Summary

Gebruik van primaire gekweekte hippocampale neuronen om de assemblage van axon-initiële segmenten te bestuderen

Published: February 12, 2021
doi:

Summary

Hier beschreven we een protocol om de assemblage en structuur van de axon initiële segmenten (AIS) van hippocampale neuronen die geen vooraf geassembleerde AIS missen vanwege de afwezigheid van een gigantische ankyrine-G kwantitatief te bestuderen.

Abstract

Neuronale axon initiële segmenten (AIS) zijn plaatsen van initiatie van actiepotentiaal en zijn uitgebreid bestudeerd op hun moleculaire structuur, assemblage en activiteitsafhankelijke plasticiteit. Giant ankyrine-G, de hoofdorganisator van AIS, associeert direct met membraan-spanning gated sodium (VSVG) en kaliumkanalen (KCNQ2/3), evenals 186 kDa neurofascine, een L1CAM celadhesiemolecuul. Giant ankyrine-G bindt ook aan en rekruteert cytoplasmatische AIS moleculen waaronder bèta-4-spectrine, en de microtubulusbindende eiwitten, EB1/EB3 en Ndel1. Reuze ankyrine-G is voldoende om AIS-vorming in ankyrine-G-deficiënte neuronen te redden. Ankyrine-G omvat ook een kleinere 190 kDa isoform gelegen op dendritische stekels in plaats van de AIS, die niet in staat is om zich te richten op de AIS of het redden van de AIS in ankyrine-G-deficiënte neuronen. Hier beschreven we een protocol met gekweekte hippocampale neuronen van ANK3-E22/23-floxmuizen, die, wanneer getransfecteerd met Cre-BFP, verlies van alle isovorm van ankyrine-G vertonen en de vorming van AIS belemmeren. Gecombineerd met een gemodificeerd Banker glia/neuron co-cultuursysteem, ontwikkelden we een methode om ankyrine-G null neuronen te transfecteren met een 480 kDa ankyrine-G-GFP plasmide, wat voldoende is om de vorming van AIS te redden. We gebruiken verder een kwantificeringsmethode, ontwikkeld door Salzer en collega’s om te gaan met variatie in AIS-afstand tot de neuronale cellichamen die optreedt in hippocampale neuronculturen. Dit protocol maakt kwantitatieve studies van de de novo assemblage en dynamisch gedrag van AIS mogelijk.

Introduction

Het axon initiële segment bevindt zich bij het proximale axon in de meeste gewervelde neuronen. Functioneel gezien is AIS waar actiepotentiaal wordt geïnitieerd vanwege de hoge dichtheid van spanningspoortnatriumkanalen in deze regio. AIS van sommige excitatory neuronen zijn ook gericht door remmende interneurons door het vormen van GABAergic synapsen1,2,3. Daarom is AIS een kritieke locatie om celsignalering te integreren en de prikkelbaarheid van neuronen te moduleren. AIS is normaal gesproken 20-60 μm lang en bevindt zich binnen 20 μm van het cellichaam. De lengte en positie van AIS varieert in neuronen in hersengebieden, evenals in verschillende ontwikkelingsstadia van hetzelfde neuron4,5. Geaccumuleerd bewijs suggereerde dat de samenstelling en positie van AIS dynamisch zijn in het reageren op de verandering van neuronale activiteit4,5,6,7.

480 kDa ankyrin-G is de hoofdorganisator van AIS. 480 kDa ankyrine-G is een membraan geassocieerd adaptereiwit dat zich direct bindt aan spanning gated natriumkanalen en andere belangrijke AIS-eiwitten, waaronder beta4-spectrin, KCNQ2/3 kanalen die natriumkanaalactiviteit8,9en 186 kDa neurofascine moduleren, een L1CAM die GABAergische synapsen naar de AIS2,10leidt . 480 kDa ankyrine-G deelt canonieke ankyrinedomeinen die te vinden zijn in de korte 190 kDa ankyrine-G isoform (ANK repeats, spectrin binding domain, regulatory domain), maar onderscheiden zich door een gigantische exon die alleen in gewervelde dieren voorkomt en specifiek wordt uitgedrukt in neuronen (Figuur 1A)11,12. Het 480 kDa ankyrine-G neuron specifiek domein (NSD) is vereist voor AIS-vorming12. De 190 kDa ankyrine-G bevordert geen AIS-assemblage of richt zich niet op AIS in ankyrine-G-null neuronen12. Echter, 190 kDa ankyrine-G is geconcentreerd op de AIS met 480 kDa ankyrine-G12. Dit vermogen van de 190 kDa ankyrine-G om zich te richten op voorgemonteerde AIS van wildtype neuronen is een bron van verwarring in de literatuur geweest en heeft de waardering van de kritische gespecialiseerde functies van de 480 kDa ankyrine-G in AIS-assemblage vertraagd. Daarom is het van cruciaal belang om AIS-assemblage te bestuderen in ankyrine-G-null neuronen die geen vooraf geassembleerde AIS hebben.

Hier presenteren we een methode om de assemblage en structuur van de AIS te bestuderen met behulp van gekweekte hippocampale neuronen van ANK3-E22/23-flox muizen die alle isovormen van ankyrine-G13 elimineert (Figuur 1B). Door neuronen te transfecteren met een Cre-BFP-constructie voordat AIS wordt geassembleerd, genereerden we ankyrine-G-deficiënte neuronen die volledig geen AIS hadden (Figuur 1B, Figuur 2). De assemblage van AIS wordt volledig gered na co-transfectie van 480 kDa ankyrine-G-GFP plasmide met een Cre-BFP plasmide. Deze methode biedt een manier om de AIS-assemblage te bestuderen in een niet-voorgemonteerde AIS-omgeving. We hebben ook het glia-neuron co-cultuursysteem van Gary Banker aangepast zonder antibiotica te gebruiken, eerder ontworpen voor embryonale dag 18 neuronen, voor toepassing op postnatale muisneuronen en een AIS-kwantificeringsmethode aangepast aan gemiddelde AIS-metingen van meerdere neuronen om de variatie van AIS14,15te normaliseren .

Protocol

OPMERKING: Deze kweekmethode van hippocampale neuronen van postnatale 0-daagse ANK3-E22/23f/f muizen is aangepast aan gary banker’s glia/neuron co-cultuur systeem. Daarom is het van cruciaal belang om alle stappen na dissectie in een schone kap uit te voeren met behulp van gesteriliseerd gereedschap. Dit protocol duurt maximaal 1 maand. De werkstroom wordt weergegeven in figuur 3. Het protocol volgt de dierrichtlijnen van Duke University. 1. Het …

Representative Results

Een volledige reeks experimenten moet cre-BFP alleen transfectie als negatieve controle, Cre-BFP plus 480 kDa ankyrine-G co-transfectie als positieve controle en een niet-getransfecteerde toestand als techniekcontrole omvatten. In cre-BFP alleen controle, transfected neuronen missen de accumulatie van AIS markers, met inbegrip van ankyrine-G (ankG), beta4-spectrine (β4), neurofascin (Nf) en voltage gated sodium channels (VSVG) (Figuur 4A)16. Cre en 480 kDa ankyrine-G…

Discussion

De assemblage van AIS wordt georganiseerd door 480 kDa ankyrin-G. Ankyrine-G heeft echter kortere isovormen die zich kunnen richten op de AIS van wildtype neuronen, wat kan leiden tot problemen bij de interpretatie van structuurfunctieanalyses van AIS-assemblage. Hier presenteren we een methode met neuronen van ANK3-E22/23-flox muizen die studie van de novo assemblage van de AIS mogelijk maakt. Door te transfecteren met Cre-BFP op 3 div, elimineren we alle endogene isovormen van ankyrine-G. We kunnen oo…

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

We danken Dr. Gary Banker voor suggestie over neuronaal cultuur protocol. Dit werk wordt ondersteund door het Howard Hughes Medical Institute, een beurs van NIH, en een George Barth Geller begiftigd hoogleraarschap (V.B.).

Materials

10xHBSS Thermo Fisher Scientific 14065-056
18mm coverglass (1.5D) Fisher Scientific 12-545-84-1D
190kDa ankyrin-G-GFP Addgene #31059
2.5% Tripsin without phenol red Thermo Fisher Scientific 14065-056
480kDa ankyrin-G-GFP lab made Provide upon request
ANK3-E22/23f/f mice JAX Stock No: 029797 B6.129-Ank3tm2.1Bnt/J;
B27 serum-free supplement Thermo Fisher Scientific A3582801
Boric acid Sigma-Aldrich B6768
Cell strainer with 70-mm mesh BD Biosciences 352350
Ceramic coverslip-staining rack Thomas Scientific 8542E40
Cre-BFP Addgene #128174
D-Glucose Sigma-Aldrich G7021
DMEM Thermo Fisher Scientific 11995073
GlutaMAX-I supplement Thermo Fisher Scientific A1286001
Lipofectamine 2000 Thermo Fisher Scientific 11668030
MEM with Earle’s salts and L-glutamine Thermo Fisher Scientific 11095-080
Neurobasal Medium Thermo Fisher Scientific 21103-049
Nitric acid 70% Sigma-Aldrich 225711
Opti-MEM I Reduced Serum Medium Thermo Fisher Scientific 31985062
Paraformaldehyde Sigma-Aldrich P6148
Penicillin-streptomycin Thermo Fisher Scientific 15140122
Poly-L-lysine hydrochloride Sigma-Aldrich 26124-78-7
Potassium hydroxide Sigma-Aldrich 1310-58-3

References

  1. Nelson, A. D., et al. Correction: Ankyrin-G regulates forebrain connectivity and network synchronization via interaction with GABARAP. Molecular Psychiatry. , (2019).
  2. Tseng, W. C., Jenkins, P. M., Tanaka, M., Mooney, R., Bennett, V. Giant ankyrin-G stabilizes somatodendritic GABAergic synapses through opposing endocytosis of GABAA receptors. Proceedings of the National Academy of Sciences of the U S A. 112 (4), 1214-1219 (2015).
  3. Tai, Y., Gallo, N. B., Wang, M., Yu, J. R., Van Aelst, L. Axo-axonic Innervation of Neocortical Pyramidal Neurons by GABAergic Chandelier Cells Requires AnkyrinG-Associated L1CAM. Neuron. 102 (2), 358-372 (2019).
  4. Hofflin, F., et al. Heterogeneity of the Axon Initial Segment in Interneurons and Pyramidal Cells of Rodent Visual Cortex. Frontiers in Cellular Neuroscience. 11, 332 (2017).
  5. Schluter, A., et al. Structural Plasticity of Synaptopodin in the Axon Initial Segment during Visual Cortex Development. Cerebral Cortex. 27 (9), 4662-4675 (2017).
  6. Kuba, H., Oichi, Y., Ohmori, H. Presynaptic activity regulates Na(+) channel distribution at the axon initial segment. Nature. 465 (7301), 1075-1078 (2010).
  7. Grubb, M. S., Burrone, J. Activity-dependent relocation of the axon initial segment fine-tunes neuronal excitability. Nature. 465 (7301), 1070-1074 (2010).
  8. Pan, Z., et al. A common ankyrin-G-based mechanism retains KCNQ and NaV channels at electrically active domains of the axon. Journal of Neuroscience. 26 (10), 2599-2613 (2006).
  9. Cooper, E. C. Made for “anchorin”: Kv7.2/7.3 (KCNQ2/KCNQ3) channels and the modulation of neuronal excitability in vertebrate axons. Seminars in Cell & Developmental Biology. 22 (2), 185-192 (2011).
  10. Zhou, D., et al. AnkyrinG is required for clustering of voltage-gated Na channels at axon initial segments and for normal action potential firing. The Journal of Cell Biology. 143 (5), 1295-1304 (1998).
  11. Kordeli, E., Lambert, S., Bennett, V. AnkyrinG. A new ankyrin gene with neural-specific isoforms localized at the axonal initial segment and node of Ranvier. Journal of Biological Chemistry. 270 (5), 2352-2359 (1995).
  12. Jenkins, P. M., et al. Giant ankyrin-G: a critical innovation in vertebrate evolution of fast and integrated neuronal signaling. Proceedings of the National Academy of Sciences of the U S A. 112 (4), 957-964 (2015).
  13. Jenkins, P. M., et al. E-cadherin polarity is determined by a multifunction motif mediating lateral membrane retention through ankyrin-G and apical-lateral transcytosis through clathrin. Journal of Biological Chemistry. 288 (20), 14018-14031 (2013).
  14. Kaech, S., Banker, G. Culturing hippocampal neurons. Nature Protocol. 1 (5), 2406-2415 (2006).
  15. Berger, S. L., et al. Localized Myosin II Activity Regulates Assembly and Plasticity of the Axon Initial Segment. Neuron. 97 (3), 555-570 (2018).
  16. Yang, R., et al. Neurodevelopmental mutation of giant ankyrin-G disrupts a core mechanism for axon initial segment assembly. Proceedings of the National Academy of Sciences of the U S A. 116 (39), 19717-19726 (2019).

Play Video

Cite This Article
Yang, R., Bennett, V. Use of Primary Cultured Hippocampal Neurons to Study the Assembly of Axon Initial Segments. J. Vis. Exp. (168), e61411, doi:10.3791/61411 (2021).

View Video