Summary

Trasplante subretiniano de tejido retiniano derivado de células madre embrionarias humanas en un modelo felino de animales grandes

Published: August 05, 2021
doi:

Summary

Aquí se presenta una técnica quirúrgica para trasplantar tejido retiniano derivado de células madre pluripotentes humanas (hPSC) en el espacio subretiniano de un modelo animal grande.

Abstract

Las afecciones degenerativas de la retina (DR) asociadas con la pérdida de fotorreceptores, como la degeneración macular relacionada con la edad (DMAE), la retinitis pigmentosa (RP) y la amaurosis congénita de Leber (LCA) causan pérdida de visión progresiva y debilitante. Existe una necesidad insatisfecha de terapias que puedan restaurar la visión una vez que se han perdido los fotorreceptores. El trasplante de tejido retiniano derivado de células madre pluripotentes humanas (hPSC) (organoides) en el espacio subretiniano de un ojo con RD avanzada aporta láminas de tejido retiniano con miles de fotorreceptores sanos libres de mutaciones y tiene el potencial de tratar la mayoría / todas las enfermedades cegadoras asociadas con la degeneración de los fotorreceptores con un protocolo aprobado. El trasplante de tejido retiniano fetal en el espacio subretiniano de modelos animales y personas con DR avanzada se ha desarrollado con éxito, pero no se puede utilizar como tratamiento de rutina debido a preocupaciones éticas y suministro limitado de tejido. Los modelos animales de degeneración retiniana hereditaria (IRD) del ojo grande son valiosos para desarrollar terapias de restauración de la visión que utilizan enfoques quirúrgicos avanzados para trasplantar células / tejidos de la retina en el espacio subretiniano. Las similitudes en el tamaño del globo y la distribución de los fotorreceptores (por ejemplo, la presencia de área central de la región similar a la mácula) y la disponibilidad de modelos IRD que recapitulan estrechamente el IRD humano facilitarían la traducción rápida de una terapia prometedora a la clínica. Aquí se presenta una técnica quirúrgica de trasplante de tejido retiniano derivado de hPSC en el espacio subretiniano de un modelo animal grande que permite la evaluación de este enfoque prometedor en modelos animales.

Introduction

Millones de personas en todo el mundo se ven afectadas por la degeneración de la retina (DR) con la consiguiente discapacidad visual o ceguera asociada con la pérdida de los fotorreceptores sensibles a la luz (PR). La degeneración macular relacionada con la edad (DMAE) es una causa importante de ceguera como resultado de una combinación de factores de riesgo genéticos y factores ambientales / de estilo de vida. Además, se ha encontrado que más de 200 genes y loci causan DR hereditaria (IRD)1. La retinitis pigmentosa (RP), el IRD más común, es genéticamente heterogénea con más de 3.000 mutaciones genéticas en aproximadamente 70 genes que se han descrito 2,3,4. La amaurosis congénita de Leber (ACV), que causa ceguera en la infancia, también es genéticamente heterogénea 5,6. La terapia de aumento génico ha sido desarrollada y está en ensayos clínicos para el tratamiento de un pequeño número de IRD 3,7. Sin embargo, se debe desarrollar una terapia separada para el tratamiento de cada forma genética distinta de IRD y, por lo tanto, solo tratar a un pequeño subconjunto de pacientes. Además, el aumento de genes se basa en la presencia de una población de fotorreceptores rescatables y, por lo tanto, no es aplicable para la degeneración avanzada.

Por lo tanto, existe una necesidad clínica urgente y aún no satisfecha para el desarrollo de terapias que aborden y traten las DR avanzadas y la ceguera profunda a terminal. Durante las últimas 2 décadas, los implantes neuroprotésicos se han desarrollado y probado en modelos animales grandes, como el gato, antes del uso humano 8,9,10,11,12,13,14. Asimismo, en los últimos 20 años se han desarrollado terapias de reemplazo de retina utilizando láminas de retina embrionaria o incluso de mamíferos maduros injertadas subretinalmente 15,16,17,18,19,20,21,22 e incluso probadas con éxito en pacientes con DR 23,24,25. Ambos enfoques utilizan la idea de introducir nuevos sensores (fotodiodos de silicio fotovoltaico en el caso de dispositivos neuroprotésicos26,27, y fotorreceptores sanos libres de mutaciones organizados en láminas, en el caso de la implantación de láminas retinianas) en retina con PR degenerados. Estudios recientes han investigado el uso de enfoques basados en células madre, como el trasplante de progenitores retinianos derivados de células madre pluripotentes humanas (hPSC)28,29, fotorreceptores hPSC 30 y organoides retinianos hPSC31,32,33. Los organoides retinianos permiten la formación de tejido retiniano en una placa y la derivación de láminas fotorreceptoras con miles de PR libres de mutación, que se asemejan a la capa fotorreceptora en la retina fetal humana en desarrollo 34,35,36,37,38,39,40. El trasplante de tejido retiniano derivado de hPSC (organoides) en el espacio subretiniano de pacientes con enfermedades de DR es uno de los nuevos y prometedores enfoques de terapia celular en investigación, perseguido por varios equipos31,32,41,42. En comparación con el trasplante de la suspensión celular (de fotorreceptores jóvenes o progenitores retinianos), se demostró que las láminas trasplantadas de fotorreceptores fetales resultan en mejoras de la visión en ensayos clínicos23,24.

El protocolo presentado aquí describe, en detalle, un procedimiento de trasplante para la administración subretiniana de los organoides retinianos completos (en lugar de los bordes organoides33,41) como una forma potencialmente mejor de introducir láminas retinianas intactas con PR, para aumentar la supervivencia del injerto y mejorar la preservación de la hoja. Aunque se han desarrollado procedimientos para introducir una pieza plana de retina humana y también parches de EPR43,44,45, no se ha investigado el trasplante de injertos 3D más grandes. Los organoides retinianos derivados de células madre proporcionan una fuente inagotable de láminas fotorreceptoras para el desarrollo de tecnologías de restauración de la visión, están libres de restricciones éticas y se consideran una excelente fuente de tejido retiniano humano para terapias centradas en el tratamiento de la DR avanzada y la ceguera terminal46. El desarrollo de métodos quirúrgicos para la implantación subretiniana precisa de organoides retinianos con una lesión mínima en el nicho retiniano huésped (retina neural, epitelio pigmentario retiniano y vasculatura retiniana y coroides) es uno de los pasos críticos para avanzar en dicha terapia hacia aplicaciones clínicas31,32. Los modelos animales grandes como gatos, perros, cerdos y monos han demostrado ser buenos modelos para investigar métodos de administración quirúrgica, así como para demostrar la seguridad de las láminas de tejido implantadas (células del epitelio pigmentario de la retina (EPR)) e investigar el uso de organoides 41,44,45,47,48,49,50 . El ojo grande del animal tiene un tamaño de globo similar al humano, así como una anatomía similar, incluida la presencia de una región de alta densidad de fotorreceptores, incluidos los conos (el área central), que se asemeja a la mácula humana 6,51,52.

En este manuscrito, se describe una técnica para la implantación de tejido retiniano derivado de hPSC (organoides) en el espacio subretiniano de modelos animales felinos grandes (gatos de tipo salvaje y CrxRdy/+), que, junto con resultados prometedores de eficacia32,53 construye una base para un mayor desarrollo de dicha terapia de investigación hacia aplicaciones clínicas para tratar afecciones de DR.

Protocol

Los procedimientos se llevaron a cabo de conformidad con la declaración de la Asociación para la Investigación en Visión y Oftalmología (ARVO) para el uso de animales en la investigación oftálmica y de la visión. También fueron aprobados por el Comité Institucional de Cuidado y Uso de Animales de la Universidad Estatal de Michigan. En este estudio se utilizaron gatos de tipo salvaje y CrxRdy/+ de una colonia de gatos mantenida en la Universidad Estatal de Michigan. Los animales fuer…

Representative Results

Este procedimiento permite la implantación exitosa y reproducible de organoides retinianos derivados de hPSC en el espacio subretiniano de un modelo animal de ojo grande (demostrado aquí usando 2 ejemplos: gatos salvajes con fotorreceptores sanos (PR) y gatos CrxRdy/+ con PRs y retina degenerados). Siguiendo los pasos indicados en la Figura 1 , prepare y cargue los organoides retinianos derivados de hPSC en la cánula de vidrio de borosilicato del dispositivo d…

Discussion

La implantación de tejido retiniano derivado de hPSC (organoides retinianos) en el espacio subretiniano es un enfoque experimental prometedor para restaurar la visión de las enfermedades degenerativas de la retina en etapa tardía causadas por la muerte celular PR (ceguera profunda o terminal). El enfoque presentado se basa en una terapia experimental desarrollada y probada con éxito basada en el injerto subretiniano de un pedazo de tejido retiniano fetal humano23,24,25<sup class="xr…

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Este trabajo fue financiado por NEI Fast-track SBIR grant R44-EY027654-01A1 y SBIR grant 3 R44 EY 027654 – 02 S1 (I.O.N., Lineage Cell Therapeutics; Dr. Petersen-Jones es un co-PI). Janice Querubin (MSU RATTS) por su ayuda con la anestesia y el cuidado general de los animales incluidos en este estudio, así como la ayuda con el entorno quirúrgico y la preparación / esterilización de instrumentos. Paige Winkler por la ayuda en recibir los organoides y colocarlos en los medios el día anterior a la implantación y por la ayuda el día de la implantación. Los autores también agradecen al Sr. Randy (LCTX) por el envío diligente de los organoides retinianos, el montaje del remitente y la descarga de los registros de temperatura y estrés G después de cada envío. Este trabajo se realizó mientras el autor Igor Nasonkin era empleado por Biotime (ahora Lineage).

Materials

0.22 µm pore syringe filter with PES membrane Cameo NA can be found by various suppliers
23G subretinal injector with extendable 41 G cannula DORC 1270.EXT
250 µL hamilton gas tight luer lock syringe Hamilton NA can be found by various suppliers
6-0 Silk suture Ethicon 707G
6-0/7-0 polyglactin suture Ethicon J570G
Acepromazine maleate 500mg/5mL (Aceproject) Henry Schein Animal Health NA can be found by various suppliers
Buprenorphine 0.3 mg/mL Par Pharmaceutical NA can be found by various suppliers
cSLO + SD-OCT Heidelberg Engineering Spectralis HRA+ OCT
Cyclosporine Novartis NA can be found by various suppliers
Dexamethasone 2mg/mL (Azium) Vetone NA can be found by various suppliers
Doxycyline 25mg/5mL Cipla NA can be found by various suppliers
Fatal Plus solution (pentobarnital solution) Vortech NA can be found by various suppliers
Gentamicin 20mg/2mL Hospira NA can be found by various suppliers
Glass capillary (Thin-Wall Single-Barrel Standard Borosilicate (Schott Duran) Glass Tubing World Precision Instruments TW150-4
Methylprednisolone actetate 40 mg/mL Pfizer NA can be found by various suppliers
Microscope Zeiss NA
OCT medium (Tissue-Tek O.C.T. Compound) Sakura 4583
Olympic Vac-Pac Size 23 Natus NA can be found by various suppliers
Paraformaldehyde 16% solution EMS 15719
Phenylephrine Hydrochloride 10% Ophthalmic Solution Akorn NA can be found by various suppliers
Prednisolone 15mg/5mL Akorn NA can be found by various suppliers
Propofol 5000mg/50mL (10 mg/mL) (PropoFlo28) Zoetis NA can be found by various suppliers
RetCam II video fundus camera Clarity Medical Systems NA can be found by various suppliers
Triamcinolone 400mg/10 mL (Kenalog-40) Bristol -Myers Squibb Company NA can be found by various suppliers
Tropicamide 1% ophthalmic solution Akorn NA can be found by various suppliers
Vitrectomy 23G port Alcon Accurus systems
Vitrectomy machine Alcon Accurus systems
Vitreo-retinal vertical 80° scissors with squeeze handle Frimen FT170206T

References

  1. Veleri, S., et al. Biology and therapy of inherited retinal degenerative disease: insights from mouse models. Disease Models and Mechanisms. 8 (2), 109-129 (2015).
  2. Dias, M. F., et al. Molecular genetics and emerging therapies for retinitis pigmentosa: Basic research and clinical perspectives. Progress in Retinal and Eye Research. 63, 107-131 (2018).
  3. Petersen-Jones, S. M., et al. Patients and animal models of CNGbeta1-deficient retinitis pigmentosa support gene augmentation approach. The Journal of Clinical Investigation. 128 (1), 190-206 (2018).
  4. Winkler, P. A., et al. A large animal model for CNGB1 autosomal recessive retinitis pigmentosa. PLoS One. 8 (8), 72229 (2013).
  5. Occelli, L. M., Tran, N. M., Narfstrom, K., Chen, S., Petersen-Jones, S. M. CrxRdy Cat: A large animal model for CRX-associated leber congenital amaurosis. Investigative Ophthalmology and Visual Science. 57 (8), 3780-3792 (2016).
  6. Mowat, F. M., et al. Early-onset progressive degeneration of the area centralis in RPE65-deficient dogs. Investigative Ophthalmology and Visual Science. 58 (7), 3268-3277 (2017).
  7. Occelli, L. M., et al. Gene supplementation rescues rod function and preserves photoreceptor and retinal morphology in dogs, leading the way towards treating human PDE6A-retinitis pigmentosa. Human Gene Therapy. 28 (12), 1189-1201 (2017).
  8. Eckhorn, R., et al. Visual resolution with retinal implants estimated from recordings in cat visual cortex. Vision Research. 46 (17), 2675-2690 (2006).
  9. Pardue, M. T., et al. Status of the feline retina 5 years after subretinal implantation. Journal of Rehabilitation Research and Development. 43 (6), 723-732 (2006).
  10. Chow, A. Y., et al. Subretinal implantation of semiconductor-based photodiodes: durability of novel implant designs. Journal of Rehabilitation Research and Development. 39 (3), 313-321 (2002).
  11. Volker, M., et al. In vivo assessment of subretinally implanted microphotodiode arrays in cats by optical coherence tomography and fluorescein angiography. Graefes Archive for Clinical and Experimental Ophthalmology. 242 (9), 792-799 (2004).
  12. Chow, A. Y., et al. Implantation of silicon chip microphotodiode arrays into the cat subretinal space. Institute of Electrical and Electronics Engineering Transactions on Neural Systems and Rehabilitation Engineering. 9 (1), 86-95 (2001).
  13. Sachs, H. G., et al. Subretinal implantation and testing of polyimide film electrodes in cats. Graefe’s Archive for Clinical and Experimental Ophthalmology. 243 (5), 464-468 (2005).
  14. Villalobos, J., et al. A wide-field suprachoroidal retinal prosthesis is stable and well tolerated following chronic implantation. Investigative Ophthalmology and Visual Science. 54 (5), 3751-3762 (2013).
  15. Bragadottir, R., Narfstrom, K. Lens sparing pars plana vitrectomy and retinal transplantation in cats. Veterinary Ophthalmology. 6 (2), 135-139 (2003).
  16. Narfstrom, K., Holland Deckman, K., Menotti-Raymond, M. The domestic cat as a large animal model for characterization of disease and therapeutic intervention in hereditary retinal blindness. Journal of Ophthalmology. , 906943 (2011).
  17. Seiler, M. J., et al. Functional and structural assessment of retinal sheet allograft transplantation in feline hereditary retinal degeneration. Veterinary Ophthalmology. 12 (3), 158-169 (2009).
  18. Aramant, R. B., Seiler, M. J. Transplanted sheets of human retina and retinal pigment epithelium develop normally in nude rats. Experimental Eye Research. 75 (2), 115-125 (2002).
  19. Lin, B., McLelland, B. T., Mathur, A., Aramant, R. B., Seiler, M. J. Sheets of human retinal progenitor transplants improve vision in rats with severe retinal degeneration. Experimental Eye Research. 174, 13-28 (2018).
  20. Seiler, M. J., Aramant, R. B. Cell replacement and visual restoration by retinal sheet transplants. Progress in Retinal and Eye Research. 31 (6), 661-687 (2012).
  21. Seiler, M. J., et al. Vision recovery and connectivity by fetal retinal sheet transplantation in an immunodeficient retinal degenerate rat model. Investigative Ophthalmology and Visual Science. 58 (1), 614-630 (2017).
  22. Lorach, H., et al. Transplantation of mature photoreceptors in rodents with retinal degeneration. Translational Vision Science and Technology. 8 (3), 30 (2019).
  23. Radtke, N. D., et al. Vision improvement in retinal degeneration patients by implantation of retina together with retinal pigment epithelium. American Journal of Ophthalmology. 146 (2), 172-182 (2008).
  24. Radtke, N. D., Aramant, R. B., Seiler, M. J., Petry, H. M., Pidwell, D. Vision change after sheet transplant of fetal retina with retinal pigment epithelium to a patient with retinitis pigmentosa. Archives of Ophthalmology. 122 (8), 1159-1165 (2004).
  25. Radtke, N. D., Seiler, M. J., Aramant, R. B., Petry, H. M., Pidwell, D. J. Transplantation of intact sheets of fetal neural retina with its retinal pigment epithelium in retinitis pigmentosa patients. American Journal of Ophthalmology. 133 (4), 544-550 (2002).
  26. Lorach, H., Palanker, E. Retinal prostheses: High-resolution photovoltaic implants. Medical Science (Paris). 31 (10), 830-831 (2015).
  27. Mathieson, K., et al. Photovoltaic retinal prosthesis with high pixel density. Nature Photonics. 6 (6), 391-397 (2012).
  28. Banin, E., et al. Retinal incorporation and differentiation of neural precursors derived from human embryonic stem cells. Stem Cells. 24 (2), 246-257 (2006).
  29. Hambright, D., et al. Long-term survival and differentiation of retinal neurons derived from human embryonic stem cell lines in un-immunosuppressed mouse retina. Molecular Vision. 18, 920-936 (2012).
  30. Lamba, D. A., Gust, J., Reh, T. A. Transplantation of human embryonic stem cell-derived photoreceptors restores some visual function in Crx-deficient mice. Cell Stem Cell. 4 (1), 73-79 (2009).
  31. Singh, R. K., Occelli, L. M., Binette, F., Petersen-Jones, S. M., Nasonkin, I. O. Transplantation of human embryonic stem cell-derived retinal tissue in the subretinal space of the cat eye. Stem Cells and Development. 28 (17), 1151-1166 (2019).
  32. McLelland, B. T., et al. Transplanted hESC-derived retina organoid sheets differentiate, integrate, and improve visual function in retinal degenerate rats. Investigative Ophthalmology and Visual Science. 59 (6), 2586-2603 (2018).
  33. Assawachananont, J., et al. Transplantation of embryonic and induced pluripotent stem cell-derived 3D retinal sheets into retinal degenerative mice. Stem Cell Reports. 2 (5), 662-674 (2014).
  34. Eiraku, M., et al. Self-organizing optic-cup morphogenesis in three-dimensional culture. Nature. 472 (7341), 51-56 (2011).
  35. Nakano, T., et al. Self-formation of optic cups and storable stratified neural retina from human ESCs. Cell Stem Cell. 10 (6), 771-785 (2012).
  36. Singh, R. K., et al. Characterization of three-dimensional retinal tissue derived from human embryonic stem cells in adherent monolayer cultures. Stem Cells and Development. 24 (23), 2778-2795 (2015).
  37. Wahlin, K. J., et al. Photoreceptor outer segment-like structures in long-term 3D retinas from human pluripotent stem cells. Scientific Reports. 7 (1), 766 (2017).
  38. Zhong, X., et al. Generation of three-dimensional retinal tissue with functional photoreceptors from human iPSCs. Nature Communications. 5, 4047 (2014).
  39. Capowski, E. E., et al. Reproducibility and staging of 3D human retinal organoids across multiple pluripotent stem cell lines. Development. 146 (1), 171686 (2019).
  40. Meyer, J. S., et al. Modeling early retinal development with human embryonic and induced pluripotent stem cells. Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America. 106 (39), 16698-16703 (2009).
  41. Shirai, H., et al. Transplantation of human embryonic stem cell-derived retinal tissue in two primate models of retinal degeneration. Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America. 113 (1), 81-90 (2016).
  42. Mandai, M., et al. iPSC-derived retina transplants improve vision in rd1 end-stage retinal-degeneration mice. Stem Cell Reports. 8 (4), 1112-1113 (2017).
  43. Scruggs, B. A., et al. Optimizing donor cellular dissociation and subretinal injection parameters for stem cell-based treatments. Stem Cells Translational Medicine. 8 (8), 797-809 (2019).
  44. Singh, R., et al. Pluripotent stem cells for retinal tissue engineering: Current status and future prospects. Stem Cell Reviews and Reports. 14 (4), 463-483 (2018).
  45. Sharma, R., et al. Clinical-grade stem cell-derived retinal pigment epithelium patch rescues retinal degeneration in rodents and pigs. Science Translational Medicine. 11, 475 (2019).
  46. Ghosh, F., Engelsberg, K., English, R. V., Petters, R. M. Long-term neuroretinal full-thickness transplants in a large animal model of severe retinitis pigmentosa. Graefes Archive for Clinical and Experimental Ophthalmology. 245 (6), 835-846 (2007).
  47. Koss, M. J., et al. Subretinal implantation of a monolayer of human embryonic stem cell-derived retinal pigment epithelium: a feasibility and safety study in Yucatan minipigs. Graefes Archive for Clinical and Experimental Ophthalmology. 254 (8), 1553-1565 (2016).
  48. da Cruz, L., et al. Phase 1 clinical study of an embryonic stem cell-derived retinal pigment epithelium patch in age-related macular degeneration. Nature Biotechnology. 36 (4), 328-337 (2018).
  49. Kashani, A. H., et al. Subretinal implantation of a human embryonic stem cell-derived retinal pigment epithelium monolayer in a porcine model. Advances in Experimental Medicine and Biology. 1185, 569-574 (2019).
  50. Kashani, A. H., et al. Surgical method for implantation of a biosynthetic retinal pigment epithelium monolayer for geographic atrophy: Experience from a Phase 1/2a study. Ophthalmology. Retina. 4 (3), 264-273 (2020).
  51. Petersen-Jones, S. M., Komaromy, A. M. Dog models for blinding inherited retinal dystrophies. Human Gene Therapy. Clinical Development. 26 (1), 15-26 (2015).
  52. Beltran, W. A., et al. Canine retina has a primate fovea-like bouquet of cone photoreceptors which is affected by inherited macular degenerations. PLoS One. 9 (3), 90390 (2014).
  53. Nasonkin, I. O., et al. Transplantation of human embryonic stem cell derived retinal tissue in the subretinal space of immunodeficient rats with retinal degeneration (RD). Investigative Ophthalmology and Visual Science. 60 (9), 3109 (2019).
  54. Singh, R. K., et al. Development of a protocol for maintaining viability while shipping organoid-derived retinal tissue. Journal of Tissue Engineering and Regenerative Medicine. 14 (2), 388-394 (2020).
  55. Petersen-Jones, S. M. Drug and gene therapy of hereditary retinal disease in dog and cat models. Drug Discovery Today. Disease Models. 10 (4), 215-223 (2013).
  56. Machemer, R., Buettner, H., Norton, E., Parel, J. M. Vitrectomy: a pars plana approach. Transactions – American Academy of Ophthalmology and Otolaryngology. 75 (4), 813-820 (1972).
  57. Machemer, R., Norton, E. W. Vitrectomy, a pars plana approach. II. Clinical experience. Modern Problems in Ophthalmology. 10, 178-185 (1972).
  58. Machemer, R., Parel, J., Norton, E. Vitrectomy: a pars plana approach. Technical improvements and further results. Transactions – American Academy of Ophthalmology and Otolaryngology. 76 (2), 462-466 (1972).
  59. O’Malley, C., Heintz, R. M. Vitrectomy with an alternative instrument system. Annals of Ophthalmology. 7 (4), 585-588 (1975).
  60. Machemer, R., Hickingbotham, D. The three-port microcannular system for closed vitrectomy. American Journal of Ophthalmology. 100 (4), 590-592 (1985).
  61. Petersen-Jones, S. M., et al. AAV retinal transduction in a large animal model species: comparison of a self-complementary AAV2/5 with a single-stranded AAV2/5 vector. Molecular Vision. 15, 1835-1842 (2009).
  62. Annear, M. J., et al. Successful gene therapy in older Rpe65-deficient dogs following subretinal injection of an adeno-associated vector expressing RPE65. Human Gene Therapy. 24 (10), 883-893 (2013).
  63. Beltran, W. A., et al. Optimization of retinal gene therapy for X-linked retinitis pigmentosa due to RPGR mutations. Molecular Therapy: The Journal of the American Society of Gene Therapy. 25 (8), 1866-1880 (2017).
  64. Bainbridge, J. W. B., et al. Long-term effect of gene therapy on Leber’s Congenital Amaurosis. The New England Journal of Medicine. 372 (20), 1887-1897 (2015).

Play Video

Cite This Article
Occelli, L. M., Marinho, F., Singh, R. K., Binette, F., Nasonkin, I. O., Petersen-Jones, S. M. Subretinal Transplantation of Human Embryonic Stem Cell-Derived Retinal Tissue in a Feline Large Animal Model. J. Vis. Exp. (174), e61683, doi:10.3791/61683 (2021).

View Video