Summary

Culture des neurosphères dérivées des niches neurogéniques des campagnols adultes des Prairies

Published: June 10, 2020
doi:

Summary

Nous avons établi les conditions de culture des cellules progénitrices neurales de la zone sous-ventriculaire et de la bosseler le gyrus du cerveau adulte des campagnols des Prairies, en tant qu’étude in vitro complémentaire, pour analyser les différences dépendantes du sexe entre les niches névrogènes qui pourraient faire partie des changements plastiques fonctionnels associés aux comportements sociaux.

Abstract

Les neurosphères sont des agrégats cellulaires primaires qui comprennent des cellules souches neurales et des cellules progénitrices. Ces structures 3D sont un excellent outil pour déterminer le potentiel de différenciation et de prolifération des cellules souches neurales, ainsi que pour générer des lignées cellulaires que l’on peut trouver au fil du temps. En outre, les neurosphères peuvent créer un créneau (in vitro) qui permet la modélisation de l’environnement dynamique changeant, tels que divers facteurs de croissance, hormones, neurotransmetteurs, entre autres. Microtus ochrogaster (campagnol des Prairies) est un modèle unique pour comprendre la base neurobiologique des comportements socio-sexuels et de la cognition sociale. Cependant, les mécanismes cellulaires impliqués dans ces comportements ne sont pas bien connus. Le protocole vise à obtenir des cellules progénitrices neurales des niches névrogènes du campagnol adulte des Prairies, qui sont cultivés dans des conditions non adhérentes, pour générer des neurosphères. La taille et le nombre de neurosphères dépendent de la région (zone subventriculaire ou gyrus bosselé) et du sexe du campagnol des Prairies. Cette méthode est un outil remarquable pour étudier les différences sexo-dépendantes dans les niches névrogènes in vitro et les changements de neuroplasticité associés aux comportements sociaux tels que la liaison de paire et les soins biparentaux. En outre, les conditions cognitives qui entraînent des déficits dans les interactions sociales (troubles du spectre autistique et schizophrénie) pourraient être examinées.

Introduction

Le campagnol des Prairies (Microtus ochrogaster), un membre de la famille cricetidae, est un petit mammifère dont la stratégie de vie se développe comme une espèce socialement monogame et très sociable. Les mâles et les femelles établissent un lien de couple durable après l’accouplement ou de longues périodes de cohabitation caractérisées par le partage du nid, la défense de leur territoire, et l’affichage de soins biparentaux pour leurprogéniture 1,2,3,4. Ainsi, le campagnol de prairie est un modèle valable pour comprendre la base neurobiologique du comportement socio-sexuel et des affaiblissements dans la cognition sociale5.

La neurogenèse adulte est l’un des processus les plus primordiaux de la plasticité neuronale qui conduit à des changements comportementaux. Par exemple, notre groupe de recherche a signalé chez les campagnols mâles que la cohabitation sociale avec l’accouplement augmentait la prolifération cellulaire dans la zone sous-ventriculaire (ZV) et la zone subgranulaire dans le gyrus bosselé (DG) de l’hippocampe, ce qui suggère que la neurogenèse adulte peut jouer un rôle dans la formation de liaisons en couple induites par l’accouplement dans les campagnols des Prairies (données non publiées). D’autre part, bien que les régions du cerveau où de nouveaux neurones sont générés et intégrés sont bien connues, les mécanismes moléculaires et cellulaires impliqués dans ces processus restent indéterminés en raison des inconvénients techniques dans l’ensemble du modèlecérébral 6. Par exemple, les voies de signalisation contrôlant l’expression des gènes et d’autres activités cellulaires ont une période d’activation relativement courte (détection du phosphoprotéome)7. Un modèle alternatif est des cellules souches neurales adultes isolées et cultivés ou des cellules progénitrices pour élucider les composants moléculaires impliqués dans la neurogenèse adulte.

La première approche pour maintenir les précurseurs neuronaux in vitro du cerveau adulte de mammifère (souris) a été l’essai des neurosphères, qui sont des agrégats cellulaires se développent dans des conditions non adhérentes qui préservent leur potentiel multipotent pour générer des neurones, aussi bien que des astrocytes8,9,10. Au cours de leur développement, il existe un processus de sélection où seuls les précurseurs répondront aux mitogènes tels que le facteur de croissance épidermique (FEM) et le facteur de croissance fibroblaste 2 (FGF2) pour proliférer et générer des néorosphères8,9,10.

À notre connaissance, aucun protocole n’est rapporté dans la littérature pour obtenir des progéniteurs neuronaux adultes des campagnols des Prairies. Ici, nous avons établi les conditions de culture pour isoler les progéniteurs neuronaux des niches névrogènes et de leur entretien in vitro par l’essai de formation de neurosphère. Ainsi, les expériences peuvent être conçues pour identifier les mécanismes moléculaires et cellulaires impliqués dans la prolifération, la migration, la différenciation et la survie des cellules souches neurales et des progéniteurs, processus encore inconnus dans le campagnol des Prairies. En outre, l’élucidation des différences in vitro dans les propriétés des cellules dérivées de la ZV et de la DG pourrait fournir des informations sur le rôle des niches névrogènes dans la plasticité neuronale associée aux changements dans le comportement socio-sexuel et les comportements cognitifs, et les déficits dans les interactions sociales (troubles du spectre autistique et schizophrénie), qui pourraient également être dépendants du sexe.

Protocol

L’étude a été approuvée par le Comité d’éthique de la recherche de l’Instituto de Neurobiología, de l’Universidad Nacional Autónoma de México, au Mexique, et de l’Instituto Nacional de Perinatologia (2018-1-163). La reproduction, les soins et les critères d’évaluation humains des animaux ont été établis selon la norme mexicaine officielle (NOM-062-Z00-1999) basée sur le « Ley General de Salud en Materia de Investigación para la Salud » (Loi générale sur la santé pour la recherche en san…

Representative Results

Des neurosphères ont été formées à partir de cellules souches neurales isolées de la ZV et de la DG des campagnols adultes femelles et mâles des Prairies. Environ 8-10 jours après le début de la culture, les cellules auraient dû former les neurosphères. Notez que la plaque peut contenir des débris dans la culture primaire (Figure 3A). Toutefois, au passage 1, la culture ne devrait être composée que de neurosphères (figure 3B). <p class="jove_c…

Discussion

Une étape pour obtenir une culture neurale de cellules souches est la période de digestion avec la solution enzymatique, qui ne devrait pas dépasser plus de 30 min parce qu’elle pourrait diminuer la viabilité cellulaire. Les neurosphères devraient émerger à 8-10 jours après la culture initiale ; s’ils n’émergent pas au jour 12, jetez la culture et répétez l’expérience, réduisant ainsi la période de digestion. Un autre problème est les vaisseaux sanguins qui couvrent le tissu cérébral. Ils doivent…

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Cette recherche a été appuyée par des subventions CONACYT 252756 et 253631; UNAM-DGAPA-PAPIIT EN 202818 et IN203518; INPER 2018-1-163, et NIH P51OD11132. Nous remercions Deisy Gasca, Carlos Lozano, Martín García, Alejandra Castilla, Nidia Hernandez, Jessica Norris et Susana Castro pour leur excellente assistance technique.

Materials

Antibodies Antibody ID
Anti-Nestin GeneTex GTX30671 RRID:AB_625325
Anti-Doublecortin MERCK AB2253 RRID:AB_1586992
Anti-Ki67 Abcam ab66155 RRID:AB_1140752
Anti-MAP2 GeneTex GTX50810 RRID:AB_11170769
Anti-GFAP SIGMA G3893 RRID:AB_477010
Goat Anti-Mouse Alexa Fluor 488 Thermo Fisher Scientific A-11029 RRID:AB_2534088
Goat Anti-Rabbit Alexa Fluor 568 Thermo Fisher Scientific A-11036 RRID:AB_10563566
Goat Anti-Guinea Pig Alexa Fluor 488 Thermo Fisher Scientific A-11073 RRID:AB_2534117
Culture reagents
Antibiotic-Antimycotic Thermo Fisher Scientific/Gibco 15240062 100X
B-27 supplement Thermo Fisher Scientific/Gibco 17504044 50X
Collagenase, Type IV Thermo Fisher Scientific/Gibco 17104019 Powder
Dispase Thermo Fisher Scientific/Gibco 17105041 Powder
DMEM/F12, HEPES Thermo Fisher Scientific/Gibco 11330032
Glucose any brand Powder, Cell Culture Grade
GlutaMAX Thermo Fisher Scientific/Gibco 35050061 100X
HEPES any brand Powder, Cell Culture Grade
Mouse Laminin Corning 354232 1 mg/mL
N-2 supplement Thermo Fisher Scientific/Gibco 17502048 100X
NAHCO3 any brand Powder, Suitable for Cell Culture
Neurobasal Thermo Fisher Scientific/Gibco 21103049
Phosphate-Buffered Saline (PBS) Thermo Fisher Scientific/Gibco 10010023 1X
Poly-L-ornithine hydrobromide Sigma-Aldrich P3655 Powder
Recombinant Human EGF Peprotech AF-100-15
Recombinant Human FGF-basic Peprotech AF-100-18B
StemPro Accutase Cell Dissociation Reagent Thermo Fisher Scientific/Gibco A1110501 100 mL
Disposable material
24-well Clear Flat Bottom Ultra-Low Attachment Multiple Well Plates Corning/Costar 3473
24-well Clear TC-treated Multiple Well Plates Corning/Costar 3526
40 µm Cell Strainer Corning/Falcon 352340 Blue
Bottle Top Vacuum Filter, 0.22 µm pore Corning 431118 PES membrane, 45 mm diameter neck
Non-Pyrogenic Sterile Centrifuge Tube any brand with conical bottom
Non-Pyrogenic sterile tips of 1,000 µl, 200 µl and 10 µl. any brand
Sterile cotton gauzes
Sterile microcentrifuge tubes of 1.5 mL any brand
Sterile serological pipettes of 5, 10 and 25 mL any brand
Sterile surgical gloves any brand
Syringe Filters, 0.22 µm pore Merk Millipore SLGPR33RB Polyethersulfone (PES) membrane, 33 mm diameter
Equipment and surgical instruments
Biological safety cabinet
Dissecting Scissors
Dumont Forceps
Motorized Pipet Filler/Dispenser
Micropipettes
Petri Dishes
Scalpel Blades
Stainless-steel Spatula

References

  1. Portillo, W., Paredes, R. G. Motivational Drive in Non-copulating and Socially Monogamous Mammals. Frontiers Behavioral Neuroscience. 13, 238 (2019).
  2. Walum, H., Young, L. J. The neural mechanisms and circuitry of the pair bond. Nature Reviews Neurosciences. 19 (11), 643-654 (2018).
  3. Gobrogge, K. L. Sex, drugs, and violence: neuromodulation of attachment and conflict in voles. Current Topics Behavioral Neurosciences. 17, 229-264 (2014).
  4. Perkeybile, A. M., Bales, K. L. Intergenerational transmission of sociality: the role of parents in shaping social behavior in monogamous and non-monogamous species. Journal of Experimental Biology. 220, 114-123 (2017).
  5. McGraw, L. A., Young, L. J. The prairie vole: an emerging model organism for understanding the social brain. Trends in Neuroscience. 33 (2), 103-109 (2010).
  6. Fowler, C. D., Liu, Y., Ouimet, C., Wang, Z. The effects of social environment on adult neurogenesis in the female prairie vole. Journal of Neurobiology. 51 (2), 115-128 (2002).
  7. Yang, P., et al. Multi-omic Profiling Reveals Dynamics of the Phased Progression of Pluripotency. Cell Systems. 8 (5), 427-445 (2019).
  8. Reynolds, B. A., Weiss, S. Generation of neurons and astrocytes from isolated cells of the adult mammalian central nervous system. Science. 255 (5052), 1707-1710 (1992).
  9. Gritti, A., et al. Multipotential stem cells from the adult mouse brain proliferate and self-renew in response to basic fibroblast growth factor. Journal of Neurosciences. 16 (3), 1091-1100 (1996).
  10. Ostenfeld, T., Svendsen, C. N. Requirement for neurogenesis to proceed through the division of neuronal progenitors following differentiation of epidermal growth factor and fibroblast growth factor-2-responsive human neural stem cells. Stem Cells. 22 (5), 798-811 (2004).
  11. Paxinos, G., Keith, B. J. F. . The mouse brain in stereotaxic coordinates. , (2001).
  12. Conti, L., Cattaneo, E. Neural stem cell systems: physiological players or in vitro entities. Nature Reviews Neuroscience. 11 (3), 176-187 (2010).
  13. Lieberwirth, C., Liu, Y., Jia, X., Wang, Z. Social isolation impairs adult neurogenesis in the limbic system and alters behaviors in female prairie voles. Hormones and Behavior. 62 (4), 357-366 (2012).
  14. Ruscio, M. G., et al. Pup exposure elicits hippocampal cell proliferation in the prairie vole. Behavioral Brain Research. 187 (1), 9-16 (2008).
  15. Wojtowicz, J. M., Kee, N. BrdU assay for neurogenesis in rodents. Nature Protocols. 1 (3), 1399-1405 (2006).
  16. Eack, S. M., et al. Commonalities in social and non-social cognitive impairments in adults with autism spectrum disorder and schizophrenia. Schizophrenia Research. 148 (1-3), 24-28 (2013).
  17. Pinkham, A. E., et al. Comprehensive comparison of social cognitive performance in autism spectrum disorder and schizophrenia. Psychological Medicine. , 1-9 (2019).
  18. Yirmiya, N., et al. Association between the arginine vasopressin 1a receptor (AVPR1a) gene and autism in a family-based study: mediation by socialization skills. Molecular Psychiatry. 11 (5), 488-494 (2006).
  19. Montag, C., et al. Oxytocin and oxytocin receptor gene polymorphisms and risk for schizophrenia: a case-control study. The World Journal of Biological Psychiatry. 14 (7), 500-508 (2013).
  20. Harony, H., Wagner, S. The contribution of oxytocin and vasopressin to mammalian social behavior: potential role in autism spectrum disorder. Neurosignals. 18 (2), 82-97 (2010).
  21. Bachner-Melman, R., Ebstein, R. P. The role of oxytocin and vasopressin in emotional and social behaviors. Handbook of Clinical Neurology. 124, 53-68 (2014).
  22. Wegiel, J., et al. The neuropathology of autism: defects of neurogenesis and neuronal migration, and dysplastic changes. Acta Neuropathologica. 119 (6), 755-770 (2010).
  23. Kaushik, G., Zarbalis, K. S. Prenatal Neurogenesis in Autism Spectrum Disorders. Frontiers in Chemistry. 4, 12 (2016).
  24. Sheu, J. R., et al. A Critical Period for the Development of Schizophrenia-Like Pathology by Aberrant Postnatal Neurogenesis. Frontiers in Neuroscience. 13, 635 (2019).
  25. Donaldson, Z. R., Young, L. J. The relative contribution of proximal 5′ flanking sequence and microsatellite variation on brain vasopressin 1a receptor (Avpr1a) gene expression and behavior. PLoS Genetics. 9 (8), 1003729 (2013).
  26. Rice, M. A., Hobbs, L. E., Wallace, K. J., Ophir, A. G. Cryptic sexual dimorphism in spatial memory and hippocampal oxytocin receptors in prairie voles (Microtus ochrogaster). Hormones and Behavior. 95, 94-102 (2017).

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Ávila-González, D., Young, L. J., Camacho, F., Paredes, R. G., Díaz, N. F., Portillo, W. Culture of Neurospheres Derived from the Neurogenic Niches in Adult Prairie Voles. J. Vis. Exp. (160), e61402, doi:10.3791/61402 (2020).

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