Summary

Administración de anticuerpos en el cerebro mediante ultrasonido de barrido enfocado

Published: July 18, 2020
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Summary

Aquí se presenta un protocolo para abrir transitoriamente la barrera hematoencefálica (BBB) ya sea focalmente o en todo el cerebro de un ratón para administrar anticuerpos marcados fluorescentemente y activar la microglía. También se presenta un método para detectar la administración de anticuerpos y la activación de la microglía por histología.

Abstract

Solo una pequeña fracción de los anticuerpos terapéuticos dirigidos a las enfermedades cerebrales son absorbidos por el cerebro. El ultrasonido enfocado ofrece la posibilidad de aumentar la absorción de anticuerpos y el compromiso a través de la apertura transitoria de la barrera hematoencefálica (BBB). En nuestro laboratorio, estamos desarrollando enfoques terapéuticos para enfermedades neurodegenerativas en los que se administra un anticuerpo en varios formatos a través del BBB utilizando microburbujas, concomitantemente con la aplicación de ultrasonido enfocado a través del cráneo dirigido a múltiples puntos, un enfoque al que nos referimos como ultrasonido de barrido (SUS). Los efectos mecánicos de las microburbujas y el ultrasonido en los vasos sanguíneos aumentan el transporte paracelular a través del BBB al separar transitoriamente las uniones estrechas y mejoran la transcitosis mediada por vesículas, lo que permite que los anticuerpos y los agentes terapéuticos se crucen de manera efectiva. Además, el ultrasonido también facilita la absorción de anticuerpos del cerebro intersticial en las células cerebrales, como las neuronas, donde el anticuerpo se distribuye por todo el cuerpo celular e incluso en los procesos neuríticos. En nuestros estudios, se preparan anticuerpos marcados fluorescentemente, se mezclan con microburbujas a base de lípidos preparadas internamente y se inyectan en ratones inmediatamente antes de que se aplique SUS al cerebro. El aumento de la concentración de anticuerpos en el cerebro se cuantifica entonces. Para dar cuenta de las alteraciones en la homeostasis cerebral normal, la fagocitosis microglial se puede utilizar como un marcador celular. Los datos generados sugieren que la administración de anticuerpos por ultrasonido es un enfoque atractivo para tratar enfermedades neurodegenerativas.

Introduction

La ecografía terapéutica es una tecnología emergente dirigida a tratar las enfermedades cerebrales de forma no invasiva, en parte facilitando el acceso de agentes terapéuticos al cerebro1,2,3. Dado que solo una pequeña fracción de los anticuerpos terapéuticos dirigidos a las enfermedades cerebrales son absorbidos y retenidos en el cerebro4, el ultrasonido terapéutico ofrece la posibilidad de aumentar su captación y compromiso objetivo5,6.

En nuestro laboratorio, estamos desarrollando enfoques terapéuticos para enfermedades neurodegenerativas en las que se administra un anticuerpo en varios formatos a través de la barrera hematoencefálica (BBB) utilizando microburbujas. Para lograr esto, el ultrasonido se aplica a través del cráneo hacia el cerebro en múltiples puntos utilizando un modo de escaneo al que nos referimos como ultrasonido de escaneo (SUS)7. La interacción mecánica entre la energía ecográfica, las microburbujas inyectadas por vía intravenosa y la vasculatura cerebral separa transitoriamente las uniones estrechas del BBB en un volumen de sonicación dado, permitiendo que los anticuerpos y otras cargas, incluidos los agentes terapéuticos, crucen eficazmente esta barrera7,8,9 . Además, se ha demostrado que la ecografía facilita la captación de anticuerpos del cerebro intersticial hacia las células cerebrales, como las neuronas, donde el anticuerpo se distribuye por todo el cuerpo celular e incluso en los procesos neuríticos5,10.

La enfermedad de Alzheimer se caracteriza por una patología de β y tau amiloide11, y se dispone de una gran cantidad de modelos animales para diseccionar los mecanismos patógenos y validar las estrategias terapéuticas. Un enfoque SUS, mediante el cual el ultrasonido se aplica en un patrón secuencial en todo el cerebro, cuando se repite durante varias sesiones de tratamiento, puede reducir la patología de la placa amiloide en los cerebros de ratones mutantes mutantes de proteína precursora amiloide (APP) que depositan β amiloide y activar la microglía que absorbe el amiloide, lo que lleva a una mejora en la función cognitiva7. La apertura BBB con ultrasonido y microburbujas también reduce la patología tau en ratones transgénicos tau pR5, K3 y rTg45105555551085,12,13. Es importante destacar que, si bien la microglía elimina los depósitos de proteínas extracelulares, uno de los mecanismos de aclaramiento subyacentes para las patologías intraneuronales inducidas por el SUS es la activación de la autofagia neuronal12.

Aquí, describimos un proceso experimental, mediante el cual se preparan anticuerpos marcados fluorescentemente y luego se mezclan con microburbujas internas a base de lípidos, seguidas de una inyección retroorbital en ratones anestesiados. La inyección retroorbital es una alternativa a la inyección de la vena de la cola que hemos encontrado que es igualmente eficaz y más simple de realizar repetidamente. Esto es seguido inmediatamente por la aplicación de SUS en el cerebro. Para determinar la absorción de anticuerpos terapéuticos, se sacrifican ratones y luego se cuantifica el aumento de la concentración de anticuerpos en el cerebro. Como un proxy del cambio en la homeostasis cerebral, la actividad fagocítica microglial está determinada por la histología y la reconstrucción volumétrica en 3D.

Los datos generados sugieren que la administración de anticuerpos por ultrasonido es un enfoque potencialmente atractivo para tratar enfermedades neurodegenerativas. El protocolo se puede aplicar de manera similar a otros fármacos candidatos, así como a modelos de dextrans etiquetados fluorescentemente de tamaños definidos14.

Protocol

Todos los experimentos con animales fueron aprobados por el comité de ética animal de la Universidad de Queensland. 1. Preparación interna de microburbujas Pesar una proporción molar de 9:1 de 1,2-distearoil-sn-glicero-3-fosfocolina y 1,2-distearoil-sn-glicero-3-fosfoetanolamina-N-[amino(polietilenglicol)-2000] (sal de amonio). Se requiere 0,5 mg de mezcla lipídica por 1 ml de solución de microburbujas. Alternativamente, los lípidos se pueden comprar ya en cloroformo, si se us…

Representative Results

Usando este protocolo, los anticuerpos marcados fluorescentemente se administran al cerebro y se pueden detectar, junto con la activación de la microglía. La conclusión que se puede extraer es que el uso de ultrasonido enfocado y microburbujas mejora notablemente la absorción cerebral de anticuerpos y puede administrar anticuerpos a todo el cerebro o hemisferio de un ratón cuando se usa en un modo de escaneo. La Figura 1 muestra el dispositivo de aplicación de ultrasonido TIPS (diferen…

Discussion

Los anticuerpos marcados fluorescentemente se pueden administrar al cerebro mediante ultrasonido enfocado junto con microburbujas aplicadas en modo de escaneo. La administración de anticuerpos, la morfología microglial y el agrandamiento lisosomal se pueden detectar mediante microscopía de fluorescencia después de la ecografía de barrido. La microglía puede absorber en sus lisosomas anticuerpos y antígenos a los que los anticuerpos se han unido en un proceso mediado por el receptor Fc4.

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Reconocemos el apoyo del Patrimonio del Dr. Clem Jones AO, el Consejo Nacional de Salud e Investigación Médica de Australia [GNT1145580, GNT1176326], la Fundación Metal y el Gobierno del Estado de Queensland (DSITI, Departamento de Ciencia, Tecnología de la Información e Innovación).

Materials

1,2-distearoyl-sn-glycero-3-phosphocholine Avanti 850365C
1,2-distearoyl-sn-glycero-3-phosphoethanolamine-N-[amino(polyethyleneglycol)-2000] Avanti 880128C
AlexaFluor 647 antibody labeling kit Thermo Fisher A20186
CD68 antibody AbD Serotec MCA1957GA Use 1:1000 dilution
Chloroform Sigma-Aldrich 372978
Coulter Counter (Multisizer 4e)
Glycerol Sigma-Aldrich G5516
Goat anti-rabbit IgG, Alexa Fluor 488 Thermo FIsher A-11008 Use 1:500 dilution
Goat anti-rabbit IgG, Alexa Fluor 488 Thermo Fisher A-11077 Use 1:500 dilution
head holder (model SG-4N, Narishige Japan)
Iba1 antibody Wako 019-19741 Use 1:1000 dilution
Image analysis software Beckman Coulter #8547008
Isoflow flow solution Beckman Coulter B43905
Near infrared imaging system Odyssey Fc Licor 2800-03
Octafluoropropane Arcadophta 0229NC
Propylene Glycol Sigma-Aldrich P4347
TIPS (Therapy Imaging Probe System) Philips Research TIPS_007
Bitplane

References

  1. Choi, J. J., et al. Noninvasive and transient blood-brain barrier opening in the hippocampus of Alzheimer’s double transgenic mice using focused ultrasound. Ultrasonic Imaging. 30 (3), 189-200 (2008).
  2. Lipsman, N., et al. Blood-brain barrier opening in Alzheimer’s disease using MR-guided focused ultrasound. Nature Communications. 9 (1), 2336 (2018).
  3. Pandit, R., Chen, L., Götz, J. The blood-brain barrier: physiology and strategies for drug delivery. Advanced Drug Delivery Reviews. (19), 30238 (2019).
  4. Golde, T. E. Open questions for Alzheimer’s disease immunotherapy. Alzheimers Research & Therapy. 6 (1), 3 (2014).
  5. Nisbet, R. M., et al. Combined effects of scanning ultrasound and a tau-specific single chain antibody in a tau transgenic mouse model. Brain. 140 (5), 1220-1230 (2017).
  6. Janowicz, P. W., Leinenga, G., Götz, J., Nisbet, R. M. Ultrasound-mediated blood-brain barrier opening enhances delivery of therapeutically relevant formats of a tau-specific antibody. Scientific Reports. 9 (1), 9255 (2019).
  7. Leinenga, G., Götz, J. Scanning ultrasound removes amyloid-beta and restores memory in an Alzheimer’s disease mouse model. Science Translational Medicine. 7 (278), 233 (2015).
  8. Burgess, A., et al. Targeted delivery of neural stem cells to the brain using MRI-guided focused ultrasound to disrupt the blood-brain barrier. PLoS One. 6 (11), 27877 (2011).
  9. Chen, H., et al. Focused ultrasound-enhanced intranasal brain delivery of brain-derived neurotrophic factor. Scientific Reports. 6, 28599 (2016).
  10. Leinenga, G., Langton, C., Nisbet, R., Götz, J. Ultrasound treatment of neurological diseases – current and emerging applications. Nature Reviews Neurology. 12 (3), 161-174 (2016).
  11. Götz, J., Halliday, G., Nisbet, R. M. Molecular Pathogenesis of the Tauopathies. Annual Reviews of Pathology. 14, 239-261 (2019).
  12. Pandit, R., Leinenga, G., Götz, J. Repeated ultrasound treatment of tau transgenic mice clears neuronal tau by autophagy and improves behavioral functions. Theranostics. 9 (13), 3754-3767 (2019).
  13. Karakatsani, M. E., et al. Unilateral Focused Ultrasound-Induced Blood-Brain Barrier Opening Reduces Phosphorylated Tau from The rTg4510 Mouse Model. Theranostics. 9 (18), 5396-5411 (2019).
  14. Valdez, M. A., Fernandez, E., Matsunaga, T., Erickson, R. P., Trouard, T. P. Distribution and Diffusion of Macromolecule Delivery to the Brain via Focused Ultrasound using Magnetic Resonance and Multispectral Fluorescence Imaging. Ultrasound in Medicine and Biology. 46 (1), 122-136 (2020).

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Cite This Article
Leinenga, G., Bodea, L., Koh, W. K., Nisbet, R. M., Götz, J. Delivery of Antibodies into the Brain Using Focused Scanning Ultrasound. J. Vis. Exp. (161), e61372, doi:10.3791/61372 (2020).

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