaño establecida debe ser ≥0.990. Asigne la función de calibración a las mediciones de la muestra AuNP desconocida seleccionando los fraccionamientos respectivos dentro de la lista Seleccionar ejecuciones para asignación. Muestre los resultados abriendo un cálculo de distribución de tamaño de partícula dentro de la pestaña insertar. La calibración de tamaño de partícula creada anteriormente se enumerará como calibración para las mediciones desconocidas de la muestra AuNP, que se muestra en la configuraciónde la ventana derecha. El tamaño calculado se mostrará en la ventana de distribución de tamaño etiquetada al máximo máximo. Seleccione la casilla Señales medias para muestra para promediar todas las mediciones de una muestra y enumere el resultado en la etiqueta máxima máxima. Además, trace la línea de calibración sobre el fractograma seleccionando la casilla Mostrar curva de calibración. Una distribución de tamaño acumulado está disponible seleccionando la casilla Mostrar distribución acumulativa.NOTA: Cuando se utiliza el software del fabricante para la evaluación de datos, se recomienda agregar todos los resultados a un informe, que se puede generar haciendo clic en Informe dentro de la pestaña Insertar. El botón Informe agrega todos los resultados, tablas y diagramas a un documento. En la pestaña Informe, la configuración del informe se puede cambiar abriendo Configuración de informe en la sección Documento.

Representative Results

En primer lugar, los estándares de tamaño AuNP fueron fraccionados por AF4 y detectados por UV-vis midiendo la absorbancia del AuNP a una longitud de onda de 532 nm (resonancia de plásmido superficial de AuNP). En la Figura 1se presenta una superposición de los fractogramas obtenidos. Los tiempos de retención de cada AuNP en su respectivo máximo uv-vis máximo obtenido de las mediciones triplicadas se enumeran en la Tabla 5. La desviación estándar relativa de todos los tiempos de retención fue inferior al 1,1% con una variación de medición decreciente con un tamaño creciente. En general, se logró una excelente repetibilidad. Se aplicó una fuerza de separación constante, lo que dio lugar a una relación lineal de tiempo de elución y tamaño hidrodinámico. La línea de calibración de tamaño externo se estableció trazando el radio hidrodinámico especificado contra el tiempo nulo corregido tiempo de elución (tiempo de retención neta). Un análisis de regresión lineal dio lugar a una función de calibración lineal con una intercepción a = -3.373 nm ± 1.716 nm y una pendiente b = 1.209 nm∙min-1 ± 0,055 nm∙min-1. El comportamiento lineal de la elución se confirmó con un coeficiente de correlación cuadrado R2 de 0,9958. La función de calibración respectiva se muestra visualmente en la Figura 2. La segunda parte se ocupó del análisis de la muestra desconocida de AuNP. Se prepararon tres coácuotas de la muestra de acuerdo con el procedimiento descrito en la sección del protocolo (sección 4.2). Cada una de las tres alícuotas fue investigada en triplicado utilizando el mismo método de fraccionamiento AF4 que también se aplicó para los estándares de tamaño AuNP. Los nueve fractogramas AF4-UV-vis obtenidos de la muestra aunp desconocida se presentan en la Figura 3 y sus respectivas evaluaciones se resumen en el Cuadro 6. La desviación estándar relativa de los respectivos tiempos de retención fue significativamente baja y osciló entre el 0,1% y el 0,5%. Utilizando la función de calibración del tamaño de partícula obtenida del fraccionamiento de los estándares de tamaño AuNP y correlacionándola con los tiempos de retención obtenidos de la muestra AuNP desconocida en el máximo máximo de uv-vis, se podría calcular un radio hidrodinámico promedio global de 29,4 nm ± 0,2 nm. Además, se obtuvo una recuperación razonable de masa del 83,1% ± 1,2% que indica que no se haya realizado ninguna aglomeración o disolución significativa de la muestra AuNP o una adsorción considerable de partículas en la superficie de la membrana. La Figura 4 muestra la distribución del tamaño de partícula obtenida con las nueve trazas de señal UV-vis promediadas destacando la excelente robustez del método AF4 aplicado. Figura 1: Fractogramas AF4-UV-vis obtenidos del análisis triplicado de los cuatro estándares individuales de calibración de tamaño AuNP con intensidades de señal normalizadas y caudal cruzado constante aplicado (línea negra). El pico vacío se resalta en gris alrededor de 5,9 minutos Por favor, haga clic aquí para ver una versión más grande de esta figura. Figura 2: Función de calibración de tamaño externo obtenida, incluidas las barras de error derivadas de las respectivas desviaciones estándar de las mediciones DLS(Tabla 4)y las desviaciones en los tiempos de retención AF4 obtenidos(Tabla 5),después de trazar el radio hidrodinámico especificado contra el tiempo de retención de cada estándar de calibración de tamaño AuNP individual en su máximo máximo de pico respectivo. Una función de calibración lineal con errores estándar en forma de y = a + bx con a = -3.373 nm ± 1.716 nm y b = 1.209 nm·min-1 ± 0.055 nm·min-1 se calculó a partir de un análisis de regresión lineal. Se determinó un coeficiente de correlación al cuadrado con R2 = 0,9958, lo que indica una relación lineal. Haga clic aquí para ver una versión más grande de esta figura. Figura 3: AF4-UV-vis fractogramas de mediciones triplicadas de tres alícuotas que muestran el AuNP desconocido. El caudal cruzado constante aplicado durante el tiempo de medición se ilustra como una línea negra. El pico vacío en torno a 5,9 min se resalta en gris. Haga clic aquí para ver una versión más grande de esta figura. Figura 4: Superposición de la distribución media de tamaño de partícula obtenida (rojo) de la muestra AuNP desconocida y la función de calibración lineal aplicada (línea punteada). Haga clic aquí para ver una versión más grande de esta figura. Componente CAS-No Peso (%) Agua 7732-18-5 88.8 9-Ácido octadecenoico (Z)-, compuesto con 2,2′,2′-nitrilotris[etanol](1:1) 2717-15-9 3.8 Carbonato de sodio 497-19-8 2.7 Alcoholes, C12-14-secundario, etoxilados 84133-50-6 1.8 Tetrasodium EDTA 64-02-8 1.4 Polietilenglicol 25322-68-3 0.9 Oleato de sodio 143-19-1 0.5 Bicarbonato de sodio 144-55-8 0.1 Tabla 1: Lista de los componentes de la mezcla de tensioactivos utilizados para preparar el eluent (véase también Tabla de materiales). Parámetros AF4-UV-vis Unidad Valor Espesor del espaciador Μm 350 Caudal del detector mL min-1 0.5 Caudal cruzado mL min-1 0 (constante durante 8 min) Caudal de enfoque mL min-1 0 Tiempo de retardo / tiempo de estabilización Min 0 Caudal de inyección mL min-1 0.5 Tiempo de transición Min 0 Tiempo de inyección Min 0.1 Paso de elución Min 8 Enjuagar el tiempo del paso Min 0.1 Tasa de flujo de pasos de enjuague mL min-1 0.1 Volumen de inyección Μl 10 Concentración de muestras mg L-1 12.5 Tipo de membrana Celulosa regenerada Corte de peso molecular de membrana Kda 10 Eluyente 0.025% (v/v) mezcla de tensioactivo Longitud de onda UV-vis Nm 532 Sensibilidad UV-vis – 0.001 Tabla 2: Resumen de los parámetros del método de fraccionamiento AF4-UV-vis para realizar la ejecución de inyección directa sin la aplicación de una fuerza de separación. Parámetros AF4-UV-vis Unidad Valor Espesor del espaciador Μm 350 Caudal del detector mL min-1 0.5 Caudal cruzado mL min-1 1 (constante de 60 min, 10 min lineal) Caudal de enfoque mL min-1 1.3 Tiempo de retardo / tiempo de estabilización Min 2 Caudal de inyección mL min-1 0.2 Tiempo de transición Min 0.2 Tiempo de inyección Min 5 Paso de elución Min 70 (constante de 60 min, lineal de 10 min) Paso de enjuague Min 9 Tasa de flujo de pasos de enjuague mL min-1 0.5 Volumen de inyección Μl 50 Concentración de muestras mg L-1 12.5 Tipo de membrana Celulosa regenerada Corte de peso molecular de membrana Kda 10 Eluyente 0.025% (v/v) mezcla de tensioactivo Longitud de onda UV-vis Nm 532 Sensibilidad UV-vis – 0.001 Tabla 3: Resumen de los parámetros del método de fraccionamiento AF4-UV-vis para realizar la ejecución de fraccionamiento con la aplicación de un flujo cruzado como fuerza de separación. Estándar de calibración Agente de taponamiento Tamaño medio (TEM) (nm) CV (tamaño medio TEM) (%) Potencial Zeta (mV) SD (potencial zeta) (mV) Radio hidrodinámico (DLS) (nm) SD (radio hidrodinámico) (nm) Pdi SD (PDI) AuNP 20 nm Citrato 20.1 ≤ 8 -48.9 1.5 10.95 0.12 0.082 0.009 AuNP 40 nm Citrato 40.8 ≤ 8 -30.4 1.0 20.30 0.13 0.127 0.006 AuNP 80 nm Citrato 79.2 ≤ 8 -51.5 1.3 38.85 0.23 0.138 0.013 AuNP 100 nm Citrato 102.2 ≤ 8 -50.9 0.9 52.30 0.37 0.078 0.009 Tabla 4: Resumen de los parámetros fisicoquímicos de los estándares de calibración AuNP aplicados, incluyendo agente de tapado, tamaño medio TEM, potencial Zeta determinado en la suspensión nativa, radio hidrodinámico DLS e índice de polidispersidad (PDI) determinado en el eluent. Estándar de calibración Ejecutar Tiempo de retención al máximo (min) Tiempo de retención neto al máximo (min) Tiempo medio de retención neta (min) SD (%) (tiempo de retención neta) SD (min) (tiempo de retención neta) AuNP 20 nm 1 17.368 11.468 11.56 1.02 0.12 2 17.409 11.509 3 17.589 11.689 AuNP 40 nm 1 25.316 19.416 19.49 0.68 0.13 2 25.32 19.42 3 25.548 19.648 AuNP 80 nm 1 42.095 36.195 36.29 0.23 0.08 2 42.219 36.319 3 42.257 36.357 AuNP 100 nm 1 50.975 45.075 45.06 0.07 0.03 2 50.924 45.024 3 50.986 45.086 Tabla 5: Tiempos de retención de los estándares de calibración AuNP en el máximo máximo uv-vis respectivo derivado de los fractogramas AF4-UV-vis respectivos utilizando el método descrito en la Tabla 3. Aliquote Ejecutar Máximo de tiempo de retención (min) Tiempo medio de retención al máximo (min) Tiempo de retención neto al máximo (min) SD (%) tiempo de retención Radio hidrodinámico (nm) Recuperación (%) 1 1 32.689 32.70 26.789 0.07 29.03 85.34 2 32.687 26.787 3 32.719 26.819 2 1 32.989 33.08 27.089 0.37 29.49 81.73 2 33.073 27.173 3 33.187 27.287 3 1 33.053 33.14 27.153 0.49 29.56 82.14 2 33.071 27.171 3 33.291 27.391 Tabla 6: Resumen de los tiempos de retención en el máximo máximo de pico UV-Vis respectivo, el radio hidrodinámico calculado a partir de la calibración de tamaño externo(Figura 2)y la tasa de recuperación de la muestra AuNP desconocida obtenida del análisis AF4-UV-vis.

Discussion

El tamaño hidrodinámico de un AuNP desconocido fue evaluado con precisión por AF4 junto con un detector UV-vis utilizando estándares de tamaño AuNP bien definidos que van desde 20 nm a 100 nm. El método AF4 desarrollado fue optimizado utilizando un perfil de flujo cruzado constante con el fin de establecer una relación lineal entre el tiempo de retención medido y el tamaño auNP, permitiendo así una determinación de tamaño directa a partir del análisis de regresión lineal. También se centró especialmente en lograr tasas de recuperación suficientemente altas que indicaran que no había pérdida significativa de muestras durante el fraccionamiento, y que el método AF4 desarrollado, incluido el eluent aplicado y la membrana, coincidía bien con todas las muestras de AuNP fraccionadas.

El desarrollo del método es sin duda el paso más crítico en AF4 y varios parámetros, incluyendo dimensiones de canal, parámetros de flujo, así como eluent, membrana, altura del espaciador, e incluso propiedades de muestra tienen que ser tomados en cuenta con el fin de mejorar el fraccionamiento dentro de una ventana de tiempo de elución dada. El propósito de este párrafo es guiar al lector a través de los pasos críticos que fueron optimizados para determinar con éxito el tamaño de la muestra aunp desconocida discutida aquí. Para una descripción más detallada de cómo desarrollar generalmente un método AF4, el lector se hace referencia a la sección AF4 de ‘ISO/TS21362:2018 – Nanotecnologías – Análisis de nano-objetos utilizando flujo asimétrico y fraccionamiento centrífugo de flujo decampo» 25. Teniendo un vistazo más de cerca a las condiciones de fraccionamiento aplicadas dadas en la Tabla 3,el primer paso crítico es la introducción y relajación de la muestra AuNP en el canal AF4. Este paso se rige por el flujo de inyección, el flujo de enfoque y el flujo cruzado, cuya interacción obliga a la muestra a localizar cerca de la superficie de la membrana y concentrarla en una banda estrecha cerca del puerto de inyección del canal AF4 básicamente definiendo el punto de partida del fraccionamiento. Una relajación suficiente de la muestra es obligatoria ya que durante este paso, los componentes de muestra de diferentes tamaños se localizan en diferentes alturas del canal AF4 proporcionando así la base para un fraccionamiento de tamaño exitoso. La relajación incompleta de la muestra suele ser visible por un aumento del área pico del vacío resultante de componentes de muestra no retenciones (es decir, no relajados). Este efecto se puede mitigar aumentando el tiempo de inyección y/o el caudal cruzado aplicado. Sin embargo, ambos parámetros necesitan una optimización cuidadosa, especialmente para muestras que son propensas a la aglomeración y adsorción en la membrana AF4, y pueden ser monitoreadas por las respectivas tasas de recuperación obtenidas para diferentes ajustes de parámetros36,37. El tiempo de inyección aplicado de 5 minutos junto con un caudal cruzado de 1,0 ml∙min-1 reveló tasas de recuperación >80% para todas las muestras auNP y una zona pico nula insignificante que indica condiciones de relajación casi óptimas. Después de una relajación suficiente de la muestra AuNP, el flujo de enfoque se detuvo y se inició el transporte de muestras a lo largo de la longitud del canal AF4 al detector uv-vis respectivo que representa el segundo paso crítico. Con el fin de garantizar una potencia de fraccionamiento suficientemente alta en tiempos de análisis razonables, se aplicó un caudal cruzado constante de 1,0 ml∙min-1 para 30-50 min (dependiendo del estándar de tamaño AuNP fraccionado respectivo) seguido de una decaimiento de flujo cruzado lineal de 10 minutos a un caudal de detector de 0,5 ml.min-1. El uso de un perfil de flujo cruzado constante a través de la separación de todos los estándares de tamaño AuNP reveló una relación lineal entre el tiempo de retención y el tamaño auNP después de la teoría FFF22,lo que permite la determinación de tamaño de la muestra AuNP desconocida mediante un simple análisis de regresión lineal. Sin embargo, perfiles distintos de un flujo cruzado constante también han sido explotados para dimensionar nanopartículas, lo que en última instancia conduce a una relación no lineal entre el tiempo de retención y el tamaño de las partículas38,39. Además, la determinación de tamaño en AF4 utilizando estándares de tamaño bien definidos no se limita a AuNP, sino que también se puede aplicar a nanopartículas con otros tamaños y composición elemental (por ejemplo, plata38,40 o nanopartículas de sílice41,42). Además, al trabajar con muestras diluidas, ICP-MS es un detector elemental altamente sensible, que se puede combinar con AF4, lo que se suma a la versatilidad de este enfoque analítico para dimensionar una gran variedad de nanopartículas en suspensión.

A pesar de su aplicación generalizada, la calibración de tamaño externo utilizando estándares de tamaño bien definidos en AF4 tiene algunas peculiaridades que deben tenerse en cuenta al usarlo para un dimensionamiento preciso de muestras desconocidas. En primer lugar, se basa en gran medida en la aplicación de condiciones comparables durante el fraccionamiento de las normas de tamaño respectivos y la muestra real. Por lo tanto, en el caso que se presenta aquí, es obligatorio que tanto las normas de tamaño AuNP como la muestra AuNP desconocida se fraccionen utilizando el mismo método AF4, así como el mismo eluent y la misma membrana que hace que este enfoque sea bastante inflexible. Además, al no tener detectores sensibles al tamaño, por ejemplo, dispersión de luz (MALS y DLS) a mano, es difícil determinar si un método AF4 respectivo que utiliza estándares de tamaño funciona lo suficientemente bien o no. Esto es especialmente cierto para muestras desconocidas que exhiben distribuciones de tamaño muy amplio, donde no está claro si todos los componentes de la muestra siguen el patrón de elución normal: fraccionamiento de partículas más pequeñas a más grandes, o si los componentes de muestra más grandes ya se provocan en modo de hipercapa esterica potencialmente co-eluting con componentes de muestra más pequeños43,44. Además, a pesar de que la teoría de FFF enfatiza que AF4 se separa únicamente en función de las diferencias en el tamaño hidrodinámico con partículas consideradas masas puntuales sin ninguna interacción con su entorno22,la realidad cuenta una historia diferente con interacciones partícula-partículas y partículas-membrana (como atracción electrostática/repulsión o atracción van-der-Waals) puede desempeñar un papel considerable y potencialmente puede introducir un sesgo medible en determinaciones de tamaño a través de la calibración de tamaño externo45,46. Por lo tanto, se recomienda utilizar estándares de tamaño que coincidan idealmente con la composición y las propiedades superficiales (potencial Zeta) de la partícula de interés40,42 o, si no están disponibles, al menos utilizar estándares de tamaño de partículas bien caracterizados (por ejemplo, partículas de látex de poliestireno) y evaluar cuidadosamente su comparabilidad con la partícula de interés especialmente en términos de su potencial zeta superficial en el entorno respectivo, en el que el análisis se llevará a cabo41,47.

La versatilidad de AF4 se considera a menudo su mayor fortaleza, ya que ofrece un rango de aplicaciones que va más allá de la mayoría de las otras técnicas de dimensionamiento comunes en este campo22,48,49. Al mismo tiempo, debido a su complejidad presumible asociada, también puede considerarse como su inconveniente más significativo, especialmente contra técnicas de dimensionamiento rápidas y aparentemente fáciles de usar, como DLS, análisis de seguimiento de nanopartículas o ICP-MS de partículas individuales. No obstante, al poner af4 en perspectiva con estas técnicas de dimensionamiento populares, queda claro que todas las técnicas tienen sus pros y sus contras, pero todas ellas contribuyen a una comprensión más completa de la naturaleza fisicoquímica de las nanopartículas y, por lo tanto, deben considerarse complementarias en lugar de competitivas.

El procedimiento operativo estándar (SOP) presentado aquí, destaca la excelente aplicabilidad de AF4-UV-vis con calibración de tamaño externo para dimensionamiento de una muestra aunp desconocida en suspensión y finalmente se aplicó como una directriz recomendada para el análisis AF4 de una muestra aunp desconocida dentro de una comparación interlaboratoria internacional (ILC) que se llevó a cabo en la trama del proyecto Horizonte 2020, ACEnano (el resultado de este ILC será objeto de una futura publicación). Este protocolo, por lo tanto, se suma a los esfuerzos internacionales alentadores y en curso para validar y estandarizar las metodologías AF425,50,51,52 subrayando el potencial prometedor de AF4 en el campo de la caracterización de nanopartículas.

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Los autores quieren agradecer a todo el consorcio ACEnano por sus fructíferas discusiones a lo largo de todas las etapas de la preparación del protocolo presentado aquí. Los autores también aprecian la financiación del Programa Horizonte 2020 de la Unión Europea (H2020) en virtud del acuerdo de subvención nº 720952 en el marco del proyecto ACEnano.

Materials

0.1 µm Membrane Filters (hydrophilic PVDF) Postnova Analytics GmbH Z-FIL-TEF-002 Used for filtration of aqueous solutions
0.22 µm PVDF Syringe Filter (d = 33 mm) Merck Millipore Durapore Millex Used for filtration of NovaChem100
Adjustable Volume Pipettes (1000 µL) Eppendorf AG Research Plus Used to prepare diluted AuNP suspensions
AF4 cartridge Postnova Analytics GmbH AF2000 MF – AF4 Analytical Channel Component of the AF2000 MF – MultiFlow FFF setup, which is described as AF4-system in the manuscript
AF4 Membrane – Regenerated Cellulose (10 kDa MWCO) Postnova Analytics GmbH Z-AF4-MEM-612-10KD Component of the AF2000 MF – MultiFlow FFF setup, which is described as AF4-system in the manuscript
Analytical Balance (0.1 mg precision) Sartorius ENTRIS124I-1S Used to weigh SDS and NaOH pellets for preparation of cleaning solution
Autosampler Postnova Analytics GmbH PN5300 Component of the AF2000 MF – MultiFlow FFF setup, which is described as AF4-system in the manuscript
Channel Oven Postnova Analytics GmbH PN4020 Component of the AF2000 MF – MultiFlow FFF setup, which is described as AF4-system in the manuscript
Crossflow Module Postnova Analytics GmbH AF2000 MF Control Module Component of the AF2000 MF – MultiFlow FFF setup, which is described as AF4-system in the manuscript
Disposable Pipette Tips (1000 µL) Eppendorf AG ep T.I.P.S Used to prepare diluted AuNP suspensions
Flasks (e.g. 2 liter volume) neoLab 1-0199 Used for eluent storage
Focus Pump Postnova Analytics GmbH PN1131 Component of the AF2000 MF – MultiFlow FFF setup, which is described as AF4-system in the manuscript
Glass Vials (e.g. 1.5 mL volume) Postnova Analytics GmbH VIA-002 Used for sample storage
Gold Nanoparticle Size Standards (20 nm, 40 nm, 80 nm, 100 nm) Postnova Analytics GmbH NovaCal Gold 50 mg L-1 each, used to establish the size calibration function
Magnetic Stirrer IKA VIBRAX-VXR Used to accelerate dissolution of SDS and NaOH pellets in UPW
Personal Computer (PC) Dell Technologies / Unit to control AF4 runs, record and evaluate collected data, for necessary hardware and software requirements the reader is referred to the Postnova AF2000 manual
Personal protection gear (gloves, lab coat, glasses etc.) / / In accordance with respective laboratory’s safety rules for working with chemicals including engineered nanomaterials
Screw Top for Glass Vials (e.g. 1.5 mL volume) Postnova Analytics GmbH Z-VIA-09150868 Used for sample storage
Sodium Dodecyl Sulfate (SDS), ≥99 %, Blotting Grade Carl Roth GmbH & Co KG 2326.1 Used for the preparation of the cleaning solution
Sodium Hydroxide (NaOH) Pellets, ≥98 %, p.a Carl Roth GmbH & Co KG 6771.1 Used for the preparation of the cleaning solution
Software Package for Control and Data Acquisition Postnova Analytics GmbH NovaFFF AF2000 Software Software for performing Af4 runs and data aquisition, for necessary hardware and software requirements the reader is referred to the Postnova AF2000 manual
Software Package for Data Evaluation Postnova Analytics GmbH NovaAnalysis Software Software for AF4 data evaluation, for necessary hardware and software requirements the reader is referred to the Postnova NovaAnalysis manual
Software Package for final Data Processing OriginLab Corporation Origin 2019 Used for final data processing
Solvent Degasser Postnova Analytics GmbH PN7520 Component of the AF2000 MF – MultiFlow FFF setup, which is described as AF4-system in the manuscript
Solvent Selector Postnova Analytics GmbH PN7310 Component of the AF2000 MF – MultiFlow FFF setup, which is described as AF4-system in the manuscript
Solvent Organizer Postnova Analytics GmbH PN7140 Component of the AF2000 MF – MultiFlow FFF setup, which is described as AF4-system in the manuscript
Surfactant Mixture Postnova Analytics GmbH NovaChem100 Mixture of different surfactants and salts used for eluent preparation
Tip Pump Postnova Analytics GmbH PN1130 Component of the AF2000 MF – MultiFlow FFF setup, which is described as AF4-system in the manuscript
Unknown AuNP sample BBI Solutions EM.GC60 60 nm AuNP sample used for size determination via size calibration function
UV-vis Detector Postnova Analytics GmbH PN3211 UV-vis detector For downstream coupling with the AF4 system
Vacuum Filtration Unit Postnova Analytics GmbH Eluent Filtration System Used to ensure low particle backgrounds and removal of dissolved air in the used eluents to ensure optimum AF4 fractionation conditions
Vortex IKA Vortex Genie 2 Used for homogenization of diluted AuNP suspensions
Water Purification System Merck Millipore Milli-Q Integral 5 Used to generate ultrapure water (UPW, 18.2 MΩcm resistivity) for preparation of cleaning solution, eluents and dilution of AuNP suspensions

References

  1. Dykman, L. A., Khlebtsov, N. G. Gold nanoparticles in biology and medicine: recent advances and prospects. Acta Naturae. 3 (2), 34-55 (2011).
  2. Wagner, F. E., et al. Before striking gold in gold-ruby glass. Nature. 407 (6805), 691-692 (2000).
  3. Hunt, L. B. The true story of Purple of Cassius. Gold Bulletin. 9 (4), 134-139 (1976).
  4. Higby, G. J. Gold in medicine. Gold Bulletin. 15 (4), 130-140 (1982).
  5. Faraday, M. X. The Bakerian Lecture. -Experimental relations of gold (and other metals) to light. Philosophical Transactions of the Royal Society of London. 147, 145-181 (1857).
  6. Borries, B. v., Kausche, G. A. Übermikroskopische Bestimmung der Form und Größenverteilung von Goldkolloiden. Kolloid-Zeitschrift. 90 (2), 132-141 (1940).
  7. Turkevich, J., Hillier, J. Electron Microscopy of Colloidal Systems. Analytical Chemistry. 21 (4), 475-485 (1949).
  8. Homberger, M., Simon, U. On the application potential of gold nanoparticles in nanoelectronics and biomedicine. Philosophical Transactions of the Royal Society A: Mathematical, Physical, and Engineering Sciences. 368 (1915), 1405-1453 (2010).
  9. Cordeiro, M., Ferreira Carlos, F., Pedrosa, P., Lopez, A., Baptista, P. V. Gold Nanoparticles for Diagnostics: Advances towards Points of Care. Diagnostics. 6 (4), 43 (2016).
  10. Vines, J. B., Yoon, J. H., Ryu, N. E., Lim, D. J., Park, H. Gold Nanoparticles for Photothermal Cancer Therapy. Frontiers in Chemistry. 7, 167 (2019).
  11. Dreaden, E. C., Austin, L. A., Mackey, M. A., El-Sayed, M. A. Size matters: gold nanoparticles in targeted cancer drug delivery. Therapeutic Delivery. 3 (4), 457-478 (2012).
  12. Safh, B. P., Antosh, M. Effect of size on gold nanoparticles in radiation therapy: Uptake and survival effects. Journal of Nanomedicine. 2 (1), 1013-1020 (2019).
  13. Haiss, W., Thanh, N. T. K., Aveyard, J., Fernig, D. G. Determination of size and concentration of gold nanoparticles from UV-Vis spectra. Analytical Chemistry. 79 (11), 4215-4221 (2007).
  14. Zheng, T., Bott, S., Huo, Q. Techniques for accurate sizing of gold nanoparticles using dynamic light scattering with particular application to chemical and biological sensing based on aggregate formation. ACS Applied Materials & Interfaces. 8 (33), 21585-21594 (2016).
  15. Liu, J., Murphy, K. E., MacCuspie, R. I., Winchester, M. R. Capabilities of single particle inductively coupled plasma mass spectrometry for the size measurement of nanoparticles: a case study on gold nanoparticles. Analytical Chemistry. 86 (7), 3405-3414 (2014).
  16. Contado, C., Argazzi, R. Size sorting of citrate reduced gold nanoparticles by sedimentation field-flow fractionation. Journal of Chromatography. A. 1216 (52), 9088-9098 (2009).
  17. Calzolai, L., Gilliland, D., Garcìa, C. P., Rossi, F. Separation and characterization of gold nanoparticle mixtures by flow-field-flow fractionation. Journal of Chromatography. A. 1218 (27), 4234-4239 (2011).
  18. Schmidt, B., et al. Quantitative characterization of gold nanoparticles by field-flow fractionation coupled online with light scattering detection and inductively coupled plasma mass spectrometry. Analytical Chemistry. 83 (7), 2461-2468 (2011).
  19. Mekprayoon, S., Siripinyanond, A. Performance evaluation of flow field-flow fractionation and electrothermal atomic absorption spectrometry for size characterization of gold nanoparticles. Journal of Chromatography. A. , (2019).
  20. López-Sanz, S., Rodríguez Fariñas, N., Zougagh, M., Rios, A., Rodriguez Martín-Doimeadios, R. C. C. AF4-ICP-MS as a powerful tool for the separation of gold nanorods and nanospheres. Journal of Analytical Atomic Spectrometry. , (2020).
  21. Giddings, C. J. A new separation concept based on a coupling of concentration and flow nonuniformities. Separation Science. 1 (1), 123-125 (1966).
  22. Schimpf, M. E., Caldwell, K., Giddings, J. C. . Field-flow fractionation handbook. , (2000).
  23. Contado, C. Field flow fractionation techniques to explore the “nano-world”. Analytical and Bioanalytical Chemistry. 409 (10), 2501-2518 (2017).
  24. Wahlund, K. G., Giddings, J. C. Properties of an asymmetrical flow field-flow fractionation channel having one permeable wall. Analytical Chemistry. 59 (9), 1332-1339 (1987).
  25. ISO. ISO /TS 21362:2018 Nanotechnologies – of nano-objects using asymmetrical-flow and centrifugal field-flow fractionation. ISO. , (2018).
  26. Gogos, A., Kaegi, R., Zenobi, R., Bucheli, T. D. Capabilities of asymmetric flow field-flow fractionation coupled to multi-angle light scattering to detect carbon nanotubes in soot and soil. Environmental Science: Nano. 6 (1), 584-594 (2014).
  27. Müller, D., et al. Integration of inverse supercritical fluid extraction and miniaturized asymmetrical flow field-flow fractionation for the rapid analysis of nanoparticles in sunscreens. Analytical Chemistry. 90 (5), 3189-3195 (2018).
  28. Capomaccio, R., et al. Gold nanoparticles increases UV and thermal stability of human serum albumin. Biointerphases. 11 (4), (2016).
  29. Levak, M., et al. Effect of protein corona on silver nanoparticle stabilization and ion release kinetics in artificial seawater. Environmental Science & Technology. 51 (3), 1259-1266 (2017).
  30. Mehn, D., et al. Larger or more? Nanoparticle characterisation methods for recognition of dimers. RSC Advances. 7 (44), 27747-27754 (2017).
  31. Sogne, V., Meier, F., Klein, T., Contado, C. Investigation of zinc oxide particles in cosmetic products by means of centrifugal and asymmetrical flow field-flow fractionation. Journal of Chromatography. A. 1515, 196-208 (2017).
  32. Cumberland, S. A., Lead, J. R. Particle size distributions of silver nanoparticles at environmentally relevant conditions. Journal of Chromatography. A. 1216 (52), 9099-9105 (2009).
  33. de Carsalade du pont, V., et al. Asymmetric field flow fractionation applied to the nanoparticles characterization: Study of the parameters governing the retention in the channel. International Congress of Metrology. , (2019).
  34. Loeschner, K., et al. Optimization and evaluation of asymmetric flow field-flow fractionation of silver nanoparticles. Journal of Chromatography. A. 1272, 116-125 (2013).
  35. Mudalige, T. K., Qu, H., Linder, S. W. An improved methodology of asymmetric flow field flow fractionation hyphenated with inductively coupled mass spectrometry for the determination of size distribution of gold nanoparticles in dietary supplements. Journal of Chromatography. A. 1420, 92-97 (2015).
  36. Dubascoux, S., Von Der Kammer, F., Le Hécho, I., Gautier, M. P., Lespes, G. Optimisation of asymmetrical flow field flow fractionation for environmental nanoparticles separation. Journal of Chromatography. A. 1206 (2), 160-165 (2008).
  37. Hagendorfer, H., et al. Application of an asymmetric flow field flow fractionation multi-detector approach for metallic engineered nanoparticle characterization – and limitations demonstrated on Au nanoparticles. Analytica Chimica Acta. 706 (2), 367-378 (2011).
  38. Geiss, O., Cascio, C., Gilliland, D., Franchini, F., Barrero-Moreno, J. Size and mass determination of silver nanoparticles in an aqueous matrix using asymmetric flow field flow fractionation coupled to inductively coupled plasma mass spectrometer and ultraviolet-visible detectors. Journal of Chromatography. A. 1321, 100-108 (2013).
  39. Makselon, J., Siebers, N., Meier, F., Vereecken, H., Klumpp, E. Role of rain intensity and soil colloids in the retention of surfactant-stabilized silver nanoparticles in soil. Environmental Pollution. 238, 1027-1034 (2018).
  40. Bolea, E., Jiménez-Lamana, J., Laborda, F., Castillo, J. R. Size characterization and quantification of silver nanoparticles by asymmetric flow field-flow fractionation coupled with inductively coupled plasma mass spectrometry. Analytical and Bioanalytical Chemistry. 401 (9), 2723-2732 (2011).
  41. Barahona, F., et al. Simultaneous determination of size and quantification of silica nanoparticles by asymmetric flow field-flow fractionation coupled to ICPMS using silica nanoparticles standards. Analytical Chemistry. 87 (5), 3039-3047 (2015).
  42. Aureli, F., D’Amato, M., Raggi, A., Cubadda, F. Quantitative characterization of silica nanoparticles by asymmetric flow field flow fractionation coupled with online multiangle light scattering and ICP-MS/MS detection. Journal of Analytical Atomic Spectrometry. 30, 1266-1273 (2015).
  43. Myers, M. N., Giddings, J. C. Properties of the transition from normal to steric field-flow fractionation. Analytical Chemistry. 54 (13), 2284-2289 (1982).
  44. Giddings, J. C. Retention (steric) inversion in field-flow fractionation: practical implications in particle size, density and shape analysis. Analyst. 118 (12), 1487-1494 (1993).
  45. Wahlund, K. G. Flow field-flow fractionation: Critical overview. Journal of Chromatography. A. 1287, 97-112 (2013).
  46. Bendixen, N. L., Adlhart, S., Lattuada, C., Ulrich, A. Membrane-particle interactions in an asymmetric flow field flow fractionation channel studied with titanium dioxide nanoparticles. Journal of Chromatography A. 1334, 92-100 (2014).
  47. Qu, H., Quevedo, I. R., Linder, S. W., Fong, A., Mudalige, T. K. Importance of material matching in the calibration of asymmetric flow field-flow fractionation: material specificity and nanoparticle surface coating effects on retention time. Journal of Nanoparticle Research. 18 (10), 292 (2016).
  48. Giddings, J. C. Field-flow fractionation: analysis of macromolecular, colloidal, and particulate materials. Science. 260 (5113), 1456-1465 (1993).
  49. Cascio, C., Gilliland, D., Rossi, F., Calzolai, L., Contado, C. Critical experimental evaluation of key methods to detect, size and quantify nanoparticulate silver. Analytical Chemistry. 86 (24), 12143-12151 (2014).
  50. Caputo, F., et al. Measuring particle size distribution by asymmetric flow field flow fractionation: a powerful method for the pre-clinical characterisation of lipid-based nanoparticles. Molecular Pharmaceutics. 16 (2), 756-767 (2019).
  51. Parot, J., Caputo, F., Mehn, D., Hackley, V. A., Calzolai, L. Physical characterization of liposomal drug formulations using multi-detector asymmetrical-flow field flow fractionation. Journal of Controlled Release: Official Journal of the Controlled Release Society. 320, 495-510 (2020).
  52. ASTM. ASTM WK68060 – New Test Method for Analysis of Liposomal Drug Formulations using Multidetector Asymmetrical-Flow Field-Flow Fractionation (AF4). ASTM. , (2019).

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Cite This Article
Drexel, R., Sogne, V., Dinkel, M., Meier, F., Klein, T. Asymmetrical Flow Field-Flow Fractionation for Sizing of Gold Nanoparticles in Suspension. J. Vis. Exp. (163), e61757, doi:10.3791/61757 (2020).

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