Qui è presentato un protocollo per l’isolamento e l’amplificazione di batteri commenali congiuntivali anaerobici aerobici e facultativi del topo utilizzando un tampone oculare unico e una fase di arricchimento basata sulla coltura con successiva identificazione con metodi microbiologici basati e spettrometria di massa MALDI-TOF.
La superficie oculare era un tempo considerata immune privilegiata e abiotica, ma recentemente sembra che ci sia una piccola ma persistente presenza commerciale. L’identificazione e il monitoraggio delle specie batteriche nella mucosa oculare sono stati impegnativi a causa della loro bassa abbondanza e della limitata disponibilità di una metodologia appropriata per la crescita e l’identificazione commensal. Esistono due approcci standard: metodi basati sulla cultura o sequenziamento del DNA. Il primo metodo è problematico a causa dei batteri recuperabili limitati e il secondo approccio identifica sia i batteri vivi che morti che portano a una rappresentazione aberrante dello spazio oculare. Abbiamo sviluppato un metodo robusto e sensibile per l’isolamento batterico basandoci su tecniche di coltivazione microbiologiche standard. Questa è una tecnica a base di tampone, utilizzando un tampone sottile “in-lab” realizzato che si rivolge alla congiuntiva inferiore, seguita da una fase di amplificazione per i generi anaerobici aerobici e facultativi. Questo protocollo ci ha permesso di isolare e identificare specie congiuntivali come Corynebacterium spp., Coagulase Negative Staphylococcus spp., Streptococcus spp. L’approccio è adatto a definire la diversità commenale nei topi in diverse condizioni di malattia.
Lo scopo di questo protocollo è quello di migliorare l’isolamento specifico di microbi anaerobici aerobici e facultativi vitali e rari dalla congiuntiva oculare per caratterizzare il microbioma oculare. Studi approfonditi hanno profilato le comunità mucose commenali sulla pelle, l’intestino, le vie respiratorie e genitali e mostrano che queste comunità influenzano lo sviluppo del sistema immunitarioe la risposta 1,2,3. Le comunità commenali oculari hanno dimostrato di cambiare durante alcune patologie della malattia, come la malattia dell’occhiosecco 4,la sindrome di Sjogren5 e il diabete6. Tuttavia, la capacità di definire una tipica comunità commensale di superficie oculare è ostacolata dalla loro abbondanza relativamente bassa rispetto agli altri siti dimucosa 6,7,8. Ciò suscita una controversia sul fatto che esista un microbioma oculare residente e se esiste, se differisce dal microbioma cutaneo e, di conseguenza, il suo effetto locale sullo sviluppo e la risposta del sistema immunitario innato. Questo protocollo può aiutare a risolvere questa domanda.
Generalmente, gli approcci per definire la nicchia commensal oculare si basano sul sequenziamento e sulle tecnichebasate sulla cultura 4,7,9. 16 Il sequenziamento s rDNA e l’analisi BRISK7 mostrano una diversità più ampia rispetto alle tecniche basate sulla cultura, ma non sono in grado di distinguere tra microbi vivi e morti. Poiché la superficie oculare è ostile a molti microbi a causa delle proprietà antimicrobiche4 del film lacrimale che generano una vasta gamma di frammenti di DNA, gli approcci basati sul DNA rileveranno questi artefatti che possono distorcere i dati verso l’identificazione di batteri morti come commensal residenti piuttosto che contaminanti. Ciò si traduce in un’identificazione commensale aberrante e nella caratterizzazione dello spazio oculare come più elevato nell’abbondanza e nella diversità dei microbi10. Ciò rende difficile definire il microbioma oculare residente tramite metodi basati sul DNA. Considerando che le tecniche standard basate sulle impostazioni cultura non sono in grado di rilevare commensals perché il carico ètroppo basso 11. Il nostro metodo migliora le pratiche standard utilizzando un tampone sottile in grado di colpire la congiuntiva, evitando così la contaminazione dalla pelle vicina, così come il concetto che gli organismi vitali possono essere arricchiti da una breve coltura in mezzi densi di nutrienti con l’obiettivo di rianimare vitale ma non culturabile, oltre che arricchente per rari microbi vitali.
I risultati, l’abbondanza relativa di commensali oculari per tampone oculare, caratterizzano il microbioma residente congiuntiva e sono importanti per scopi comparativi. I nostri dati mostrano che c’è una differenza tra pelle e microbiota congiuntivale, così come una maggiore diversità con l’aumento dell’età e una differenza di abbondanza specifica per sesso. Inoltre, questo approccio ha trovato riproducibilmente differenze commenali nei topi knock-out12. Questo protocollo può essere applicato per descrivere il microbioma oculare che può variare a causa di pratiche di permanenza in gabbia, geografia o stato di malattia, così come gli effetti locali dei metaboliti commensali e dei prodotti sullo sviluppo e la risposta del sistema immunitario.
A causa dello stato paucibacterial della superficie oculare, molti laboratori hanno avuto difficoltà a isolare i commensaloculari 7,20, con conseguente basso numero di campioni con crescita, bassa abbondanza e bassa diversità8. Questo metodo migliora significativamente le pratiche di coltura standard4,21 con l’aggiunta di una fase di arricchimento, nonché un tampone per gli occh…
The authors have nothing to disclose.
I finanziamenti del P30 DK034854 hanno supportato VY, LB e studi nel Massachusetts Host-Microbiome Center e finanziamenti da NIH/NEI R01 EY022054 supportato MG.
0.1 to 10 µl pipet tip | USA Scientific | 1110-300 | autoclave before use |
0.5 to 10 µl Eppendorf pipet | Fisher Scientific | 13-690-026 | |
1 ml syringe | Fisher Scientific | BD309623 | 1 syringe for each eye swab group |
1.5 ml Eppendorf tubes | USA Scientific | 1615-5500 | autoclave before use |
1000 µ ml pipet tip | USA Scientific | 1111-2021 | autoclave before use |
200 to 1000µl Gilson pipetman (P1000) | Fisher Scientific | F123602G | |
25 G needle | Fisher Scientific | 14-826AA | 1 needle per eye swab group |
3 % Hydrogen Peroxide | Fisher Scientific | S25359 | |
37 ° C Incubator | Lab equipment | ||
70 % Isopropanol | Fisher Scientific | PX1840-4 | |
Ana-Sed Injection (Xylazine 100 mg/ml) | Santa Cruz Animal Health | SC-362949Rx | |
BD BBL Gram Stain kit | Fisher Scientific | B12539 | |
Bunsen Burner | Lab equipment | ||
Clean paper towels | Lab equipment | ||
Cotton Batting/Sterile rolled cotton | CVS | ||
Disposable 1 ml Pipets | Fisher Scientific | 13-711-9AM | for Gram stain and catalase tests |
E.coli | ATTC | ATCC 8739 | |
Glass slides | Fisher Scientific | 12-550-A3 | for Gram stain and catalase tests |
Ketamine (100mg/ml) | Henry Schein | 9950001 | |
Mac Conkey Agar Plates | Fisher Scientific | 4321270 | store at 4 °C until ready to use |
Mannitol Salt Agar | Carolina Biological Supply | 784641 | Prepare plates according to mfr's instructions, store at 4 °C for 1 week |
Mice | Jackson Labs | C57/BL6J | |
Petri Dishes | Fisher Scientific | 08-757-12 | for Mannitol Salt agar plates |
RPI Brain Heart Infusion Media | Fisher Scientific | 50-488525 | prepare according to directions and autoclave |
SteriFlip (0.22 µm pore size polyester sulfone) | EMD/Millipore, Fisher Scientifc | SCGP00525 | to sterilize anesthesia |
Sterile Corning Centrifuge Tube | Fisher Scientific | 430829 | anesthesia preparation |
Sterile mouse cage | Lab equipment | ||
Tooth picks (round bamboo) | Kitchen Essentials | autoclave before use and swab preparation | |
Trypticase Soy Agar II with 5% Sheep's Blood Plates | Fisher Scientific | 4321261 | store at 4 °C until ready to use |
Vitek target slide | BioMerieux Inc. Durham,NC | ||
Vitek-MS | BioMerieux Inc. Durham,NC | ||
Vitek-MS CHCA matrix solution | BioMerieux Inc. Durham, NC | 411071 | |
Single use eye drops | CVS Pharmacy | Bausch and Lomb Soothe Lubricant Eye Drops, 28 vials, 0.02 fl oz. each |