Dit protocol beschrijft een aangepaste methode om microvasculaire endotheelcellen van de hersenen af te leiden, uit te breiden en cryopreserveren, verkregen door het differentiëren van door de mens geïnduceerde pluripotente stamcellen, en om de eigenschappen van de bloed-hersenbarrière in een ex vivo model te bestuderen.
Hersenmicrovasculaire endotheelcellen (BMECs) kunnen worden onderscheiden van humane geïnduceerde pluripotente stamcellen (iPSC’s) om ex vivo cellulaire modellen te ontwikkelen voor het bestuderen van de bloed-hersenbarrière (BBB) functie. Dit gewijzigde protocol biedt gedetailleerde stappen om BMECs af te leiden, uit te breiden en cryopreserve te maken van menselijke iPC’s met behulp van een andere donor en reagentia dan die in eerdere protocollen. iPSC’s worden behandeld met essentiële 6 medium gedurende 4 dagen, gevolgd door 2 dagen humaan endotheel serumvrij kweekmedium aangevuld met basis fibroblast groeifactor, retinoïnezuur en B27 supplement. Op dag 6 worden cellen gedurende 2 dagen onderverdeeld in een collageen/fibronectinematrix. Immunocytochemie wordt uitgevoerd op dag 8 voor BMEC-markeranalyse met behulp van CLDN5, OCLN, TJP1, PECAM1 en SLC2A1. Western blotting wordt uitgevoerd om bmec-markeringsexpressie en afwezigheid van SOX17, een endodermale marker, te bevestigen. Angiogeen potentieel wordt aangetoond met een kiemende test. Trans-endotheel elektrische weerstand (TEER) wordt gemeten met behulp van eetstok elektroden en voltohmmeter vanaf dag 7. Efflux transporter activiteit voor ATP binding cassette onderfamilie B lid 1 en ATP binding cassette onderfamilie C lid 1 wordt gemeten met behulp van een multi-plate reader op dag 8. Succesvolle afleiding van BMECs wordt bevestigd door de aanwezigheid van relevante celmarkers, lage niveaus van SOX17, angiogeen potentieel, transportactiviteit en TEER-waarden ~2000 Ω x cm2. BMECs worden uitgebreid tot dag 10 alvorens over te gaan op vers gecoate collageen/fibronectine platen of cryopreserved. Dit protocol toont aan dat iPSC-afgeleide BMECs ten minste één keer kunnen worden uitgebreid en doorgegeven. Lagere TEER-waarden en een slechtere lokalisatie van BMEC-markers werden echter waargenomen na cryopreservatie. BMECs kunnen worden gebruikt in co-cultuur experimenten met andere celtypen (neuronen, glia, pericyten), in driedimensionale hersenmodellen (organ-chip en hydrogel), voor vascularisatie van hersenorganoïden, en voor het bestuderen van BBB-disfunctie bij neuropsychiatrische aandoeningen.
Bloed-hersenbarrièrefunctie
De bloed-hersenbarrière (BBB) vormt een grens die de beweging van stoffen van het bloed naar de hersenen beperkt. De BBB bestaat uit microvasculaire endotheelcellen (BMECs) die een monolaag vormen langs de vasculatuur. BMECs vormen samen met astrocyten, neuronen, pericyten, microglia en extracellulaire matrix de neurovasculaire eenheid. BMECs hebben een strak gereguleerde paracellulaire structuur die de BBB in staat stelt een hoge trans-endotheel elektrische weerstand (TEER) te handhaven, die passieve diffusie beperkt en dient als indicator voor barrière-integriteit1,2. BMECs hebben ook eiwitten die helpen bij transcellulaire beweging zoals endocytose, transcytose en transmigratie, evenals extravasatie van leukocyten tijdens een immuunrespons3. BMECs vertrouwen op influx en efflux transporters voor voeding en verwijdering van afvalproducten, om een homeostatische balans in de hersenen te behouden3. Solute Carrier Family 2 member 1 (SLC2A1) is bijvoorbeeld een influx transporter die verantwoordelijk is voor de beweging van glucose over de BBB4, terwijl efflux transporters zoals de ATP binding cassette subfamilie B lid 1 (ABCB1) en de ATP binding cassette subfamilie C lid 1 (ABCC1) verantwoordelijk zijn voor het terugbrengen van substraten terug in de bloedstroom3,5,6,7. ABCB1-substraten omvatten morfine, verapamil4en antipsychotica zoals olanzapine en risperidon8, terwijl de ABCC1-transporteur een verscheidenheid aan substraten heeft, waaronder sulfaatconjugaten, vincristine en glucuronideconjugaten4.
Toepassing van BBB-modellen bij psychiatrische stoornissen
BBB-disfunctie is betrokken bij een aantal neurologische en psychiatrische stoornissen, waaronder schizofrenie en bipolairestoornis 9,10. Onlangs werden van iPSC afgeleide ex vivo cellulaire modellen gebruikt om de cellulaire en moleculaire onderbouwing van psychiatrische stoornissen te ondervragen, maar deze modellen houden momenteel geen rekening met de potentiële rol van de neurovasculatuur11,12,13. Er wordt aangenomen dat perifere inflammatoire cytokinen die in het bloed circuleren een negatieve invloed kunnen hebben op de BBB14,15,16,17, maar er is ook bewijs voor paracellulaire18,19,20,21,22, transcellulaire23,24,25,26,27,28,29, en extracellulaire matrix20,29,30,31,32 afwijkingen die bijdragen aan BBB-disfunctie. Verstoring van de BBB kan ertoe leiden dat de inhoud van het bloed het hersenparenchym binnendringt en astrocyten en/of microglia activeert om pro-inflammatoire cytokinen vrij te geven, die op hun beurt een ontstekingsreactieinitiëren 33 die schadelijke effecten op de hersenen kan hebben34. BMECs zijn de primaire component van de BBB en het onderzoeken van de structuur en functie van deze cellen kan het begrip van BBB-disfunctie bij neurologische en psychiatrische stoornissen verbeteren.
Alternatieve BMEC-modellen
Voorafgaand aan de ontwikkeling van efficiënte protocollen voor het afleiden van BMECs uit iPSC’s1,6,35,36,hadden onderzoekers vereeuwigde BMECs37 gebruikt om de BBB-functie te bestuderen. Veel van deze modellen slaagden er echter niet in om wenselijke BBB-fenotypen te bereiken, zo’n fysiologisch bereik van TEER-waarden38,39. Het gebruik van iPSC’s heeft het voordeel dat de genetische achtergrond van het individu waaruit de cellen zijn afgeleid, behouden blijft. Wetenschappers werken actief aan het opzetten van iPSC-afgeleide ex vivo micromilieumodellen die de structuur en functie van het menselijk brein samenvatten. Onderzoekers hebben methoden ontwikkeld om BMECs af te leiden die structureel en fysiologisch vergelijkbaar zijn met BMECs gevonden in vivo. Methoden voor het verkrijgen van gezuiverde populaties van iPSC-afgeleide BMECs vereisen een aantal verschillende stappen waarbij protocollen in de afgelopen jaren zijn geoptimaliseerd1,6,35,36. Over het algemeen worden iPSC-afgeleide BMECs gedurende 4 dagen gekweekt in Essential 6 (E6) medium, gevolgd door 2 dagen in humaan endotheel serumvrij medium (hESFM) aangevuld met basis fibroblast groeifactor (bFGF), retinoïnezuur (RA) en B27 supplement. De cellen worden vervolgens gekweekt op een collageen IV (COL4) en fibronectine (FN) matrix om >90% homogene BMECs te verkrijgen1.
De identiteit van BMECs wordt bevestigd door immunofluorescentie die de co-expressie van BMEC-eiwitten laat zien, waaronder bloedplaatjes-endotheelcelhechtingsmolecuul-1 (PECAM1), SLC2A1 en strakke verbindingseiwitten zoals tight junction protein 1 (TJP1), occludin (OCLN) en claudin-5 (CLDN5)6. Kiemtests zijn gebruikt om het angiogene potentieel van van iPSC afgeleide BMECs te bevestigen. 6 De BBB-integriteit van BMECs wordt beoordeeld door de aanwezigheid van fysiologische in vitro TEER-waarden (~2000Ω x cm2)37 en meetbare activiteit voor effluxtransporters zoals ABCB1 en ABCC11,6,36. Recente methodologische vooruitgang van de Lippmann-groep heeft geleid tot iPSC-afgeleide BMEC-protocollen met verminderde experimentele variabiliteit en verbeterde reproduceerbaarheid1. Het is echter niet bekend of ze kunnen worden uitgebreid en voorbij het sub-culturing stadium kunnen worden doorgetrokken. Ons gewijzigde protocol is bedoeld om dit probleem aan te pakken door iPSC-afgeleide BMECs na dag 8 door te geven en te beoordelen of ze verder kunnen worden uitgebreid om BBB-eigenschappen te behouden na cryopreservatie. Hoewel er geen studies zijn beschreven over het passeren van iPSC-afgeleide BMECs, bestaat er een protocol voor BMEC cryopreservatie dat fysiologische BBB-eigenschappen behoudt na het ondergaan van een vriesdooicyclus40. Het is echter niet bekend dat BMECs na cryopreservatie kunnen worden doorgegang en BBB-eigenschappen behouden.
BMECs afgeleid van iPSC’s die het Lippmann-protocol gebruiken, zijn gebruikt om BBB-verstoring bij neurologische aandoeningen zoals de Ziekte van Huntingtonte modelleren 7. Dergelijke van iPSC afgeleide BMECs zijn ook gebruikt om de effecten van bacteriële infectie zoals Neisseria meningitidis of Groep B Streptococcus op verstoring van de bloed-CSF-barrière en BBB respectievelijk41,42te onderzoeken . Ook, met behulp van iPSC-afgeleide BMECs van 22q deletiesyndroom patiënten met schizofrenie, onderzoekers waargenomen een toename van intercellulaire adhesie molecuul-1 (ICAM-1), een belangrijke adhesie molecuul in BMECs die helpen bij de werving en extravasatie van leukocyten in de hersenen43. Samen tonen deze studies het nut aan van iPSC-afgeleide BMECs voor het bestuderen van BBB-verstoring bij complexe neuropsychiatrische aandoeningen.
Wijzigingen en probleemoplossing
In dit protocol hebben we enkele wijzigingen aangebracht in het gebruik van een veelgebruikte extracellulaire matrix en celkweekmedia tijdens iPSC-culturing voor afleiding van BMECs (figuur 1). Deze wijzigingen hadden geen invloed op het vermogen om BMECS af te leiden van menselijke iPSC ‘s zoals beschreven in het Lippmann-protocol1. Een iPSC-lijn van een andere gezonde donor werd gebruikt o…
The authors have nothing to disclose.
Dit werk werd ondersteund door een National Institute of Mental Health Biobehavioral Research Awards for Innovative New Scientists (BRAINS) Award R01MH113858 (to R.K.), een National Institutes of Health Award KL2 TR002542 (PL). een National Institute of Mental Health Clinical Scientist Development Award K08MH086846 (to R.K.), a Sydney R Baer Jr Foundation Grant (to P.L.) the Doris Duke Charitable Foundation Clinical Scientist Development Award (to R.K.), the Ryan Licht Sang Bipolar Foundation (to R.K.), the Phyllis & Jerome Lyle Rappaport Foundation (naar R.K.), het Harvard Stem Cell Institute (naar R.K.) en door Steve Willis en Elissa Freud (naar R.K.). We danken Dr. Annie Kathuria voor haar kritische lezing en feedback op het manuscript.
2′,7′-dichlorodihydrofluorescein diacetate | Sigma Aldrich | D6883-50MG | |
Accutase | Sigma Aldrich | A6964-100mL | |
Alexa Fluor 488 Donkey anti-Mouse IgG | Life Technologies | A-21202 | |
Alexa Fluor 555 Donkey anti-Rabbit IgG | Life Technologies | A-31572 | |
B27 Supplement | Thermo Fisher Scientific | 17504044 | |
CD31 (PECAM-1) (89C2) Mouse mAb | Cell Signaling | 3528S | |
CLDN5 (Claudin-5) | Thermo Fisher Scientific | 35-2500 | |
Collagen IV from human placenta | Sigma Aldrich | C5533-5mg | |
Corning 2 mL Internal Threaded Polypropylene Cryogenic Vial | Corning | 8670 | |
Corning Costar Flat Bottom Cell Culture Plates (6-wells) | Corning | 353046 | |
Corning Falcon Flat Bottom Cell Culture Plates (24-wells) | Corning | 353047 | |
Corning Transwell Multiple Well Plate with Permeable Polyester Membrane Inserts (12-wells) | Corning | 3460 | |
Countess slides | Thermo Fisher Scientific | C10228 | |
DMEM/F12 (without phenol red) | Thermo Fisher Scientific | A1413202 | |
DMSO | Sigma Aldrich | D2438-50mL | |
Donkey serum | Sigma Aldrich | D9663-10ML | |
DPBS (+/+) | Gibco/Thermo Fisher Scientific | 14040-117 | |
Epithelial Volt/Ohm (TEER) Meter (EVOM2) STX2 | World Precision Instruments | N/A | |
Essential 6 Medium (Thermo Fisher) | Thermo Fisher Scientific | A1516401 | |
Fetal Bovine Serum (FBS) | Sigma Aldrich | F2442 | |
Fibronectin | Sigma Aldrich | F2006-2mg | |
Geltrex LDEV-Free Reduced Growth Factor Basement Membrane Matrix | Thermo Fisher Scientific | A1413202 | |
Hanks' Balance Salt Solution with calcium and magnesium | Thermo Fisher Scientific | 24020-117 | |
Hoechst 33342, Trihydrochloride, Trihydrate | Thermo Fisher Scientific | H3570 | |
Human endothelial serum-free medium | Thermo Fisher Scientific | 11111044 | |
InCell Analyzer 6000 | General Electric | N/A | |
Invitrogen Countess Automated Cell Counter | Thermo Fisher Scientific | N/A | |
MK-571 | Sigma Aldrich | M7571-5MG | |
NutriStem | Stemgent | 01-0005 | |
Occludin | Thermo Fisher Scientific | 33-1500 | |
Paraformaldehyde 16% | Electron Microscopy Services | 15710 | |
Perkin Elmer Envision 2103 multi-plate Reader | Perkin Elmer | N/A | |
Recombinant Human VEGF 165 | Peprotech | 100-20 | |
Recombinant Human FGF-basic (154 a.a.) | Peprotech | 100-18B | |
Retinoic acid | Sigma Aldrich | R2625-100MG | |
Rhodamine 123 | Sigma Aldrich | 83702-10MG | |
SLC2A1 (GLUT-1) | ThermoFisher | PA1-21041 | |
SOX17 | Cell Signaling | 81778S | |
TJP-1 (ZO-1) | ThermoFisher | PA5-28869 | |
Triton X-100 | Sigma Aldrich | T8787-50ML | |
Trypan Blue Stain (0.4%) for use with the Countess Automated Cell Counter | Thermo Fisher Scientific | T10282 | |
Valspodar (Sigma) (cyclosporin A) | Sigma Aldrich | SML0572-5MG | |
Versene solution | Thermo Fisher Scientific | 15040066 | |
Y-27632 dihydrochloride (ROCK inhibitor) | Tocris/Thermo Fisher Scientific | 1254 |