Il chiarimento della modalità d’azione di un nuovo antibiotico è un compito impegnativo nel processo di scoperta dei farmaci. L’obiettivo del metodo qui descritto è l’applicazione di microcalorimetria isotermica utilizzando calScreener nella profilazione antibatterica per fornire ulteriori informazioni sulle interazioni farmaco-microbo.
A causa della minaccia globale di una crescente resistenza agli antimicrobici, sono urgentemente necessari nuovi antibiotici. Indaghiamo sui prodotti naturali di Myxobacteria come fonte innovativa di tali nuovi composti. Un collo di bottiglia nel processo è in genere il chiarimento della loro modalità di azione. Recentemente abbiamo stabilito la microcalorimetria isotermica come parte di una pipeline di profilazione di routine. Questa tecnologia consente di studiare l’effetto dell’esposizione agli antibiotici sulla risposta metabolica batterica totale, compresi i processi che sono disaccoppiati dalla formazione di biomassa. È importante sottolineare che gli effetti batteriostatici e battericidicidi sono facilmente distinguibili senza alcun intervento da parte dell’utente durante le misurazioni. Tuttavia, la microcalorimetria isotermica è un approccio piuttosto nuovo e l’applicazione di questo metodo a diverse specie batteriche richiede di solito una pre-valutazione delle condizioni di misura idonee. Ci sono alcuni termogrammi di riferimento disponibili di alcuni batteri, facilitando notevolmente l’interpretazione dei risultati. Poiché il pool di dati di riferimento è in costante crescita, ci aspettiamo che la metodologia abbia un impatto crescente in futuro e ci aspettiamo che consenta analisi approfondite delle impronte digitali che consentano la differenziazione delle classi antibiotiche.
Lo scopo di questo metodo è quello di applicare la microcalorimetria isotermica (IMC) come analisi della produttività media nella profilazione mode-of-action (MoA) di nuovi composti antibatterici. Questo metodo rivela dati riguardanti l’attività dei composti sulle specie batteriche e fornisce informazioni sulla natura batterica o batteriostatica del composto stesso.
L’aumento della resistenza antimicrobica emergente (AMR) è un problema globale e porta a trattamenti meno efficaci di infezioni comuni con antibiotici noti1. Tuttavia, la ricerca di nuovi composti e farmaci che possono sostituire o lavorare in combinazione con antibiotici noti sono in corso e questo è costruito su diversi approcci. I prodotti naturali sono un attore chiave nelle attuali campagne di scoperta di farmaci e in particolare nella scoperta di farmaci anti-infettivi2. Tuttavia, l’identificazione di nuove strutture di piombo per lo sviluppo di antibiotici è un processo lungo e finanziariamente impegnativo3. Pertanto, le prime fasi della scoperta sono estremamente importanti per filtrare sulla maggior parte degli scaffold più promettenti già in una fase iniziale. I primi passi nella scoperta di farmaci naturali includono l’ottenimento della struttura di un composto, la determinazione dell’attività in vitro insieme al MoA e all’identificazione del bersaglio. La maggior parte dei composti di successo ammissibili per un ulteriore sviluppo dovrebbe mostrare uno spettro favorevole di attività (cioè, attività ad ampio spettro nel caso di antibatterici) e un nuovo MoA con cui la resistenza anti-esistente può essere superata. Le impalcature promettenti vengono quindi in genere vagliate in saggi secondari, che includono la biodisponibilità in vivo, la tossicità e il metabolismo4. Oltre alle preoccupazioni finanziarie, la scoperta di farmaci per prodotti naturali deve affrontare ulteriori sfide riguardanti i costi e le difficoltà tecniche legate all’isolamento e alla purificazione dei composti, che, a loro volta, possono rendere difficile ottenere quantità multi-milligrammo o addirittura grammo nelle prime fasi del processo discoperta 5,6. Pertanto, è della massima importanza nella ricerca sui prodotti naturali essere in grado di eseguire screening primari all’avanguardia con quantità composte minime al fine di prendere una decisione ben informata su ulteriori investimenti per rendere un nuovo prodotto naturale accessibile per lo sviluppo pre-clinico. Con l’uso di IMC per la profilazione antibatterica, la quantità di composto necessario è significativamente ridotta rispetto ai metodi standard. La tecnica fornisce anche informazioni più approfondite riguardanti l’interazione di nuovi farmaci con la comunità microbica7.
IMC è un metodo consolidato per misurare l’energia totale come risultato di tutti i processi biologici, fisici e biochimici e le reazioni in un sistema biologico. Il rilascio di energia batterica è proporzionale alle reazioni metaboliche totali8. All’interno di un sistema chiuso, come il microcalorimetro usato, i livelli di calore possono essere misurati nella gamma di microwatt per studiare la cinetica metabolica dei batteri9,10,11,12. Il calore (energia) che viene rilasciato dai batteri è legato alle funzioni cellulari che sono alla base del loro metabolismo e che non sono necessariamente proporzionali alla biomassa cellulare.
Inizialmente, l’applicabilità della calorimetria isotermica per i test microbiologici è stata limitata a causa della sua bassa produttività e degli elevati volumi di test. Tuttavia, il microcalorimetro usato è unico in quanto combina i vantaggi della calorimetria isotermica con una maggiore produttività e minori requisiti composti, il che lo rende uno strumento prezioso per le applicazioni di scoperta difarmaci 10. Inoltre, lo strumento offre ulteriori vantaggi rispetto ai metodi alternativi per misurare la cinetica della crescita batterica, come il metodo di torbidità standard, che si basa sulla misurazione della densità ottica a 600 nm (OD<600). La misurazione di OD600 si basa sul presupposto che una maggiore densità ottica sia uguale alla crescita microbica, trascurando così la presenza di cellule non vitali. Questo metodo è stato anche criticato in quanto esclude piccole varianti di colonia e le cellule persistenti11. Al contrario, IMC consente l’osservazione in tempo reale di qualsiasi tipo di cellule vitali. Se le cellule sono dormienti, presentano ancora attività metaboliche e possono quindi essere rilevate da IMC, mentre tali fenomeni non sono rilevabili dal metodo di torbidità standard11. Altri vantaggi di IMC includono un tempo di test di suscettibilità antimicrobico più breve, misurare le interazioni farmacologiche in una comunità complessa e metodi di analisi standard senza distruggere il campione7.
La tecnologia IMC è stata implementata in una vasta gamma di studi, che vanno dalla microbiologia alla termogenesi e alla biologia del cancro13,14,15,16,17. Le applicazioni microbiche includono la determinazione delle concentrazioni minime inibitorie (MIC) dei composti contro vari ceppi batterici. Diversi studi sono stati fatti ed è stato concluso che i dati MIC provenienti dalla calorimetria isotermica per la maggior parte delle specie batteriche possono essere ottenuti più velocemente e i risultati sono simili rispetto ad altri metodi (standard) per la determinazione MIC12,18,19. Ulteriori applicazioni di IMC includono l’osservazione dell’interazione di farmaci e la combinazione di trattamenti farmacologici con comunità batteriche complesse come i biofilm11. Uno studio incentrato sulla profilazione moA ha mostrato che il microcalorimetro è in grado di rilevare una differenza nelle cefalosporine di prima e seconda generazione, mentre diversi antibiotici con lo stesso MoA presentano una curva di flusso di calore simile rispettoall’altro 18.
Qui, descriviamo l’uso di IMC per la profilazione MoA di nuovi prodotti naturali utilizzando il nuovo strumento di microcalorimetria isotermica. Il metodo viene utilizzato per determinare concentrazioni antibiotiche efficaci e per descrivere le caratteristiche degli antibiotici in termini di meccanismi batterici o batteriostatici. Il metodo può essere ampiamente implementato nella profilazione MoA dei composti e potrebbe sostituire o almeno integrare i metodi microbiologici standard. Studi futuri includeranno analisi approfondite delle impronte digitali che consentiranno la differenziazione delle classi di antibiotici basate su meccanismi target.
La microcalometria isotermica misura l’energia emessa da un campione nel tempo e questo rilascio di energia è il risultato di tutti i processi biologici, fisici e (bio-)chimici. Il flusso di calore misurato può essere sfruttato per valutare o determinare gli effetti antibatterici delle sostanze in quanto consente un monitoraggio continuo in tempo reale dell’attività metabolica.
Per ottenere dati affidabili per l’analisi, è necessario determinare singolarmente le unità di formazione delle colonie di partenza corrette (CFU) per ogni specie o ceppo utilizzato. Nel caso in cui il numero di CFU sia troppo basso, questo porta a una fase di ritardo prolungata in quanto ci vuole più tempo perché il sistema raggiunga una quantità critica di biomassa che produce abbastanza calore da essere rilevato. Nel caso in cui il numero di CFU sia troppo alto, la fase di ritardo sarà molto breve e la quantità di calore prodotta può causare il trasferimento di calore alle celle vicine del sensore (pozzi di riferimento e sperimentali) e causare distorsioni dei termogrammi. Un numero elevato di CFU porterà anche ad un più veloce esaurimento di ossigeno e passare a condizioni anaerobiche. Va inoltre preso in considerazione che durante i primi 30 minuti dell’esperimento, quando il sistema è in equilibrio, la raccolta dei dati non è possibile e la registrazione effettiva degli effetti è ritardata. Inoltre, la determinazione errata della CFU porta alla falsa determinazione del MIC, che in ultima analisi influisce sull’esperimento e sui cambiamentiosservati 25. Un altro punto critico è la corretta determinazione della linea di base. Di solito, il segnale di base viene selezionato durante la fase di ritardo quando il segnale di flusso di calore è zero e idealmente, l’intervallo di tempo per la definizione della linea di base è >30 min. Tuttavia, questo non è sempre possibile in quanto il tempo che i batteri richiedono per raggiungere il limite di rilevamento del segnale di calore differisce tra ceppi e specie. Alcune specie o ceppi richiedono più di 30 minuti per raggiungere il limite di rilevamento del segnale di calore, mentre altri ceppi o specie lo raggiungono entro i primi 30 minuti. In tal caso, è possibile selezionare il segnale di base alla fine dell’esperimento quando tutti i segnali di calore sono scesi a zero e rimangono stabili. In alternativa, possono essere utilizzate linee di base da altri esperimenti con lo stesso ceppo batterico, il che non è tuttavia raccomandato.
Il sistema consente una certa flessibilità in termini di progettazione e ottimizzazione degli esperimenti e risoluzione dei problemi. I volumi utilizzati sono nell’intervallo di 100-300 L quando si utilizzano inserti in plastica e 100-600 L quando si utilizzano tazze in titanio senza gli inserti in plastica. Il volume di lavoro consigliato dal produttore è di 120 L. L’uso di diversi volumi nella creazione di una nuova serie sperimentale, e pur trovando condizioni ottimali per le misurazioni, ha un impatto principalmente su due parametri. Utilizzando volumi più bassi, la quantità di composto di prova richiesto può essere diminuita, che è particolarmente importante per i composti, che sono disponibili solo in piccole quantità. Inoltre, il volume utilizzato influisce direttamente sulla disponibilità di ossigeno durante la misurazione con volumi inferiori che aumentano la quantità di ossigeno disponibile necessaria per la crescita batterica. L’esaurimento dell’ossigeno è uno dei principali fattori che contribuiscono alla durata massima possibile dell’esperimento. È importante sottolineare che è possibile utilizzare supporti solidi, non solo supporti liquidi. Ciò è particolarmente importante per i microrganismi a crescita lenta, in quanto la crescita dell’interfaccia tra fase solida e gassogena consente un migliore accessoall’ossigeno 9.
IMC è un utile strumento analitico per scoprire processi sconosciuti con applicazioni in fisica, chimica e biologia. Il metodo misura lo scambio di calore all’interno di un sistema chiuso e l’analisi dello scambio di calore registrato fornisce informazioni aggiuntive che non possono sempre essere ottenute con metodi standard. Nella ricerca di microbiologia e antibiotici, uno dei maggiori vantaggi di IMC è la sua capacità di distinguere tra cellule vive, morte e persistenti o dormienti, che non è possibile utilizzando i metodi di torbidità standard11. Inoltre, IMC è altamente sensibile e può rilevare l’emissione di calore da appena 104-105 celle9. Un altro vantaggio è che la configurazione sperimentale è semplice e veloce e consente un monitoraggio continuo e in tempo reale con un’interferenza minima o nessuna da parte dell’utente. Inoltre, IMC non è distruttivo, il che consente un’ulteriore analisi dei campioni. L’analisi dei dati consente il disaccoppiamento della formazione della biomassa fino alla fase esponenziale tardiva o precoce e all’attività metabolica in fase stazionaria.
Oltre alle nuove ed entusiasmanti funzionalità dell’applicazione di cui sopra, ci sono anche svantaggi di questo metodo. La limitazione principale è che gli strumenti IMC misurano il calore totale prodotto e rilasciato all’interno di un sistema specifico, che includono anche segnali non specifici. Ciò evidenzia l’importanza della pianificazione sperimentale con controlli appropriati per poter valutare i cambiamenti del segnale di calore misurati registrando il flusso dicalore 9,20.
Nelle nostre mani, IMC è uno strumento importante per studiare gli effetti antibatterici di nuovi prodotti naturali e per determinare le gamme di concentrazione efficaci. Oltre a differenziare gli effetti batteriostatici e batteriricidi, potrebbe essere utilizzato in futuro come parte degli studi di identificazione del bersaglio e della determinazione del MoA. Questo può essere fatto confrontando termogrammi di diverse classi di antibiotici a termogrammi di nuovi composti attivi come mostrato qui. Tuttavia, è ancora necessario verificare se alcuni parametri quantificabili che possono essere estratti dai dati misurati siano sufficienti per tali confronti o se sarà necessario lavorare su algoritmi che dia impronte digitali basate su termogrammi completi. Un’altra possibile applicazione nel campo della ricerca antibiotica è il confronto tra wildtype e cloni resistenti, insieme al sequenziamento dell’intero genoma, che può aiutare a chiarire la modalità di resistenza (MoR) dei nuovi antibatterici. A causa della natura statica del metodo, lo studio dell’efficacia di nuovi agenti sulla formazione di biofilm o su biofilm già stabiliti potrebbe portare a una migliore comprensione del processo biologico e dell’effetto di agenti selezionati sui microbi in diverse fasi di dormienza. IMC registra l’energia totale rilasciata sotto forma di calore rendendolo un metodo adatto per studiare anche gli effetti sub-inibitori di sostanze attive che potrebbero essere accoppiate alla trascridamica. Questo metodo può essere utilizzato anche in ambienti clinici per rilevare la contaminazione dei campioni o per la determinazione di antibiogrammi contribuendo a decidere rapidamente il trattamento definito dei pazienti11.
The authors have nothing to disclose.
Gli autori ringraziano il team di Symcel per le fruttune discussioni e vorremmo riconoscere il grande sostegno di Ganna Oliynyk e Wilhelm Paulander. Ringraziamo anche Daniel Kohnh-user per aver fornito il prodotto naturale e Stefanie Schmidt per un abile supporto tecnico.
Acinetobacter baumannii | DSMZ | DSM-30008 | reference strain used in this study |
calPlate | Symcel | 1220093 | 48-well plate for titanium cups to be inserted |
calScreener | Symcel | 1200001 | isothermal microcalorimetry instrument |
calView software | Symcel | collection and analysis software | |
calWell | Symcel | 1901004 | micro-bio grade (non-active) 48-well plate with plastic inserts which are inserted into the titanium cups |
CASO agar | Carl Roth | X937.1 | isolation and cultivation of microorganisms |
Chloroamphenicol | Sigma-Aldrich | C0378 | antibiotic |
Ciprofloxacin | Sigma-Aldrich | 17850 | antibiotic |
Cuvettes | Brand | 759015 | 1.5 mL cuvettes |
Disposable inoculation loops | Sarsted | 86.1562.050 | 10 µL inoculation loops |
Dimethylsulfoxid (DMSO) | Thermo Fisher Scientific | 85190 | |
Eppendorf tubes | Eppendorf | 30120086 | 1.5 mL eppendorf safe-lock tubes |
Ethanol | Thermo Fisher Scientific | 10428671 | |
Falcon Tubes | Sarsted | 62.554.502 | 15 mL falcon tubes |
Hydrochloride (HCL) | Thermo Fisher Scientific | 10316380 | |
Methanol | Thermo Fisher Scientific | A412-500 | |
Mueller Hinton Broth | Sigma-Aldrich | 70192 | liquid medium for antibiotic susceptibility studies |
Mueller Hinton Broth II cation adjusted media | Sigma-Aldrich | 90922 | Mueller Hinton Broth cation-adjusted to 1.25 mM CaCl2, 0.8 mM MgCl2 |
Petri dishes | LABSOLUTE | 7696404 | |
Pipette 100 – 1000 µL | Brand | 705880 | |
Pipette 2 – 20 µL | Brand | 705872 | |
Pipette 20 – 200 µL | Brand | 705878 | |
Pipette tips 100 – 1000 L | Brand | 732032 | |
Pipette tips 2 – 200 µL | Brand | 732028 | |
Polymyxin B sulfate | Sigma-Aldrich | P0972 | antibiotic |
Rifampicin | Sigma-Aldrich | R3501 | antibiotic |
Serological pipette | Thermo Fisher Scientific | 170356N | 10 mL Nunc serological pipette |
Spectrophotometer | Eppendorf AG | 6135 000.017 | |
Sterile filters | Minisart | 16534———-K | 0.2 µm pore size sterile filters |
Syringe 50 mL | NORM-JECT | 22778 | |
Tetracycline | Sigma-Aldrich | 87128 | antibiotic |
Titanium cups | Symcel | 1220089 | inserted in 48-well titanium calPlate |
Titanium lids | Symcel | 1220091 | screwed and tightend to the titanium cups |
Trimethroprim | Sigma-Aldrich | T7883 | antibiotic |
Tweezers | Symcel | 1900602 |